UNIVERSITÀ DI PISA - CORE · 2017. 3. 22. · La morfometria geometrica è un approccio recente...
Transcript of UNIVERSITÀ DI PISA - CORE · 2017. 3. 22. · La morfometria geometrica è un approccio recente...
UNIVERSITÀ DI PISA
Dipartimento di Biologia
Corso di Laurea Magistrale in Biologia Marina
Anno Accademico 2013/2014
Studi di morfometria geometrica su esemplari di tartaruga marina comune
(Caretta caretta; Linnaeus, 1758) recuperati nelle acque antistanti l’isola di
Lampedusa.
Relatori: Dott. Paolo Casale
Prof. Paolo Luschi Candidato: Alessandro Rigoli
1
Sommario
Riassunto ................................................................................................................ 3
Abstract .................................................................................................................. 4
1. INTRODUZIONE .................................................................................................... 5
1.1 Le tartarughe marine ........................................................................................ 5
1.2 Tartarughe nel Mediterraneo ........................................................................ 10
1.3 La tartaruga comune nel Mediterraneo .......................................................... 12
1.4 Morfologia della tartaruga comune Caretta caretta ....................................... 14
1.5 Studi morfometrici ......................................................................................... 16
1.5.1 Cenni storici sulla morfometria ................................................................. 16
1.5.2 La morfometria tradizionale ...................................................................... 16
1.5.3 La morfometria geometrica ....................................................................... 17
1.5.4 Perché utilizzare l’approccio di morfometria geometrica sulle tartarughe
marine? .............................................................................................................. 20
1.5.5 Studi geometrici sulle tartarughe marine .................................................. 20
1.6 Scopo della tesi .............................................................................................. 23
2. MATERIALI E METODI ......................................................................................... 24
2.1 Area di studio ................................................................................................. 24
2.2 Raccolta dei dati e studio bidimensionale ...................................................... 25
2.3 Scelta dei landmark ........................................................................................ 27
3. RISULTATI ........................................................................................................... 39
3.1 Carapace ........................................................................................................ 39
3.2 Piastrone ........................................................................................................ 44
3.3 Parte dorsale della testa ................................................................................. 48
3.4 Testa laterale .................................................................................................. 52
3.4.1 Testa laterale destra .................................................................................. 52
3.4.2 Testa laterale sinistra ................................................................................ 56
3.5 Pinna anteriore ............................................................................................... 60
3.5.1 Pinna anteriore destra ............................................................................... 60
2
3.5.2 Pinna anteriore sinistra ............................................................................. 64
4. DISCUSSIONE ..................................................................................................... 68
4.1 Carapace e piastrone.................................................................................... 68
4.2 Testa ............................................................................................................ 69
4.3 Pinne anteriori ............................................................................................. 70
5. CONCLUSIONI .................................................................................................... 72
Future direzioni .................................................................................................... 73
Bibliografia ........................................................................................................... 74
Appendice 1: Procedura standard per eseguire le foto e per il posizionamento
dei landmark ........................................................................................................ 88
Appendice 2: Tabelle ........................................................................................... 89
Ringraziamenti ..................................................................................................... 96
3
Riassunto
La morfometria geometrica è un approccio recente utile nello studio della forma che permette di
confrontare le parti morfologiche e anatomiche di un organismo e di quantificarne le informazioni
geometriche relative al cambiamento di forma, in modo da visualizzare le differenze tra i singoli
individui e descrivere tali cambiamenti in modo ripetibile e oggettivo. Nella presente tesi, è stato
studiato un campione di 58 esemplari di tartarughe marine comuni recuperato nelle acque intorno
all’isola di Lampedusa (Agrigento) nel periodo da settembre a novembre 2012 e da maggio ad
ottobre 2013, al fine di valutare la variabilità morfologica in strutture differenti del corpo e le loro
modifiche allometriche. In particolare è stata studiata la morfometria geometrica di carapace,
piastrone, testa e delle pinne anteriori delle tartarughe, le cui dimensioni erano comprese tra 17,7
e 78,8 cm di lunghezza curva del carapace. Le fotografie digitali che sono state scattate ad ogni
parte anatomica sono state analizzate impiegando un totale di 90 punti di riferimento omologhi
(landmark). I risultati mostrano che il carapace mostra una restrizione simultanea in larghezza ed
un aumento di lunghezza con una leggera modifica degli scudi vertebrali, mentre gli altri scudi
rimangono pressoché invariati. La testa si allunga e si restringe nel punto di attacco al collo, e
mostra un aumento della lunghezza del becco a livello del rostro e della mascella superiore, oltre
ad uno spostamento posteriore dello scudo postoculare e dello scudo sopraoculare. Le pinne
anteriori mostrano un restringimento in larghezza e una leggera variazione nella posizione delle
unghie. Tutte queste modifiche morfometriche sono state discusse in relazione al loro valore
adattativo per l’animale.
4
Abstract
Geometric morphometrics is a relatively recent approach to the study of the form that allows to
compare different morphological and anatomical parts of an organism and to quantify the
geometrical information related to the change in shape of various body parts, in order to view the
differences between the individuals and to describe such changes in shape in a repeatable and
objective way. We studied 58 loggerhead sea turtles, recovered in the waters around Lampedusa
Island (Italy) in the period 2012-2013, in order to asses morphological variability in different body
structures and their possible allometric changes. Specifically, we studied geometric
morphometrics of the carapace, plastron, head, and the front flippers of loggerheads ranging
between 17,7 and 78,8 cm in curved carapace length. Digital photographs were taken for each
anatomical part of each turtle and analyzed through a total of 90 landmark. The results show that,
with growth, the carapace displays a simultaneous restriction in width and a stretching with a
slight modification of the vertebral scutes, while the large scutes remain unchanged. The head
stretches and shrinks at the attachment to the neck, and shows an increase in the length of the
beak at the level of the rostrum and of the upper jaw, and a displacement of the postocular and
supraocular scales. The front flippers show a variation at the level of the positioning of the nails
and a narrowing width. The possible adaptive values of such changes are discussed.
