Silvia De Rosa, MD, MS, FCCN Anesthesia and Intensive Care ...
Anestesia degli animali da laboratorio - ANESTHESIA FRONTIERS · La sperimentazione animale è...
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Anestesia degli animali da laboratorio
Dott.ssa V. Pagano Dottorato in “Anestesiologia degli animali”
La sperimentazione animale è parte integrante della ricerca medico chirurgica ed ha lo scopo di studiare problemi comuni
della pratica clinica sviluppando nuovi metodi ed approcci terapeutici
rapporto costi/benefici non può essereraggiunto a scapito della sofferenza
→ personale→ attrezzature → ambienti→ farmaci e sistemi di erogazione materiali
nel calcolo dei costi di una sperimentazionesull’animale: costi dell’anestesia sono ineliminabili
Procedure Sperimentali
SofferenzaDolore
1) Ragioni Etiche: Divinum est sedare dolorem (non vale solo per l’uomo)
2) Ragioni Scientifiche: il dolore e il disagio inducono una serie di risposte fisiologiche che alterano la validità del modello animale.
Un’appropriata tecnica anestetica elimina completamente il dolore durante la procedura
chirurgica.
ANESTESIACondizione controllabile e reversibile nella quale la percezione di stimoli
dolorifici e non, da parte del S.N.C., è soppressa.
ANESTESIA GENERALE ANESTESIA LOCALE
AnestesiaVeterinaria → l’animale come paziente: patologia chirurgica
Sperimentale → protocolli animali: preparati biologici*↓
obiettivi
* N.B. non deve interferire con i protocolli sperimentali
ANESTETICO IDEALE
• Semplice da somministrare• Deve indurre stato di anestesia sufficiente e stabile• Non deve influenzare le funzioni fisiologiche• Deve possedere un’azione reversibile• Deve essere sicuro per gli animali e per il personale
Anestesia Locale• Anestesia di superficie: spray o gel
(interventi minori: es. cateterizz. uretere)• Infiltrazione locale: biopsia cutanea• Blocco nervoso locale: anestetico locale iniettato
intorno al tronco nervoso (es. per arti inf. o coda)• Anestesia Regionale: anestetico locale iniettato in
prossimità del midollo spinale:a) spinaleb) epidurale
Tecnica anestesiologica
Anestetico Unico: agente inalatorio o iniettabile
Utilizzo di più farmaci: A.G.B.(Anestesia Bilanciata)
sinergismo con potenziamento
Fattori condizionanti l’anestesia
a) animali molto grossi (non adatti)taglia
b) animali piccoli → ipotermia
a) c. termoregolatoreetà b) funzione epatica e renale
c) dosi
Metodi standard di contenzione
specie
ANESTESIA DEI RODITORI
L'anestesia dei piccoli roditori presenta una serie di difficoltàlegate alla loro:
• esigua mole corporea, • elevata velocità metabolica, • conformazione delle vie aeree,• difficoltà di accesso vascolare.
Rattospecie docile → facile contenzione
preanestesia: Diazepam (0,1ml ogni 150gr. i.p.) Atropina (0,025 mg/kg sc)
anestesia parenterale: Ketamina (100 mg/Kg/i.m.)
Metedomidina (0,25 mg/Kg/i.m.)
anestesia inalatoria: etere o fluotane(complessa da realizzare –
inquinamento ambiente)
Topo e HamsterAnestesia Parenterale• XILAZINA:
20mg/ml15 mg/Kg i.m. o i.p.• KETAMINA
100mg/ml100 mg/Kg i.m. o i.p.• ATROPINA
0,2mg/ml0,02-0,05 mg/Kg s.c.
in alternativa:
• AVERTINA (Tribromoetanolo disciolto in metilbutanolo) 0.2 ml ogni 10 g i.p.
Cavia• Visita preanestetica:
(F.C., F.R., T.)
