Propagazione e programmazione della fioritura nelle peonie erbacee

U.O.: Dipartimento di Produzione VegetaleUniversità della Tuscia, Viterbo.

Dott.ssa Mariateresa Cardarelli

Università della Tuscia, Dipartimento di Produzione Vegetale, Viterbo

Inquadramento tassonomico:Divisione Angiospermae

Classe Dicotyledones

Ordine Polycarpicae

Famiglia Paeoniaceae

Genere Paeonia

arbustive

erbacee

Sezione Onaepia Sezione Paeon

P. officinalis, P. clusii, P. rhodia, P. mollis, P. mascula, P. parnassica, P. broteroi, P. cambessedesii, P. bakeri, P. emodi, P. japonica, P. lactiflora, P. obovata

P. peregrina, P. tenuifolia, P. anomala, P. veitchii

P. brownii Sottosez. Foliolatae Sottosez. Dissectifoliae

P. californica

Cina

Interessanti possibilità di utilizzo:

architettura del paesaggio

vaso fiorito

fiore reciso

per divisione dei cespiMOLTIPLICAZIONE

FIORITURA periodo limitato

E’ necessario definire un modello di programmazione

della produzione

CRESCITA GERMOGLI

SENESCENZA FOGLIARE

maggio - giugno luglio - agosto

ottobrefebbraio

FIORITURA

IN ZONE CLIMATICHE MEDITERRANEE

meristema vegetativo

meristema generativo

differenziazione fiorale

29 marzo 2004

22 maggio 2004

CICLO TERMOPERIODICO

CRESCITA GERMOGLI

SENESCENZA FOGLIARE

FIORITURA

meristema vegetativo

meristema generativo

differenziazione fiorale

NEUTRODIURNA

Dormienza

DORMIENZA

Temporanea sospensione della crescita

visibile di una struttura vegetale che

comprende un meristema

VERNALIZZAZIONE

Quantità di freddo necessaria per interrompere la dormienza delle gemme

La temperatura soglia per il germogliamento

L’effetto della temperatura sullo sviluppo degli steli fioralie sulla qualità dei fiori

Alcune informazioni

La vernalizzazione su substrato umido migliora la performance delle piante

Temperature di vernalizzazione intorno a 5-6°C per 4 settimane, seguite la un periodo di forzatura di 8-10 settimane, inducono allungamento dello stelo fiorale

Riduzioni di 1°C oppure allungamenti del periodo

fino a oltre 6 settimane, anticipano la fioritura, aumentano il n. di germogli

e il numero di fiori

Temperature di forzatura più elevate provocano un aumento dell’aborto fioraleTemperature inferiori (16/5°C) migliorano la qualità del fiore

In Israele trattamenti a 2-6°C per 9-10 settimane seguiti da 22/10°C (giorno/notte) hanno determinato un incremento della fioritura e della lunghezza degli steli

La risposta è cultivar-specifica

Alcune informazioni

Può totalmente o parzialmente sostituire i trattamenti con il freddo

per interrompere la dormienzaGA3

da applicare sulle gemme

efficace se applicato dopo la vernalizzazione

Attività dell’Unità Operativa

Per una corretta programmazione della produzione è necessario:

Individuare le varietà di maggiore interesse

Conoscerne il comportamento vegeto-produttivo e soprattutto

l’epoca di fioritura in relazione ai fattori ambientali

Mettere a punto una tecnica di moltiplicazione idonea a garantire

qualità e disponibilità del materiale vegetale

Sviluppare un protocollo di forzatura (vernalizzazione) idoneo ai

genotipi di maggior interesse

Attività dell’Unità Operativa

Obiettivi (prima fase)

Caratterizzazione bio-morfologica e produttiva delle cultivar in collezione

Valutazione di tecniche di moltiplicazione innovative

per taleain vitro

Caratterizzazione bio-morfologica e produttiva

Il Centro Botanico Moutan (VT) ospita una collezione di oltre 5000 peonie appartenenti a diverse specie, varietà botaniche e ibridi naturali.

È stata necessaria una preliminare individuazione dei diversi genotipi attraverso l’osservazione delle piante durante la piena fioritura

Caratterizzazione bio-morfologica e produttiva

Parametri qualitativi e quantitativi considerati:

petali (colore, forma, dimensione, presenza di sfumature, numero, altro);

stami (presenza/assenza, dimensione, posizione, numero, altro);

petaloidi (presenza/assenza, colore, forma, dimensione, presenza di sfumature, posizione, numero, altro);

carpelli (presenza/assenza, colore, dimensione, numero, altro);

brattee (numero, colore, dimensione, altro);

dimensione del fiore (peso, diametro, profondità).

