PEPTIDE SYNTHESIS PEPTIDE SYNTHESIS. Molecole di peso molecolare inferiore ai 5000 dalton,...

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PEPTIDE SYNTHESISPEPTIDE SYNTHESIS

Molecole di peso molecolare inferiore ai 5000 dalton, costituiti da una catena di pochi amminoacidi (fino a 100

circa), uniti tra di loro attraverso un legame peptidico (amidico).

PEPTIDIPEPTIDI

NH

OH

O

RO

H2N

R'

PEPTIDIPEPTIDI

Costituenti delle proteine

Ormoni

Neurotrasmettitori

Antibiotici/Antibatterici

Veleni

Partecipano alla risposta immunitaria

Sviluppo di patologie

Farmaci

Nanotecnologie

PEPTIDIPEPTIDIOrmoniOrmoni

Insulina Glucagone

PEPTIDIPEPTIDINeurotrasmettitoriNeurotrasmettitori

Sintetizzati come pre-proteine del reticolo endoplasmatico rugoso dove viene rimossa la sequenza segnale. La pre-proteina risultante attraversa l’apparato di Golgi e viene immagazzinata in vescicole. All’interno delle vescicole si completa la formazione del peptide: scissione proteolitica, modificazione delle estremità del peptide, glicosilazione, fosforilazione, formazione dei ponti disolfuro.

PEPTIDIPEPTIDI

AntibattericiAntibatterici

Proline-rich proteins

Istatine

Cistatine

PEPTIDIPEPTIDIVeleniVeleni

Conopeptidi

PEPTIDIPEPTIDI

Risposta immunitariaRisposta immunitaria

Patologie legate ai peptidi: AlzheimerPatologie legate ai peptidi: Alzheimer

PEPTIDIPEPTIDIFarmaciFarmaci

PEPTIDIPEPTIDIFarmaciFarmaci

bassa stabilità metabolica

scarso assorbimento dopo somministrazione orale

scarso passaggio della barriera ematoencefalica

PeptidePeptide PeptidomimeticoPeptidomimetico

PEPTIDIPEPTIDINanotecnologieNanotecnologie

1881 & 1902Prima attivazione del gruppo carbossilico

&Sintesi di un tripeptide

Theodor Curtius (1857-1928)

1901

Prima sintesi chimica di un peptide “NH2 free”

Emil Fischer (1852–1919)

H2N COOEtHN

NHO

OH2N

HN

O

COOH

Dichetopiperazina

1902Nobel Prize

“…la quantità di lavoro che c’è da fare è

talmente enorme che in confronto le scoperte

sui carboidrati sembrano un gioco da

ragazzi.”

1932

Introduzione del gruppo benzilossicarbonilico (Cbz o Z)

Max Bergmann (1886-1944) & Leonidas Zervas (1902-

1980)

O NHR

OH2, [Pd]

H2NRCH3

CO2

1953

Sintesi dell’Ossitocina

Vincent du Vigneaud (1901-1978)

1955 Nobel Prize

Cbz - Cys - Tyr - lle - Gln - Asn - Cys - Pro - Leu - Gly - NH2

S SBzl Bzl

1) Na, NH32) Air oxidation

H - Cys - Tyr - lle - Gln - Asn - Cys - Pro - Leu - Gly - NH2

S S

1957 Introduzione del gruppo t-butossicarbonilico (Boc)

George W. Anderson & Anne McGregor

O NHR

OH2NR CH2

H3C

H3CCO2

H+

J. Am. Chem. Soc., 1957, 79, 6180-6183

19631963

J. Am. Chem. Soc., 1963, 85, 2149 - 2154

L-A-G-VL-A-G-V

BRUCE MERRIFIELDBRUCE MERRIFIELD(1921-2006)

1984Nobel Prize

BRUCE MERRIFIELDBRUCE MERRIFIELD

“la mia resa complessiva è stata del 7% e mi ci sono voluti 11 mesi. Sicuramente un chimico dei peptidi con più esperienza avrebbe fatto meglio, ma non senza uno sforzo considerevole”

VANTAGGIVANTAGGIWork-up per semplice filtrazione

Possibiltà di utilizzare i reattivi in grande eccessoRiduzione dei tempi di sintesi

Automatizzazione del processo

Legare covalentemente un aa ad un supporto

insolubile e far “crescere” il peptide.