5
1. INTRODUZIONE
1.1 Le tartarughe marine
Le tartarughe marine fanno la loro comparsa sulla Terra nel Triassico, intorno ai 200 milioni di anni fa, e per
i successivi 100 milioni di anni, hanno condiviso gli oceani con altri rettili marini. Dalla fine del Cretaceo,
mentre i grandi rettili andavano incontro all’estinzione, le tartarughe marine sono sopravvissute fino ai
giorni nostri. Le specie attualmente viventi si sono originate tra i 60 e i 10 milioni di anni fa (Hendrickson,
1980).
Le sette specie di tartarughe marine oggi esistenti appartengono alla Classe Reptilia, Sottoclasse Anapsida,
Ordine Testudines, Sottordine Cryptodira , la quale si divide in due Famiglie: quella delle Dermochelydae e
delle Cheloniidae (Pritchard 1997).
La prima comprende una sola specie, la tartaruga liuto (Dermochelys coriacea; Vandelli, 1761), mentre la
seconda comprende le sei rimanenti specie (Bowen, 2003), la tartaruga comune (Caretta caretta; Linnaeus,
1758), la tartaruga verde (Chelonia mydas; Linnaeus, 1758), la tartaruga embricata (Eretmochelys imbricata;
Linnaeus, 1766), la tartaruga di Kemp (Lepidochelys kempii; Garman, 1880), la tartaruga olivastra
(Lepidochelys olivacea; Eschscholtz, 1829) e la tartaruga dal dorso piatto (Natator depressus; Garman,
1880) unica tra tutte le specie di tartaruga a non mostrare comportamento migratorio (Limpus et al., 1988).
Il corpo di questi rettili è racchiuso in una corazza che consiste di un carapace dorsale e di un piastrone
ventrale. La corazza fa parte del corpo dell’animale, tanto da essere fusa con le vertebre toraciche e con le
costole, offrendo protezione all’animale come un’armatura (Hickman et al., 2004).
Poiché le costole sono fuse con la corazza, le tartarughe marine, come quelle terrestri, non possono
espandere la gabbia toracica per respirare, e per farlo utilizzano muscoli addominali e pettorali come un
diaframma (Hickman et al., 2004).
Al contrario delle tartarughe terrestri, quelle marine non possono retrarre la testa e gli arti all’interno della
corazza. Infatti sono proprio gli arti ad aver subito le maggiori modifiche fino a diventare un valido
compromesso tra il nuoto e la locomozione a terra (Pritchard and Trebbau 1984; Wyneken 1997). In
particolar modo gli arti anteriori, molto sviluppati, si sono modificati in vere e proprie pinne natatorie
(Castro e Huber, 2011), dotate di una forte capacità propulsiva, mentre le pinne posteriori esplicano una
funzione timoniera (Castro e Huber, 2011).
Nelle tartarughe marine, l’apparato boccale si presenta con mascelle prive di denti, ma ricoperte da una
guaina cornea affilata e leggermente ricurva anteriormente, detta ranfoteca, che va a costituire il
caratteristico “becco”, che consente di afferrare e triturare il cibo, costituito da varie specie di molluschi,
crostacei, echinodermi, alghe e meduse (Wyneken, 2005).
6
Il ciclo vitale di una tartaruga marina (Fig. 1) avviene completamente in mare, eccezion fatta per le fasi di
deposizione e incubazione delle uova che avvengono sulla terraferma. L’accoppiamento avviene
prevalentemente nelle acque antistanti le spiagge di nidificazione, che presumibilmente sono l’unico posto
dove i partner possono incontrarsi, ma non è escluso che possa avvenire in zone lontano da esse (Limpus et
al., 1992).
Inizialmente la femmina riceve una serie di morsi e colpi diretti al carapace e al collo inferti dal maschio con
le lunghe unghie ricurve delle pinne anteriori. In seguito avviene la monta durante la quale il maschio,
trattenendosi con le pinne anteriori al carapace della femmina, trasferisce il proprio sperma all’interno
della cloaca della femmina mediante il proprio organo copulatorio, costituito da una doccia ermetica
ripiegata. Per Caretta caretta quest’ultima fase può durare anche diverse ore e il periodo durante il quale
avviene l’accoppiamento fino a sei settimane (Miller et al., 2003).
Terminato l’accoppiamento, i maschi, tornano nelle zone di alimentazione, precedentemente occupate,
mentre le femmine si dirigono verso le spiagge per deporre le uova (Miller, 1997).
Le femmine compiono in genere diverse emersioni sulla spiaggia durante la stessa stagione riproduttiva,
deponendo ogni volta. Il processo ha uno schema di base uguale per tutte le specie e comprende una fase
di risalita della spiaggia dal mare fino al sito idoneo per la nidificazione, lo scavo del nido, la deposizione
delle uova, la copertura del nido e il ritorno al mare (Miller, 1997).
Le uova schiudono dopo circa 60 giorni di incubazione sotto la sabbia. Un ruolo fondamentale nello
sviluppo delle uova è ricoperto dalla temperatura della sabbia che va a differenziare il sesso degli embrioni
all’interno delle uova (Mrosovsky, 1980; Carthy et al., 2003 e letteratura ivi citata). In particolare, le
temperature più fredde producono maschi mentre quelle più alte femmine (Miller, 1997) anche se il valore
soglia in corrispondenza del quale si ha il passaggio da un sesso all’altro (piovatal temperature) varia da
specie a specie. Le uova, solitamente, si schiudono di notte, e i piccoli raggiungono la superficie scavando
attraverso la sabbia e immediatamente si dirigono verso il mare.
