Anestesia degli animali da laboratorio - ANESTHESIA FRONTIERS · La sperimentazione animale è...

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Anestesia degli animali da laboratorio Dott.ssa V. Pagano Dottorato in “Anestesiologia degli animali”

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Anestesia degli animali da laboratorio

Dott.ssa V. Pagano Dottorato in “Anestesiologia degli animali”

La sperimentazione animale è parte integrante della ricerca medico chirurgica ed ha lo scopo di studiare problemi comuni

della pratica clinica sviluppando nuovi metodi ed approcci terapeutici

Modelli in vivo

NECESSITA’ DI ALLESTIRE PROTOCOLLI ANESTESIOLOGICI IN

ANIMALI “INUSUALI”

rapporto costi/benefici non può essereraggiunto a scapito della sofferenza

→ personale→ attrezzature → ambienti→ farmaci e sistemi di erogazione materiali

nel calcolo dei costi di una sperimentazionesull’animale: costi dell’anestesia sono ineliminabili

Procedure Sperimentali

SofferenzaDolore

1) Ragioni Etiche: Divinum est sedare dolorem (non vale solo per l’uomo)

2) Ragioni Scientifiche: il dolore e il disagio inducono una serie di risposte fisiologiche che alterano la validità del modello animale.

Un’appropriata tecnica anestetica elimina completamente il dolore durante la procedura

chirurgica.

ANESTESIACondizione controllabile e reversibile nella quale la percezione di stimoli

dolorifici e non, da parte del S.N.C., è soppressa.

ANESTESIA GENERALE ANESTESIA LOCALE

AnestesiaVeterinaria → l’animale come paziente: patologia chirurgica

Sperimentale → protocolli animali: preparati biologici*↓

obiettivi

* N.B. non deve interferire con i protocolli sperimentali

ANESTETICO IDEALE

• Semplice da somministrare• Deve indurre stato di anestesia sufficiente e stabile• Non deve influenzare le funzioni fisiologiche• Deve possedere un’azione reversibile• Deve essere sicuro per gli animali e per il personale

Anestesia Locale• Anestesia di superficie: spray o gel

(interventi minori: es. cateterizz. uretere)• Infiltrazione locale: biopsia cutanea• Blocco nervoso locale: anestetico locale iniettato

intorno al tronco nervoso (es. per arti inf. o coda)• Anestesia Regionale: anestetico locale iniettato in

prossimità del midollo spinale:a) spinaleb) epidurale

AnestesiaGenerale

Analgesia

Perdita di Coscienza

Soppressione dei Riflessi

Rilasciamento Muscolare

Tecnica anestesiologica

Anestetico Unico: agente inalatorio o iniettabile

Utilizzo di più farmaci: A.G.B.(Anestesia Bilanciata)

sinergismo con potenziamento

Fattori condizionanti l’anestesia

a) animali molto grossi (non adatti)taglia

b) animali piccoli → ipotermia

a) c. termoregolatoreetà b) funzione epatica e renale

c) dosi

Metodi standard di contenzione

specie

Animale da

esperimento

• ratto• topo• hamster• cavia• coniglio• maiale

ANESTESIA DEI RODITORI

L'anestesia dei piccoli roditori presenta una serie di difficoltàlegate alla loro:

• esigua mole corporea, • elevata velocità metabolica, • conformazione delle vie aeree,• difficoltà di accesso vascolare.

Rattospecie docile → facile contenzione

preanestesia: Diazepam (0,1ml ogni 150gr. i.p.) Atropina (0,025 mg/kg sc)

anestesia parenterale: Ketamina (100 mg/Kg/i.m.)

Metedomidina (0,25 mg/Kg/i.m.)

anestesia inalatoria: etere o fluotane(complessa da realizzare –

inquinamento ambiente)

Topo e HamsterAnestesia Parenterale• XILAZINA:

20mg/ml15 mg/Kg i.m. o i.p.• KETAMINA

100mg/ml100 mg/Kg i.m. o i.p.• ATROPINA

0,2mg/ml0,02-0,05 mg/Kg s.c.

in alternativa:

• AVERTINA (Tribromoetanolo disciolto in metilbutanolo) 0.2 ml ogni 10 g i.p.

Cavia• Visita preanestetica:

(F.C., F.R., T.)