LE TRE GRANDI SFIDELE TRE GRANDI SFIDE

Bruce contro i chimici!!!Bruce contro i chimici!!!

Passare dalla teoria alla pratica.

Abbattere la resistenza dei chimici

sintetici verso questo nuovo metodo (“…

non è assolutamente chimica, è un

approccio che verrà soppresso dalla

comunità”).

Far capire che anche un biochimico può

avere le credenziali per proporre un

cambiamento rivoluzionario nella sintesi

chimica (“Questo non è il modo di

sintetizzare i peptidi”).

Cl

Polystyrene

O

PolystyreneO2N

O

NH

Cbz

R

O2N

HBr/AcOH

O

PolystyreneO2N

O

H2N

R

O

PolystyreneO2N

O

NH

ROHN

Cbz

R'

OH

O

NH

RO

H2N

R'

NaOH

L-A-G-V

Attacco –COOH.

Allungamento facendo reagire il carbossile attivato con gruppo NH2

dell’aa o del peptide ancorato alla resina.

SPPS: sequenza di coupling/deprotezione.

Distacco del peptide dalla resina

1972Introduzione del gruppo

9-Fluorenilmetossicarbonile (Fmoc) Louis A. Carpino

CH2

O

O

NH RCH2 N

NH2 RCO2

NH

CH C O

R1 O

LinkerHN

CH C O

R1 O

LinkerH2N

HN CH

R2

C

O

CH C O

R1 O

LinkerHN

HN CH

R2

C

O

O activating group

couplen. times deprotection and

coulping

H2N CH

Rx+1

C

O

CH C

R1 O

CH

Rx

HN C

O

HN OH

n-1

Side chain PG

N-α PG

Polymer Support

SPPSSPPS

SPPSSPPS SCELTA DELLA RESINA

ALLUNGAMENTO DELLA CATENA (COUPLING/DEPROTEZIONE)

DISTACCO DEL PEPTIDE DALLA RESINA

PURIFICAZIONE

GIOCO DI PROTEZIONI

Boc/Bzl SPPSBoc/Bzl SPPS

Fmoc/tBu SPPSFmoc/tBu SPPS

C

O

NH2

H2N COOH

R

R-OH -COOH

-SH

-N-

HN C NH2

NH

GRUPPO GRUPPO PROTETTOREPROTETTORE

chimicamente stabile nelle condizioni della sintesi peptidica

effetto stabilizzante sulla molecola

rimovibile in condizioni blande, in modo selettivo e con alte rese

PROTEZIONE ORTOGONALEPROTEZIONE ORTOGONALE

NH

HN

O

Stabile nelle condizioni di coupling e deprotezione

Non stabile durante il distacco dalla resina (ci sono eccezioni) Stabile durante

coupling Non stabile durante

la deprotezione

Gruppi N protettoriGruppi N protettori

O

O

Boc

Stabile in ambiente basico e riducente

Eliminazione in ambiente acido (TFA)

O O Ot-But-Bu

O O

R NH2

R NH

O

O t-Bu

CO2t-BuOH

O

OFmoc

Stabile in ambiente acido Eliminazione con piperidina

R NH2

H2C O C

O

NH R

H2C O C

O

R

R= Cl; N

O

O

Gruppi protettori delle catene laterali

Boc Fmoc

Val, Leu, Ile, Phe, Pro, Ala, Met non hanno bisogno di protezione

stabili in TFA Stabili in piperidina

Possono essere o non essere stabili nelle

condizioni di cleavage della resina

RacemizzazioneRacemizzazione

R' NH

O

X

O

R-HX

O

N

O

R'

R-H+

O

N

O-

R'

R

H+

O

N

O

R'