L’orientamento dei piccoli (hatchling) verso il mare è suddiviso in 3 diverse fasi, ognuna mediata da un
sistema differente: fototassia, meccanotassia e magnetotassia (Lohmann et al., 1997).
La prima fase prevede l’utilizzo di input visivi grazie ai quali i piccoli si indirizzano verso il mare, che in
genere si trova nella parte più luminosa dell’orizzonte poiché riflette la luce delle stelle (fototassia positiva;
Lohmann et al., 1997). Una volta raggiunta la linea di battigia inizia la seconda fase, basata su stimoli
meccanici provenienti dalle onde: in questa zona infatti le onde si dispongono in modo parallelo alla
spiaggia, per cui i piccoli si riferiscono agli impulsi meccanici provenienti dal moto ondoso compiendo un
movimento con direzione perpendicolare a quella delle onde e quindi alla linea di costa (meccanotassia;
Lohmann et al., 1997). Essi poi continuano il loro movimento attivo cercando di raggiungere le zone a largo
(Lohmann et al.,1997; Lohmann, 1991), mantenendo tale orientamento anche in mare aperto e nella zona
oceanica, e utilizzando in questa terza e ultima fase stimoli derivanti dal campo magnetico terrestre
7
(magnetotassia, Lohmann et al., 1997). In seguito gli hatchling entrano in una fase definita “swimming
frenzy” caratterizzata da un nuoto “frenetico” che dura circa 3 giorni (Bolten 2003b e letteratura ivi citata).
In genere, quando cominciano ad alimentarsi, i piccoli sono ancora in una zona neritica, anche se questo
può dipendere dalle caratteristiche oceanografiche locali, come temperatura dell’acqua e direzione delle
correnti (Bolten, 2003b). Dopo la fase frenzy i piccoli iniziano a frequentare la zona oceanica. Nella maggior
parte delle specie, essi cominciano migrazioni oceaniche di sviluppo all’interno dei principali sistemi di
correnti oceaniche, rimanendo in ambiente oceanico per molto tempo (probabilmente fino a 10-15 anni),
continuando a muoversi per lunghe distanze sfruttando il sistema di correnti (Luschi 2013).
Il passaggio dalla zona neritica a quella oceanica è variabile da specie a specie (Bjorndal et al., 2000).
La terminologia scientifica utilizzata (Musick e Limpus, 1997) per riferirsi alle varie classi di età delle
tartarughe, che occupano questi diversi habitat, comprende: hatchling, i piccoli appena nati, ancora sulla
spiaggia o già in mare, che non hanno ancora iniziato ad alimentarsi; juveniles, termine per indicare gli
esemplari “giovani”, che vivono in ambiente oceanico o neritico, e che non hanno ancora raggiunto la
maturità sessuale, ed infine adults, o adulti, ovvero gli esemplari che hanno dimorfismo sessuale e che
hanno raggiunto la taglia in corrispondenza della quale iniziano a riprodursi.
Nella maggior parte delle specie, inclusa Caretta caretta, questa prima fase di sviluppo in ambiente
oceanico, della durata di alcuni anni, è seguita da una seconda fase trascorsa in ambiente neritico (Bolten,
2003). Al contrario di altre specie (Dermochelys coriacea e Lepidochelys olivacea), i giovani di tartaruga
comune lasciano gli habitat oceanici di sviluppo prima di raggiungere la maturità sessuale, spostandosi
verso le aree neritiche e scegliendo un’alimentazione bentonica e abitudini più sedentarie in specifici siti di
foraggiamento (Bolten, 2003). In Caretta, i dati più recenti hanno mostrato che la transizione dalla zona
oceanica a quella neritica è reversibile e non obbligatoria e perfino la residenza in ambiente neritico non è
sempre una regola (Luschi, 2013). In questo modo, gli adulti e i giovani di grandi dimensioni si concentrano,
in periodi non-riproduttivi, nelle acque poco profonde della piattaforma continentale, a profondità minori
di 50 m (Epperly et al., 1995; Lutcavage e Lutz, 1997), dove si alimentano prevalentemente d’invertebrati
bentonici come crostacei e molluschi (Bjorndal, 1997).
8
Figura 1. Ciclo vitale delle tartarughe marine. A diverse fasi vitali corrispondono differenti habitat a cui gli animali
accedono: dopo la nascita sulla spiaggia di nidificazione (Nesting Beach), i piccoli attraversano una fase pelagica di
accrescimento in mare aperto (Open Ocean Surface Feeding Zone) che si protrae per svariati anni. Prima del
raggiungimento della maturità sessuale, le tartarughe si portano poi in zone di foraggiamento nell’ambiente neritico
(Coastal Shallow Water Benthic Zone(s)), che sono comuni in immaturi e adulte. Da adulti, compiono migrazioni
riproduttive (Breeding Migration) verso le zone di riproduzione dove si ha accoppiamento (Mating) e la deposizione
delle uova. I maschi e le femmine adulti ritornano poi alle aree di foraggiamento (Return to Feeding Areas) dove
risiedono. Da Miller, 1997.