Caratterizzazione bio-morfologica e produttiva

Colore del fiore

Caratterizzazione bio-morfologica e produttiva

Forma del fiore

Caratterizzazione bio-morfologica e produttiva

Petaloidi

Caratterizzazione bio-morfologica e produttiva

Stami e carpelli

Caratterizzazione bio-morfologica e produttiva

Fiore:Tipo doppio

Peso 8-10 g

Diametro 8-10 cm

Profondità 10-12 cm

Numero petali 6-12

Forma petali vedi foto

Larghezza petali 3-5 cm lunghezza petalo 3-5 cm

Colore petali rosso rubino

Variegature petali assenti

Petaloidi presenti internamente ai petali

Forma petaloidi vedi foto

Larghezza petaloidi 0,5 –1 cm lunghezza petaloidi 3-5 cm

Numero petaloidi 150-300

Colore petaloidi rosso rubino

Variegature petaloidi assenti

Stami presenti

Numero stami 50-150

Lunghezza stami 1-3 cm

Posizione stami tra i petaloidi

Carpelli assenti

Numero brattee 5

Profumo fiore intenso

Caratterizzazione bio-morfologica e produttivaSCHEDA TIPOPeriodo di fioritura

Fiore:Tipo doppio

Peso

Dimensioni

Numero petali

Forma e dimensioni petali

Colore petali

Variegature petali

Petaloidi

Forma e dimensioni petaloidi

Numero petaloidi

Colore petaloidi

Variegature petaloidi

Stami

Numero

Dimensioni

Posizione

Carpelli

Numero brattee

Profumo fiore

FOTO

Foglie

Forma e dimensioni

colore

Altezza pianta

Numero internodi

Ramificazioni

Stato fitosanitario

Moltiplicazione per talea

Protocollo sperimentale

Epoche di prelievo

G F M A M G L A S O N D

Trattamenti 1000 ppm IBA

2000 ppm IBA

3000 ppm IBA

2000 ppm NAA

10 mM putrescina

10 mM putrescina + 2000 ppm IBA

Per ogni trattamento sono state messe in cassone freddo su substrato di agriperlite 40 talee

Micropropagazione in vitro

Materiale vegetale utilizzato: Materiale vegetale utilizzato: gemme ascellarigemme ascellari

Messa a punto della tecnica di sterilizzazione:Messa a punto della tecnica di sterilizzazione:

MgCl2 0,5% per 3 min

NaOCl 1% per 15 min

3 lavaggi in acqua sterile

PPM 50 % per 30 min

NaOCl 1% per 15 min

3 lavaggi in acqua sterile

PPM 1,5 ml/l nel substrato

NaOCl 1% per 5 min

3 lavaggi in acqua sterile

PPM 50 % per 30 min

NaOCl 1% per 15 min

3 lavaggi in acqua sterile

PPM 50 % per 30 min

Substrato base: Substrato base: MS, saccarosio 3%, acido citrico 0,3 mM, acido ascorbico 0,3 mM,MS, saccarosio 3%, acido citrico 0,3 mM, acido ascorbico 0,3 mM,

agaragar 0,8% (0,8% (pHpH 5,8)5,8)

Micropropagazione in vitro

FitoregolatoriFitoregolatori:: BAP 3 BAP 3 µµMM

BAP 1,5 BAP 1,5 µµMM + GA+ GA33 3 3 µµMM

BAP 3 BAP 3 µµM + NAA 5,4 M + NAA 5,4 µµM + PVP 0,5 g/lM + PVP 0,5 g/l

BAP 1,5 BAP 1,5 µµMM + GA+ GA33 3 3 µµMM + PVP + PVP 0,5 g/l0,5 g/l

BAP 3 BAP 3 µµM + PVP 0,5 g/lM + PVP 0,5 g/l

BAP 3 µM + TDZ 1 µM

BAP 6 µM + NAA 5,4 µM

BAP 3 BAP 3 µµM + AgNOM + AgNO33 11 11 µµMM

BAP 3 BAP 3 µµM + AgNOM + AgNO33 22 22 µµMM

BAP 3 BAP 3 µµM + AgNOM + AgNO33 33 33 µµMM

Proseguo attività:

Coltura in vitro

Prove di taleaggio

Realizzazione di una scheda morfologica per la caratterizzazione dei diversi

genotipi

Prove di forzatura a 4°C per tempi diversi