R

H2N Peptide

R' NH

OHN

O

R

Peptide

OssazoloneOssazolone

O

OBr

O

O

H2N COOH

HO

H2N COOH

HO

H2N COOH

HO

Bzl

2-Br-Bzl

tBu

Trt

H2N COOH H2N COOH H2N COOH

NH2

NHN

HN

OHN

O

NO2

NO2

N

N H

O NH

O

O

NH

BocCbz

DnpFor

Trt

H2N COOH H2N COOH

COOH

HOOC

O

O

O

O

Bzl

OcHx

tBu

Ada

NH

O

N

O

NH

O

N

O

NH

O

N

O

NH

O

N

O

NH

O

HN

X

O

N

O

O

NH

NH

H2N COOH H2N COOH

CONH2

H2NOC

H2N COOH

NC

O

NH

NH

OCH3

OCH3H3CO

NH

Xan

Trt

Tmob

H2N COOH

NHH2N

NH

N

O

NHR

NH

NH

H2N COOH

NH2

SO2

CH3H3C

CH3 SO2

HN

O

SO2

HN

O

Mts PbfPmc

H2N COOH

HS

NH

O

S S

Acm Trt

Scelta della ResinaScelta della Resina

Non deve essere solubile nei solventi utilizzati durante la sintesiDeve contenere siti reattivi (linkers) per permettere l’attacco del primo aa tramite la funzione carbossilicaDeve essere stabile nelle condizioni di coupling-deprotezione

La resina deve subire un rigonfiamento (swelling) per favorire la penetrazione dei reagenti nei granuliLoading: mmol di gruppo funzionale per g di resina

Scelta della ResinaScelta della ResinaStruttura polimerica

PolistirenePEG

Resine Boc-SPPSResine Boc-SPPS

Stabili in TFAResina di Merrifield

BocHN

R

O-

O

Cs+DMF, KI

50°C, overnight

Cl O

O

BocHN

R

BocHN

R

OH

O

Cs2CO3

Resine Boc-SPPSResine Boc-SPPS

Resine Boc-SPPSResine Boc-SPPS

CleavageCleavage

HF → Peptide acido

NH3/MeOH → Peptide carbossammide

NH2NH2 → Peptide idrazide

MeOH/TEA → Peptide metilestere

Resine Fmoc-SPPSResine Fmoc-SPPS

O

HO

Resina di Wang

Anidridi simmetriche Anidridi miste Metodo MSNT/MeIm

HO

FmocHN

R

OH

O

2DIC, DMF

FmocHN

R

O

O O

NHFmoc

R

DMAP, DMF

O

O

FmocHN

R

CN NDIC=

N

N

DMAP=

Resa >70%

Racemizzazione

Anidridi simmetricheAnidridi simmetriche

Anidridi misteAnidridi miste

HO

FmocHN

R

OH

OFmocHN

R

O

O O

O

O

FmocHN

R

Cl

OCl

Cl

N

DCM

Cl

Cl

Resa >70%

Racemizzazione

Metodo MSNT/MeImMetodo MSNT/MeIm

HOFmocHN

R

OH

O

O

O

FmocHN

R

MSNT, MeIm, DCM

S

N

OO

NN

NO2

MSNT= MeIm=N

N Evita racemizzazione

Sensibile all’umidità

Resina ClorotritilicaResina Clorotritilica

Cl

Cl

FmocHN

R

OH

O

O

ClDIEA, DCM

Cl

ClO

FmocHN

R

Peptidi acidi

No racemizzazione

Resa quantitativa

Peptidi protetti

Rink Amide ResinRink Amide Resin

O

NHFmocOMe

MeO

Sieber Amide ResinSieber Amide Resin

O

NHFmoc

O

Peptidi carbossiammidati

Peptidi protetti (Sieber)

Resine Fmoc-SPPSResine Fmoc-SPPS

CleavageCleavage

TFA 80-95% + Scavengers per 1-3 h

ScavengersScavengersNucleofili che reagiscono con specie cationiche altamente reattive

che si formano dai gruppi protettori e dalla resina

Acqua

1,2 Etanditiolo (EDT)

Tioanisolo

Fenolo

Triisopropilsilano (TIS)

TFA/tioanisolo/H2O/Fenolo/EDT82.5 5 5 5 2.5

Reagent K

CouplingCoupling

R C

O

OH R C

O

XR'NH2

R C

O

NHR' + HX

R C

O

N

X

H

R'