Le tartarughe marine, che per necessità biologica frequentano sia l’habitat terrestre costiero sia quello
marino (Bolten, 2003a), sono sottoposte a una maggiore varietà di rischi e di minacce rispetto ad altri taxa
che frequentano un unico habitat. Le problematiche più gravi che minacciano le tartarughe marine sono di
natura antropica (Mingozzi et al, 2006). Per quanto riguarda l’ambiente emerso, il degrado delle spiagge è
la causa primaria che influisce sulle delicate fasi della nidificazione, assieme ad altri fattori quali: il turismo
balneare nei siti di nidificazione (Sindaco et. al., 2006) e la presenza umana (soprattutto notturna) sulla
spiaggia, che disturba le femmine nidificanti, con conseguente diminuzione dei tentativi di nidificazione; la
presenza di fonti di luce artificiale, provenienti da strade o strutture ricettive/abitative che disturbano le
femmine nidificanti e interferiscono con l’orientamento dei neonati al momento della schiusa
9
(Witherington e Martin, 1996); il passaggio di mezzi meccanici sulla spiaggia, che può disturbare le femmine
in nidificazione, o danneggiare il nido (Arianoutsou, 1988; Mann, 1977; Witherington, 1999); la presenza
fisica di attrezzature degli impianti balneari e i rifiuti lasciati dai bagnanti e da chi frequenta le spiagge, che
possono essere un forte deterrente per le femmine in deposizione e possono interferire con il
raggiungimento del mare da parte dei neonati (Arianoutson, 1988; National Research Council, 1990;
Witherington, 1999); le tecniche di protezione delle spiagge e la costruzione di barriere artificiali vicino alla
costa, che possono bloccare le femmine riproduttive prima di aver raggiunto la spiaggia o il punto per
costruire il nido, e produrre ostacoli tali da intrappolare le femmine prima o dopo la deposizione
(Witherington, 1999). Ulteriori fattori di rischio possono essere: l’alterazione delle caratteristiche
geomorfologiche delle spiagge, dovuta al disequilibrio tra i fenomeni di erosione-accumulo, che possono
modificare la pendenza delle spiagge, la granulometria delle spiagge, con ricadute sia sul comportamento
delle femmine nidificanti che sullo sviluppo embrionale (Balletto et al., 2003); il cambiamento delle
proprietà chimico-fisiche delle spiagge a causa dell’alterazione dei sedimenti fluviali o di scarichi non
depurati; l’alterazione della granulometria della spiaggia a seguito di attività di prelievo della sabbia, che è
in grado di rendere difficoltoso per le femmine trovare un punto idoneo in cui deporre le uova,
incrementando il numero dei tentativi falliti (Sella, 1982) o intrappolando gli esemplari che risalgono la
spiaggia nelle zone fangose venutesi a creare a causa della mancanza di sabbia (Yerli e Demirayak, 1996); le
opere di rifacimento delle spiagge, che sono altresì in grado di indurre cambiamenti tali da variare il
comportamento di nidificazione delle tartarughe, il periodo d’incubazione delle uova, la sex ratio dei piccoli,
gli scambi di gas delle uova e la percentuale di nati (Ackerman, 1980; Hanson et al., 2000; Mortimer, 1982).
Inoltre la predazione di uova e neonati, soprattutto in aree a bassa densità di deposizione esposte a fattori
di pressione antropica, pur essendo un fattore di rischio naturale assume, in un ecosistema alterato
dall’uomo, un ruolo non trascurabile tra i fattori di minaccia di una popolazione (Stancik, 1982).
Esistono poi altre cause di mortalità o di effetti sub letali che possono incidere in generale sulla vita delle
tartarughe marine. Alcune di queste cause in ambiente marino sono l’esposizione ai vari contaminanti
chimici di sintesi e non, la contaminazione con il petrolio e l’ingestione accidentale di detriti solidi di origine
antropica (Caliani et al., 2010; Campani et al., 2013). La coincidenza, durante la stagione estiva, tra
l’aumento del numero delle imbarcazioni in mare e l’avvicinamento delle tartarughe alle coste, ha come
conseguenza l’aumento della probabilità di collisione tra questi animali e le chiglie e/o le eliche dei natanti
(Basso, 1992). Non ultimo, l’eventuale ingestione di cibo contaminato e di frammenti di catrame (Balazs,
1985) può interferire con le capacità riproduttive e portare a disfunzioni fisiologiche (Lutcavage et al.,
1995) e in esemplari molto piccoli può ostruire la ranfoteca o persino l’esofago provocandone la morte
(Lutcavage et al., 1995). Anche i detriti antropogenici presenti in mare costituiscono una minaccia poiché
possono rappresentare motivo d’intrappolamento diretto delle tartarughe marine, oppure essere ingeriti,
aumentando cosi il rischio di mortalità. Le tartarughe ingeriscono infatti un’ampia varietà di oggetti sintetici
10
(Balazs, 1985; Basso, 1992; Gramentz, 1988) tra cui le buste di plastica o altri detriti di natura
semitrasparente che possono essere scambiati per meduse o altri organismi gelatinosi come ctenofori o
tunicati (Baini et al., 2012; Gramentz, 1988).
La minaccia più importante e deleteria è però legata alla cattura accidentale (by catch) delle tartarughe
marine mediante diversi strumenti da pesca, nel Mediterraneo questo è un fenomeno di ampia portata che
conta annualmente un minimo di 132.000 catture all’anno (39.000 strascico, 57.000 palangaro di superficie,
13.000 palangaro di fondo e 23.000 reti da posta) di cui 44.000 mortali (Casale, 2011).
Tutte le specie di tartarughe marine, ad eccezione della tartaruga dal dorso piatto, per la quale non ci sono
dati a disposizione, sono considerate vulnerabili o in pericolo di estinzione a livello globale (Schuyler, 2013).
Caretta caretta è considerata endangered sia, a livello regionale e globale, ed è perciò protetta da
normative internazionali e, in particolare, da numerose convenzioni tra le quali la Convenzione di
Barcellona e il relativo protocollo aggiuntivo (Margaritoulis et al., 2003) che prevede misure di protezione e
di conservazione per la specie vietandone l’uccisione, il commercio e il disturbo durante i periodi di
riproduzione, migrazione, svernamento e altri periodi in cui gli animali sono sottoposti a stress fisiologici. A
partire dal 1992 è in vigore la “Direttiva Habitat” (n.92/43/CEE) che include le tartarughe marine come
specie “prioritarie” e mira alla costituzione di una rete ecologica di siti protetti su tutto il territorio
dell’Unione. Tale direttiva è conosciuta anche con il nome di “Natura 2000” (Margaritoulis et al., 2003).