Gruppo Protocollo Anestetico volume
1 Xilazina + Ace + Ketamina 0,5 ml/kg
(8 ,57 mg /ml)+(1,4 2 mg /ml)+(4 2 ,8 5 mg /ml)
2 Zolazepam+Tiletamina 0,8 ml/kg/im3 Diazepam + Ketamina 2,6 ml/kg/im
8 mg /kg / im + 10 0 mg /kg / im
4 Medetomidina+ Ketamina 0,9 ml/kg/ip0 ,5 mg /kg i.p .+ 4 0 mg /kg / ip
5 Diazepam+ Fentanyl 3,5 ml/kg/ip5 mg /kg / ip d o p o 10 ' 0 ,3 mg /kg / im
MONITORAGGIOIl tempo di induzione, i riflessi palpebrale e flessorio, le frequenze cardiaca e respiratoria venivano rilevati clinicamente e registrati ogni 10'
MONITORAGGIOIl grado di analgesia veniva valutato osservando la risposta a stimoli applicati alla cute mediante scariche di 2,0 - 12 mA (1m.sec), erogati da uno stimolatore elettrico
MONITORAGGIO
Il monitoraggio strumentale consisteva nella registrazione delle attività cardiocircolatoria e respiratoria mediante monitor multiparametrico.
ANTAGONISMO- xilazina e medetomidina
atipamezolo (0,5 mg i.m.)
- zolazepam
flumazenil (0,5 mg/kg/i.p)
- fentanil
naloxone (0,8 mg/kg/i.m.)
Lagomorfi
specie a rischio anestesiologico elevato- scarsa manegevolezza dosi- contenzione facile- agitazione, paura-stress: arresto cardiaco
Problemi: - infezioni resp. persistenti → ostruzionivie aeree
- difficile intubaz. difficile ventil. (VT basso-barotrauma)
anestesia parenterale:Ketamina 44mg/kg i.m. Xilazina o Diazepam 5mg/kg
anestesia inalatoria:Alotano – Isoflurano= buona stabilità
Lagomorfi
Suini
• Peculiarita’ anatomofisiologica• Indole reattiva ed eccitabile• Ipotermia• Accessi vascolari• Salivazione• Miopatie IM
PROBLEMI DELLA ANESTESIA
• Stabulazione in sede due giorni prima dell’esperimento
• Visita preanestesiologica 12 ore prime dell’intervento
• Digiuno 12 ore prima dell’esperimento con accesso ad libitum all’acqua
• Lavaggio e rasatura dei siti d’accesso chirurgico ed anestesiologico (previa premedicazione)
Preparazione
Premedicazione
• Atropina (0,025mg / Kg/i.m.)
• Butirrofenone (Azaperone
15mg/Kg/i.m.)
• Cicloesamina (Ketamina
15mg/Kg/i.m.)
• Butorfanolo ( 0,2 mg/kg i.m.)
• Dopo 30-45 minuti:
• Ketamina 5 mg/kg/e.v.
• Propofol 6 mg/kg/e.v.
• Butorfanolo 0,4 mg/kg/e.v.
Induzione
• Posizione prona
• Laringoscopio Foregger lama retta 200
mm.
• Tubo endotracheale Magill 7-7,5
prolungato di 10 cm e cuffiato
Intubazione
• FiO2 40 %
• PAW 22cm H2O
• I/E 1:2
• VT 10ml/kg
• FR 16 atti /min.
Servo Ventilator 900C (Siemens)
Ventilazione Meccanica
Mantenimento
Tempo Dosaggio Riduzione
Inizio 6mg/Kg/h
Dopo 2 ore 4mg/kg/h 1/3Dopo 4 ore 2mg/kg/h 1/3
Mantenimento 2mg/kg/h
PROPOFOL:PROPOFOL:
KETAMINA:KETAMINA:1,1-2,2 mg/Kg
BUTORFANOLO:BUTORFANOLO:0,2 mg/Kg e.v. ogni 2h
Ruolo del Veterinario nella Sperimentazione Animale
Non solo contenimento intraoperatorioGestione dello StabularioConoscenza del comportamento di specieConoscenza del singolo soggettoCorretto impiego di farmaci analgesici