H

Gruppo attivatore

CarbodiimmidiCarbodiimmidi

C NN C NNC NN

N

XNHY

RHN C N R

R N C N R

O

OX

NHY

O

O

XNHY

O

NH

R'H

RNH2

NH

NH

O

RR

DCC DIC EDC

Base

Base: DIEA, TEA, NMM, DMAPO-acilisourea

Migrazione acilica O → N Racemizzazione C N

HN

O

RR

XO

CHNN

O

RR

XO

Carbodiimmidi + HOBtCarbodiimmidi + HOBt

XNHY

RHN C N R

R N C N R

O

OX

NHY

O

O

XNHY

O

NH

R'H

RNH2

NN

N

OH

XNHY

O

ONN

N

NN

N

OH

N NN

N

OH

N

O

O

OH

NN

NOH

O

HOAtHOAt HOSuHOSu HOOBtHOOBt

MiscellaneaMiscellanea

YHN

R

OH

O

YHN

R

O

O O

NHY

R

DIC

YHN

R

Cl

OYHN

R

O

O

X

NO2

F

F

F

F

F

N NO

NN

CDI

YHN

R

N

O

N

Coupling ReagentsCoupling Reagents

NN

NOH

P(NMe2)3, CCl4

THF, -30°C NN

NOP+(NMe2)3

Cl-KPF6, H2O

NN

NOP+(NMe2)3

PF6-

HOBt incorporato direttamente nella struttura dell’attivatore

BOPBOP

Sali di fosfonioSali di fosfonio

Sali di uronioSali di uronio

NN

NOH

CO(NMe2)2, COCl2

THF NN

N+O-

(H3C)2NN(CH3)2+

Cl-KPF6, H2O

NN

N+O-

(H3C)2NN(CH3)2+

PF6-

HBTUHBTU

Sali di FosfonioSali di Fosfonio

YHN

R

O-

O

NN

N O P+NMe2

NMe2

NMe2

YHN

R

O

O

P+(NMe2)3

-OBt

YHN

R

OBt

O

XNH2

YHN

R

NHX

O

NN

NO P+

N

NN

PF6-

PyBOPPyBOP

Sali di UronioSali di Uronio

YHN

R

O

O-N

NN+O-

(H3C)2NN(CH3)2+

YHN

R

O

O

N

N+-OBt

YHN

R

O

OBt

N

NO

N

NN

N+O-

(H3C)2NN(CH3)2+

PF6-

NN

N+O-

(H3C)2NN(CH3)2+

BF4-

HATUHATU TBTUTBTU

NN

N+O-

(H3C)2NN(CH3)2

ClPF6

-

+

HCTUHCTU

Siamo pronti!Siamo pronti!

YHN

R

O

OH + H2N

R'

O

OX YHN

HN

R

O R'

O

O

X H2N

HN

R

O R'

O

O

X

H2N

HN

R

O R'

OH

O

Fase Fase liquidaliquida

Fase Fase SolidaSolida

1.1 eq. aa1.1 eq. attivatore1.1 eq. HOBt 2 eq. ammina

5 eq. aa5 eq. attivatore5 eq. HOBt10 eq. ammina

Gruppo COOH terminale protetto come estere

Gruppo COOH terminale attaccato a resina

Work-up: estrazione, purificazione

Work-up:filtrazione

Problemi

Sintesi in fase liquida: Solubilità del peptide

Sintesi in fase solida: Capacità del gruppo

amminico di affacciarsi al solvente

RisoluzioneRisoluzione

Evitare la formazione di legami idrogeno intermolecolari

(Hmb)-amminoacidi

Pseudoproline

Isoacil dipeptidi

Microonde

(Hmb)-amminoacidi(Hmb)-amminoacidi2-Hydroxy-4-methoxybenzyl2-Hydroxy-4-methoxybenzyl

H2N

R

O

O

N

R'

OPfp

O

Fmoc

MeO OFmoc

N

R'HN

O

Fmoc

MeO OFmoc

R'

O

O

HN

R'HN

O R'

O

O

OH

MeO

FmocNH-CHR''-CO-ActHN

R'HN

O R'

O

O

O

MeO

FmocNH-CHR''-CO

N

R'HN

O

MeO OFmoc

R'

O

OO

FmocNH-CHR''

N → O acyl transfer

PseudoprolinePseudoprolineFmocHN

R

N

O

OX

O OH

X= H, CH3 H2N

R

N

O

OX

O OH

TFA

H2N

RHN

OOHX

OH

O

PseudoprolinePseudoproline

Isoacil DipeptidiIsoacil DipeptidiFmocHN

O

O

R'

BocHNOH

O

FmocHNO

O

R'

BocHN

HN

O R''

peptide

O

1) Fmoc SPPS2) TFA

HpeptideNHO

O

R'