Il controllo dell’inquinamento, le norme del mercato sui prodotti derivati dalle tartarughe e la protezione
delle aree di riproduzione potrebbero contribuire alla loro tutela (Castro e Huber, 2011). Ogni attività di
conservazione risulta tanto più efficace quanto migliore è la conoscenza della biologia e del
comportamento della specie presa in esame. Quindi è necessaria una visione complessiva del problema che
tenga in considerazione tutti gli aspetti biologici, ecologici e comportamentali degli animali studiati nonché
dell’habitat dove essi vivono, in modo da pianificare delle corrette misure di conservazione (Primack, 1998).
1.2 Tartarughe nel Mediterraneo
Il Mar Mediterraneo è frequentato da tre specie di tartarughe marine (Casale e Margaritoulis, 2010). La
specie più frequente è la tartaruga comune (Fig. 2), che nidifica lungo le coste del bacino centro-orientale
(Casale e Maragaritoulis, 2010) comprese le coste meridionali italiane (Balletto et al., 2003; Mingozzi et al.,
2006; Piovano et al., 2006; Bentivegna et al., 2008).
La tartaruga verde (Fig. 3) è abbastanza rara nel Mediterraneo Occidentale e la sua distribuzione, per motivi
legati alla maggiore temperatura dell’acqua, è limitata alla zona sudorientale del bacino, dove essa nidifica
(Kasparek et al., 2001). Ha una dieta erbivora, nel Mediterraneo come altrove, nutrendosi di alghe e
11
fanerogame marine, a differenza della maggior parte delle altre tartarughe marine che sono carnivore
(Bjorndal, 1997 ; Luctcavage e Lutz, 1997).
La tartaruga liuto (Fig. 4), specie dalle abitudini pelagiche, non nidifica nel Mediterraneo. Esemplari di
origine atlantica entrano nel bacino per scopi alimentari (Casale et al. 2003). La dieta è costituita
principalmente da organismi gelatinosi come tunicati, cnidari e ctenofori (Fossette et al., 2010; James e
Herman, 2001). La tartaruga liuto è caratterizzata da un’estrema riduzione delle ossa del carapace e del
piastrone, sostituite da piccole placche ossee di forma poligonale sul carapace, è inoltre priva di squame sul
carapace e di artigli, e raggiunge la taglia più grande tra tutte le tartarughe marine esistenti (Wyneken.,
2005).
Altre due specie (Eretmochelys imbricata e Lepidochelys kempii) sono state segnalate nel Mediterraneo,
ma la loro presenza deve essere ritenuta accidentale e imputabile al trasporto passivo nel bacino
soprattutto gli individui neonati o molto giovani (Castro e Huber, 2011) in quanto le Eretmochelys vivono
nella fascia tropicale dell’Oceano Atlantico e Pacifico, mentre le Lepidochelys sono distribuite
principalmente nelle acque del Golfo del Messico e dell’Oceano Atlantico Occidentale.
Figura 2. Tartaruga comune Caretta caretta.
12
Figura 3. Tartaruga verde Chelonia mydas.
Figura 4. Tartaruga liuto Dermochelys coriacea.
1.3 La tartaruga comune nel Mediterraneo
La tartaruga comune è la specie di tartaruga marina più abbondante e presente in tutto il bacino del
Mediterraneo, il numero d’individui può variare in funzione della stagione e della località geografica
(Margaritoulis et al., 2003).
E’ una specie a distribuzione cosmopolita, ampiamente diffusa nelle acque temperate-calde, subtropicali e
talvolta tropicali di mari ed oceani (Pritchard, 1997).
13
Si ritiene che la colonizzazione del Mediterraneo da parte delle tartarughe comuni sia avvenuta circa 12.000
anni fa, a seguito della dispersione di individui appartenenti alle colonie nidificanti nell’Atlantico
occidentale (Bowen et al., 1993).
I mari italiani sono regolarmente frequentati da esemplari di Caretta, principalmente appartenenti alla
popolazione mediterranea e secondariamente anche da esemplari di origine atlantica (Casale e
Margaritoulis, 2010).
I siti di nidificazione della specie sono localizzati soprattutto nel Mediterraneo centro-orientale e più
precisamente in Grecia, Turchia e Cipro, dove il monitoraggio costante delle spiagge ha permesso una stima
attendibile del numero di deposizioni annue rispettivamente di 3.472, 2145 e 694 nidi all’anno (Casale e
Margaritoulis, 2010).
Un altro importante sito di nidificazione si trova in Libia, con 726 deposizioni annue (Casale e Margaritoulis,
2010), ma deposizioni avvengono anche lungo le coste di Tunisia, Egitto, Israele, Siria e Libano (Clarke et al.,
2000; Demirayak et al., 2002; Margaritoulis et al., 2003).
In Italia le zone di maggior interesse sono la costa ionica calabrese e le coste delle isole Pelagie (Sicilia), con
una stima complessiva di 30-40 nidi all’anno in totale (Balletto et al., 2003; Mingozzi et al., 2007; Piovano et
al., 2006). Altri eventi di nidificazione sono documentati in differenti zone dell’Italia meridionale, quali le
coste centrali della Sicilia meridionale, della Campania, della Sardegna meridionale e sudoccidentale e della
Puglia orientale (Bentivegna et al., 2008; Mignozzi at al., 2006; Piovano et al., 2006), anche se l’estensione
geografica e l’assenza di un monitoraggio costante non permettono di conoscere l’effettiva entità del
fenomeno.