Gruppo Protocollo Anestetico volume

1 Xilazina + Ace + Ketamina 0,5 ml/kg

(8 ,57 mg /ml)+(1,4 2 mg /ml)+(4 2 ,8 5 mg /ml)

2 Zolazepam+Tiletamina 0,8 ml/kg/im3 Diazepam + Ketamina 2,6 ml/kg/im

8 mg /kg / im + 10 0 mg /kg / im

4 Medetomidina+ Ketamina 0,9 ml/kg/ip0 ,5 mg /kg i.p .+ 4 0 mg /kg / ip

5 Diazepam+ Fentanyl 3,5 ml/kg/ip5 mg /kg / ip d o p o 10 ' 0 ,3 mg /kg / im

MONITORAGGIOIl tempo di induzione, i riflessi palpebrale e flessorio, le frequenze cardiaca e respiratoria venivano rilevati clinicamente e registrati ogni 10'

MONITORAGGIOIl grado di analgesia veniva valutato osservando la risposta a stimoli applicati alla cute mediante scariche di 2,0 - 12 mA (1m.sec), erogati da uno stimolatore elettrico

MONITORAGGIO

Il monitoraggio strumentale consisteva nella registrazione delle attività cardiocircolatoria e respiratoria mediante monitor multiparametrico.

ANTAGONISMO- xilazina e medetomidina

atipamezolo (0,5 mg i.m.)

- zolazepam

flumazenil (0,5 mg/kg/i.p)

- fentanil

naloxone (0,8 mg/kg/i.m.)

Lagomorfi

specie a rischio anestesiologico elevato- scarsa manegevolezza dosi- contenzione facile- agitazione, paura-stress: arresto cardiaco

Problemi: - infezioni resp. persistenti → ostruzionivie aeree

- difficile intubaz. difficile ventil. (VT basso-barotrauma)

anestesia parenterale:Ketamina 44mg/kg i.m. Xilazina o Diazepam 5mg/kg

anestesia inalatoria:Alotano – Isoflurano= buona stabilità

Lagomorfi

Suini

• Peculiarita’ anatomofisiologica• Indole reattiva ed eccitabile• Ipotermia• Accessi vascolari• Salivazione• Miopatie IM

PROBLEMI DELLA ANESTESIA

• Stabulazione in sede due giorni prima dell’esperimento

• Visita preanestesiologica 12 ore prime dell’intervento

• Digiuno 12 ore prima dell’esperimento con accesso ad libitum all’acqua

• Lavaggio e rasatura dei siti d’accesso chirurgico ed anestesiologico (previa premedicazione)

Preparazione

Premedicazione

• Atropina (0,025mg / Kg/i.m.)

• Butirrofenone (Azaperone

15mg/Kg/i.m.)

• Cicloesamina (Ketamina

15mg/Kg/i.m.)

• Butorfanolo ( 0,2 mg/kg i.m.)

• Dopo 30-45 minuti:

• Ketamina 5 mg/kg/e.v.

• Propofol 6 mg/kg/e.v.

• Butorfanolo 0,4 mg/kg/e.v.

Induzione

• Posizione prona

• Laringoscopio Foregger lama retta 200

mm.

• Tubo endotracheale Magill 7-7,5

prolungato di 10 cm e cuffiato

Intubazione

• FiO2 40 %

• PAW 22cm H2O

• I/E 1:2

• VT 10ml/kg

• FR 16 atti /min.

Servo Ventilator 900C (Siemens)

Ventilazione Meccanica

Mantenimento

Tempo Dosaggio Riduzione

Inizio 6mg/Kg/h

Dopo 2 ore 4mg/kg/h 1/3Dopo 4 ore 2mg/kg/h 1/3

Mantenimento 2mg/kg/h

PROPOFOL:PROPOFOL:

KETAMINA:KETAMINA:1,1-2,2 mg/Kg

BUTORFANOLO:BUTORFANOLO:0,2 mg/Kg e.v. ogni 2h

Ruolo del Veterinario nella Sperimentazione Animale

Non solo contenimento intraoperatorioGestione dello StabularioConoscenza del comportamento di specieConoscenza del singolo soggettoCorretto impiego di farmaci analgesici

Grazie per l’attenzione