+H3N

HN

O R''

peptide

O

OH

Disaggregato

Solubile

1) HPLC2) pH 7.4

HpeptideNHO

O

R'

H2N

HN

O R''

peptide

O

OH

HN

O R''

peptide

O

OHNH

OHO

HpeptideNH

R'

Aggregato

Poco solubile

MicroondeMicroonde

Ponti S-SPonti S-S

Contribuiscono alla formazione della

struttura tridimensionale di peptidi e

proteine

Importanti per l’attività

Ossidazione di due residui di cisteina

HN CHC

CH2

O

S

FmocHN CHC

CH2

O

S

H3COCHN Ph Ph

Ph

HN CHC

CH2

O

S

H3COCHN

HN CHC

CH2

O

S

Ph Ph

Ph

C

O

TFA

HN CHC

CH2

O

S

HHN CHC

CH2

O

SH

H3COCHN

HN CHC

CH2

O

S

H3COCHN

HN CHC

CH2

O

SH

C

O

X

1

HN CHC

CH2

O

S

HHN CHC

CH2

O

S

H3COCHN

HN CHC

CH2

O

S

H3COCHN

HN CHC

CH2

O

S

C

O

X

2

HN CHC

CH2

O

S

HHN CHC

CH2

O

S

HN CHC

CH2

O

S

HN CHC

CH2

O

S

C

O

X

1

H2O (40 μM)

NaOH, TRIS

H2O2

2

AcOH/H2O

I2, MeOH

Ac. Ascorbico

Distacco del gruppo Boc

Si aggiunge alla resina una soluzione di TFA in DCM (50%, 10 mL/g resina) e si lascia sotto agitazione per 5 min.Dopo la fitrazione si aggiunge ancora TFA/DCM e si agita per ulteriori 20 min.La resina viene poi lavata con DCM (2x) e IPA (2x).

R NH

O

O CCH3

CH3CH3

HXR N

H

OH+ X

O CCH3

CH2CH3

R NH

OH

O +

RNH3+ X- + CO2

H2CCH3

CH3

+ HX

H

Distacco del gruppo Boc

(Fase liquida)

L’ammina N-Boc-protetta viene posta in un pallone ad un collo e raffreddata a 0°C con un bagno di ghiaccio. Successivamente viene aggiunta una soluzione di HCl in diossano (4M, 1mL per 100 mg) e la miscela di reazione viene lasciata sotto agitazione, a t.a. fino a quando la TLC non ha evidenziato la scomparsa del prodotto di partenza. Il solvente viene fatto evaporare ( HCl!) e il residuo ottenuto

lavato con Et2O (x3).

Distacco del gruppo Fmoc

Si aggiunge alla resina una soluzione di piperidina in DMF (40%, 10 mL/g

resina) e si lascia sotto agitazione per 5 min.

Dopo la fitrazione si aggiunge ancora piperidina/DMF e si agita per

ulteriori 15 min.

La resina viene poi lavata con DMF (6x)

H CH2

O

O

NH RN

H

-O

O

NH RN

H H

CH2

CH2 N

NH2 RCO2

Introduzione del gruppo Boc

L’ammina libera viene dissolta in un solvente opportuno (10 mL/mmol) e

alla soluzione viene aggiunta TEA (1 o 2 eq.) fino a pH basico ed infine

Boc2O (2 eq.). La miscela di reazione viene lasciata sotto agitazione

overnight. Al termine della reazione (controllo mediante TLC) si lava la fase

organica con H20 e una soluzione satura di NaCl. La fase organica viene

seccata con Na2SO4 anidro e fatta evaporare. Il grezzo ottenuto viene

purificato mediante colonna cromatografica.

Introduzione del gruppo Fmoc

L’ammina cloridrata viene dissolta in una soluzione di Na2CO3 (0.6M, 7

mL/mmol) e alla soluzione viene aggiunto FmocOSu (2 eq.) sciolto in acetone

(5 mL/mmol). La miscela di reazione è lasciata sotto agitazione per 24 h.

Al termine della reazione (controllo mediante TLC) la miscela viene diluita con

H2O e la fase acquosa estratta con AcOEt (3x). Le fasi organiche riunite

vengono lavate con H2O e una soluzione satura di NaCl, seccate con Na2SO4

e fatte evaporare.

Il residuo ottenuto viene purificato mediante colonna cromatografica.