Il ciclo vitale delle tartarughe comuni inizia con la deposizione di circa 110 uova da parte delle femmine in
una spiaggia di nidificazione, nella fascia tropicale o subtropicale (Miller et al., 2003). La deposizione delle
uova avviene all’interno di una buca profonda circa 50 cm, che viene scavata nella sabbia durante le ore
notturne o crepuscolari dall’animale stesso attraverso le pinne posteriori, dopodiché la femmina torna in
mare (Miller, 1997). La tartaruga comune può deporre fino a sette nidi in una stagione riproduttiva, ad una
distanza di 14 giorni l’uno dall’altro (Schroeder et al., 2003).
I dati sugli spiaggiamenti e le catture accidentali di tartaruga comune in Italia, suggeriscono che questa
specie sia presente lungo tutta la costa della penisola, anche se con densità variabile a seconda della
regione considerata (Bartoli, 2006; Casale et al., 2010; Centro Studi Cetacei, 2000, 2002, 2004; Fadda et al.,
2006; Meschini et al., 1998, 2006).
La frequente ricattura di femmine in età nidificante (Argano et al., 1992; Lazar et al., 2004; Margaritoulis,
1988) e il ritrovamento d’individui adulti (Lazar e Tyrtkovic, 1995) indicano il Mare Adriatico come
un’importante area di alimentazione e svernamento sia per individui giovani in fase neritica che per gli
adulti (Argano et al., 1992; Lazar et al., 2004; Margaritoulis et al., 2003). Infine recenti studi ecologici e di
14
biotelemetria hanno identificato siti importanti di alimentazione anche nel Mar Tirreno Meridionale e nel
Mar Ionio (Bentivegna et al., 1993; Bentivegna e Paglialonga, 1998; Bentivegna et al., 2003).
La principale (ma non unica) minaccia di origine antropica nei confronti delle tartarughe marine nel
Mediterraneo è legata alla cattura accidentale mediante attrezzi da pesca (Casale, 2011). I dati a
disposizione pongono l’accento sul ruolo delle flotte dei pescherecci in tale contesto, considerando l’alta
percentuale della flotta italiana attiva su tutto il bacino. Le interazioni dovute alla pesca accidentale sono
considerate da anni ormai, anche in Italia, una tra le principali cause di mortalità delle tartarughe marine
(Argano, 1978; Argano e Baldari, 1983; Argano et al., 1992; Basso, 1992; Basso e Cocco, 1986; Bentivegna e
Paglialonga, 1998; Bentivegna et al., 1993; Casale et al., 2008b; Casale et al., 2010; Cocco et al., 1988; De
Metrio e Megalofonou, 1988; De Metrio et al., 1983; Di Palma, 1978). I dati in questo momento disponibili
per l’Italia indicano un numero di catture all’anno di 23.600 esemplari circa di tartaruga, rispettivamente
12.300 mediante palangari pelagici, 700 mediante palangari demersali e 10.600 mediante reti a strascico
(Casale 2011). Tuttavia, vista la parziale copertura in termini di aree e di sforzo di pesca cui queste stime si
riferiscono, è probabile che il numero reale di catture possa essere sottostimato. Purtroppo mancano
ancora dati inerenti ai tassi di mortalità effettiva a seguito di cattura accidentale.
In Italia, il numero di esemplari rinvenuti vivi e in difficoltà è mediamente di circa duecento tartarughe
l’anno sebbene questo valore sia soggetto ad ampie variazioni interannuali e dipenda fortemente dalla
capacità di creare, a livello locale, solide collaborazioni con tutte le categorie coinvolte (Casale et al., 2007).
Tuttavia, considerando le stime delle catture accidentali di cui sopra, è plausibile che gli esemplari curati
presso i centri di recupero rappresentino solo una piccola percentuale delle tartarughe catturate
accidentalmente ogni anno. Per questo motivo è importante che gli esemplari reintrodotti nell’ambiente
marino a seguito della riabilitazione siano in piena salute e che l’attività dei centri di riabilitazione sia posta
all’interno di una più ampia strategia di conservazione mirata alla riduzione in situ delle minacce che
insistono su questo gruppo tassonomico.
1.4 Morfologia della tartaruga comune Caretta caretta
La tartaruga comune (Fig. 5) possiede generalmente un carapace di colore rosso-marrone, a forma di cuore,
striato di scuro nei giovani esemplari, e un piastrone giallastro sempre a forma di cuore, spesso con
macchie arancioni e colorazioni di diversa intensità sui bordi. Lo scudo dorsale del carapace è dotato di
cinque coppie di placche cornee o scudi costali e cinque scudi vertebrali (Wyneken, 2002). Lo scudo
ventrale del piastrone è dotato di sei coppie di scudi: golare, omerale, pettorale, addominale, femorale e
anale (Wyneken, 2002). Caratteristica distintiva delle tartarughe comuni è rappresentata dalla testa e dal
15
becco relativamente larghi (Pritchard e Trebbau 1984). Si pensa che la morfologia della testa e della bocca,
possano essere adattamenti per un’alimentazione basata su crostacei e molluschi (Wyneken, 2005).
Figura 5. Caratteristiche anatomiche della tartaruga comune Caretta caretta.
I piccoli alla nascita sono lunghi circa 5 cm, mentre un esemplare adulto va dagli 80 ai 140 cm circa, con un
peso medio variabile tra i 100 ed i 160 kg.
La Caretta caretta ha dei tempi di maturità sessuale ancora incerti, secondo alcuni autori si aggira tra i 12 e
i 37 anni di età (Bjorndal et al., 2001; Heppell et al., 1996 in Witherington 2003).
