PREPARAZIONI DI

ORGANI ISOLATI IN

FARMACOLOGIA

ESPERIMENTI

in vitro

ex vivo

Soluzioni saline fisiologiche

Temperatura

Aereazione

Apparati di registrazione

Stimolazione

Composizione ionica

Substrati energetici

Tamponi

Osmolarità

COMPOSIZIONE DI ALCUNE SOLUZIONI FISIOLOGICHE

Composizione ionica Substrati energetici

Tamponi

Osmolarità

glucosio

acetato, lattato, piruvato

miscele di aminoacidi

Substrati energetici Tamponi

Osmolarità

Bicarbonato

Fosfato

Substrati energetici

Tamponi Osmolarità

utilizzo di sangue completo;

aggiunta di BSA

aggiunta di sostanze varie (es. destrano)

aggiunta di saccarosio

Soluzioni saline fisiologiche Temperatura

Aereazione

Apparati di registrazione

Stimolazione

k(t+10)

Q10 = kt

   

Soluzioni saline fisiologiche

Temperatura Aereazione

Apparati di registrazione

Stimolazione

Soluzioni saline fisiologiche

Temperatura

Aereazione Apparati di registrazione

Stimolazione

CONTRAZIONE ISOTONICA

REGISTRAZIONE DI UNA CONTRAZIONE ISOTONICA

CONTRAZIONE ISOMETRICA

REGISTRAZIONE DI UNA CONTRAZIONE ISOMETRICA

Soluzioni saline fisiologiche

Temperatura

Aereazione

Apparati di registrazione Stimolazione

elettrodi puntiformi

elettrodi a campo

VALUTAZIONE QUANTITATIVA DEGLIEFFETTI FARMACOLOGICI

DOSI SINGOLE E DOSI CUMULATIVE

PREPARATI DI

MUSCOLATURA SCHELETRICA

NERVO FRENICO-DIAFRAMMA DI RATTO (I)

NERVO FRENICO-DIAFRAMMA DI RATTO (II)

MUSCOLO RETTO ADDOMINALE DELLA RANA

Muscolatura liscia intestinaleIleo di cavia Digiuno di coniglio

Muscolatura liscia vascolareStriscia di aorta di coniglio

 Altri preparati di muscolatura liscia

Striscia del fondo di stomaco di rattoUtero di rattoCatena tracheale di caviaDotto deferente di cavia

ILEO DI CAVIA: PRELIEVO DEL PREPARATO

ILEO DI CAVIA: LAVAGGIO DEL PREPARATO

ILEO ISOLATO SECONDO TRENDELENBURG

Muscolatura liscia intestinaleIleo di cavia Digiuno di coniglio

Muscolatura liscia vascolareStriscia di aorta di coniglio

 Altri preparati di muscolatura liscia

Striscia del fondo di stomaco di rattoUtero di rattoCatena tracheale di caviaDotto deferente di cavia

DIGIUNO DI CONIGLIO: PRELIEVO DEL PREPARATO

DIGIUNO DI CONIGLIO SECONDO LA TECNICA DI MAGNUS

DIGIUNO DI CONIGLIO: PRELIEVO SECONDO LA TECNICA DI FINKELMAN

DIGIUNO DI CONIGLIO SECONDO LA TECNICA

DI FINKELMAN

Muscolatura liscia intestinaleIleo di cavia Digiuno di coniglio

Muscolatura liscia vascolareStriscia di aorta di coniglio

 Altri preparati di muscolatura liscia

Striscia del fondo di stomaco di rattoUtero di rattoCatena tracheale di caviaDotto deferente di cavia

STRISCIA DI AORTA DI CONIGLIO: PRELIEVO E ALLESTIMENTO DEL PREPARATO

STRISCIA DI AORTA DI CONIGLIO

PREPARAZIONI DI

MUSCOLATURA CARDIACA

2. Preparati che utilizzano porzioni di muscolo cardiaco

a)  atri

b)  strips di

ventricolo

c)  muscolo

papillare

1. Preparati che utilizzano il cuore in toto

Cuore isolato e perfuso alla Langendorff

ATRI DI CAVIA ISOLATI

ATRI DI CAVIA ISOLATI

MUSCOLO PAPILLARE

Atri isolati di cavia Stimolazione elettrica ad una frequenza superiore a quella spontanea (240/min) tramite impulsi elettrici della durata di 0.5-1.0 msec e di ampiezza pari al doppio della soglia. L’intensità dello stimolo si misura in Volt o in Ampere a seconda che si disponga di uno stimolatore a voltaggio costante o a corrente costante. I valori usati sono generalmente intorno a 5V oppure a 5 mA.

Muscolo papillare di cavia o di rattoStriscia di ventricolo di cavia o di ratto La frequenza ottimale di stimolazione per ambedue i preparati è di 60/min. Si può usare una frequenza più elevata, per es. 150/min, quando si devono studiare gli effetti di farmaci che possono attivare processi di automatismo anomalo e che tendono quindi a provocare aritmie. Si usano stimoli della durata di 0.5-1.0 msec e di ampiezza pari al doppio della soglia (circa 5V o 5mA).

Test sull’attività di farmaci antiaritmici

a) Misura della massima frequenza seguita

b) Misura del periodo refrattario funzionale

MUSCOLO PAPILLARE

isometric