La lunghezza curva del carapace (CCL) degli esemplari che si riproducono varia da zona a zona: mentre in
Atlantico tale misura è compresa tra 70 e 109 cm (Dodd, 1988 in Miller et al., 2003), nel Mediterraneo gli
individui nidificanti possono avere una CCL anche inferiore a 60 cm (Margaritoulis et al., 2003). In generale
le femmine di Caretta non si riproducono ogni anno, mentre i maschi, possono riprodursi ogni uno o due
anni (Miller, 1997).
Come in tutte le altre specie di chelonidi, è presente un dimorfismo sessuale che permette la distinzione tra
maschi e femmine sessualmente maturi (Miller, 1997). I maschi, al raggiungimento della maturità sessuale,
mostrano una lunga coda e due resistenti unghie per arto anteriore con cui si attaccano alla femmina
durante l’accoppiamento, mentre le femmine sessualmente mature raggiungono dimensioni maggiori in
termini di lunghezza del carapace e di peso (Miller, 1997).
16
1.5 Studi morfometrici
1.5.1 Cenni storici sulla morfometria
Per secoli, confrontare le caratteristiche anatomiche degli organismi è stato un elemento centrale della
biologia, utile per la classificazione tassonomica degli organismi stessi e per la comprensione della loro
diversità biologica. Alla base di questi studi c’era la descrizione delle diverse forme.
All'inizio del XX secolo, tuttavia, in biologia si è assistito ad un passaggio da studi di tipo descrittivo ad una
scienza quantitativa e l'analisi della morfologia è andata in contro ad una 'rivoluzione di quantificazione'
(Bookstein, 1998).
I dati quantitativi per uno o più tratti misurabili, sono stati ad esempio riassunti come valori medi tra i
gruppi (ad esempio, Bumpus, 1898). Lo sviluppo di metodi statistici tali come il coefficiente di correlazione
(Pearson, 1895), l'analisi della varianza (Fisher, 1935), e analisi delle componenti principali (Pearson, 1901;
Hotelling, 1933) ha dato un ulteriore importanza all’analisi quantitativa.
Alla metà del XX secolo, la descrizione quantitativa della forma morfologica era combinata con analisi
statistiche che descrivevano i modelli di variazione di forma all'interno e tra i gruppi, e da qui iniziarono gli
studi sulla morfometria. La morfometria è lo studio della variazione di forma e la sua covariazione con altre
variabili (Bookstein, 1991; Dryden e Mardia, 1998). Tradizionalmente, la morfometria consiste nell'applicare
analisi statistiche multivariate ai set di variabili di tipo quantitativo quali la lunghezza, la larghezza, e
altezza.
Negli anni 1980-90, si è verificato un cambiamento nel modo di quantificare le strutture morfologiche e
nell’analisi dei dati, quando sono stati sviluppati i metodi che catturavano le strutture morfologiche di
interesse, e durante le analisi venivano conservate le informazioni.
Nel 1993 avvenne la cosiddetta “rivoluzione in morfometria” consistente in un nuovo approccio di
“morfometria geometrica” (Rohlf e Marcus, 1993). A partire dal 1993, sono stati compiuti molti progressi, e
il campo della morfometria geometrica ha raggiunto una fase più matura. Questo grazie ad una maggiore
comprensione dei fondamenti teorici della metodologia morfometrica.
1.5.2 La morfometria tradizionale
Negli anni che vanno dal 1960 al 1970, studiosi di biometria hanno iniziato ad utilizzare gli strumenti
statistici multivariati per descrivere modelli di variazione di forma all'interno e tra gruppi. Questo
approccio, adesso è chiamato morfometria tradizionale (Marcus, 1990; Reyment, 1991) o morfometria
multivariata (Blackith e Reyment, 1971) e consiste nell’applicazione di analisi statistiche multivariate per
insiemi di variabili morfologiche.
17
Solitamente viene usata la misura della distanza lineare, ma vengono anche usati talvolta i rapporti tra le
misure e gli angoli.
Con questi approcci, vengono quantificate le covariazioni nelle misure morfologiche e vengono quantificati i
modelli di variazione all'interno e tra i campioni. Analisi statistiche tipiche sono: l’Analisi delle Componenti
Principali (PCA), l'analisi fattoriale, la Canonical Variates Analysis (CVA), e l’analisi discriminante funzionale.
Molti studi hanno esaminato l’allometria, o i cambiamenti di forma che si riscontrarono in presenza di un
cambiamento di dimensioni (Jolicoeur, 1963) perché le misure di distanza lineare sono solitamente molto
correlate con la dimensione.
Mentre la morfometria multivariata combina statistiche multivariate, per la morfologia quantitativa sono
rimaste diverse difficoltà. Per esempio, in molti metodi sono state proposte correzioni di dimensioni, ma c'è
poco accordo su come debba essere utilizzato il metodo. Questo problema è importante perché diverse
dimensioni di metodi di correzione danno risultati leggermente diversi. In secondo luogo è difficile da
valutare l’omologia delle distanze lineari, perché molte distanze (ad esempio, larghezza massima) non sono
definite da punti omologhi. In terzo luogo, la stessa serie di misure di distanza potrebbe essere ottenuta da
due diverse forme perché la posizione relativa dei punti misurati non viene presa in considerazione. Per
esempio, se la massima lunghezza e larghezza sono stati misurati per due oggetti diversi, entrambi gli
oggetti potrebbero avere la stessa altezza e valori di larghezza, ma essere chiaramente diversi per forma. Ci
si aspetta che il potere della statistica nel distinguere le forme sia meno valido di quanto dovrebbe essere.
Infatti non è solitamente possibile generare rappresentazioni grafiche di forma da una distanza lineare
perché le relazioni geometriche tra variabili non si conservano.
A causa di queste difficoltà, i ricercatori hanno cercato metodi alternativi di quantificazione e nuove analisi
morfologiche. Le informazioni che catturano la geometria della struttura morfologica furono ritenute di
particolare interesse, e successivamente furono sviluppati metodi per analizzare questi dati. Ciò ha incluso i
metodi per lo studio del contorno di un oggetto e studi attraverso punti di riferimento. In concomitanza con
questi progressi, David Kendall e altri statistici hanno sviluppato una teoria per l'analisi statistica della
forma che ha reso possibile l'uso combinato di metodi statistici multivariati e metodi per la visualizzazione
diretta della forma biologica.
Questo nel 1993 prese il nome di " tesi morfometrica", basata sui vari metodi che portano alla "rivoluzione
morfometrica "proclamata da Rohlf e Marcus (1993).
1.5.3 La morfometria geometrica
Il termine ‘morfometria geometrica’ è stato coniato da Leslie Marcus per la prima volta nel 1993 (Rohlf e
Marcus, 1993). Questa tecnica comprende un insieme di metodiche che permettono di quantificare le
18
informazioni geometriche relative alla forma degli oggetti e parti anatomiche, consentendo di individuare e
visualizzare le differenze tra i campioni studiati.
La morfometria geometrica permette di studiare la forma (form) data dalla shape e dalla size (taglia),
valutando shape e size in maniera indipendente (Adams et al., 2004).
Le informazioni legate al fattore taglia contengono importanti indicazioni di tipo adattativo ed evolutivo e
possono esser usati per trarre informazioni sul dimorfismo sessuale e sull’allometria (Klingerberg, 1996,
1998).
Questa analisi consente di preservare l’integrità della forma biologica in due o in tre dimensioni, evitando
che essa si riduca ad una serie di misure lineari e angolari che non includono informazioni riguardanti le
relazioni geometriche dell’intero oggetto. I punti registrati che corrispondono ai landmark (punti omologhi
posti sulle strutture da analizzare) rappresentano le variabili per l’analisi morfometrica.
Per confrontare le configurazioni di landmark delle immagini è necessaria una serie di trasformazioni
matematiche che ne ottimizzano la sovrapposizione: in particolare, l’Analisi Generalizzata di Procuste
trasforma le configurazioni tramite traslazione, scalatura e rotazione dei sistemi di coordinate.
Queste operazioni vengono effettuate con una procedura chiamata Generalized Least Square Procuste
superimposition, meglio nota come Generalized Procuste Analysis (GPA), con cui si ottengono delle nuove
coordinate (shape variables) che sono il risultato della proiezione nello spazio Euclideo tangente allo spazio
della forma di Kendall (Zelditch et al., 2000).
Questa proiezione è necessaria perché molti metodi statistici standard come la regressione, l’analisi della
varianza ed altri richiedono che i dati siano in uno spazio Euclideo piano curvo (Viscosi e Cardini, 2011).
Le informazioni legate al fattore shape contengono l’insieme delle informazioni geometriche che
rimangono quando gli effetti della scalatura, della posizione e della rotazione sono eliminati da un oggetto.
Le misure della size vengono riassunte in un indice, il centroid size (Bookstein, 1986), che esprime la misura
della dispersione dei landmark attorno al centroide ovvero attorno al baricentro dell’oggetto.
La scalatura normalizza la taglia, la traslazione porta a coincidere nello spazio i centroidi di tutte le
configurazioni di coordinate, infine la rotazione ne ottimizza l’orientamento secondo una procedura di
minimi quadrati. Dopo queste trasformazioni, che costituiscono la superimposizione di Procuste, le
differenze di forma possono essere descritte dalle differenze in coordinate dei landmark corrispondenti
negli oggetti, che diventano in questo modo disponibili per analisi multivariate (Fig. 6).
19
Figura 6. Schematizzazione del metodo di superimpostazione di Procuste.(A) Vengono raccolte le coordinate dai dati
grezzi. (B) Le configurazioni di landmark vengono scalate alla stessa dimensione. (C) La traslazione delle configurazioni
di landmark porta a far coincidere nello spazio i centroidi. (D) La rotazione minimizza le distanze tra landmark
corrispondenti. (E) Rappresentazione della distanza di Procuste, descritta dalla radice quadrata della somma delle
distanze al quadrato tra landmark corrispondenti dopo la superimposizione di Procuste.
La distanza di Procuste, che quantifica la differenza di forma tra le configurazioni di landmark, è
determinata dalla radice quadrata della somma delle distanze al quadrato tra i landmark corrispondenti
dopo la superimposizione di Procuste.
La forma media del campione può essere definita come la forma che ha la minore distanza di Procuste
dalle forme individuali (Fig. 6).
La morfometria geometrica permette di visualizzare le differenze di forma come deformazioni di una griglia
cartesiana capace di mettere in evidenza i cambiamenti nelle posizioni dei landmark, fornendo la possibilità
di visualizzare le variazioni della forma in funzione di ipotetiche variabili biologiche.
Nel caso in cui non sia possibile individuare dei punti omologhi sugli oggetti da analizzare, si può effettuare
un’analisi dei contorni, adattando delle curve al contorno dell’oggetto (fitting) e analizzandole
statisticamente come variabili della forma, trasformandole e visualizzandone le variazioni; un limite a
questo tipo di approccio è legato all’incongruenza dei risultati ottenuti con approcci diversi (Loy, 2007).
20
1.5.4 Perché utilizzare l’approccio di morfometria geometrica sulle tartarughe
marine?
La morfometria geometrica permette di visualizzare le differenze di forma preservando l’integrità biologica
delle parti analizzate e mantenendo le relazioni geometriche tra le diverse parti di un organismo o di un
oggetto preso in esame, evitando appunto che le informazioni ottenute si trasformino in una serie di
misure lineari prive di senso.
Certamente lo sviluppo e la diffusione di internet e dei sistemi informatici negli ultimi anni, oltre al
potenziamento dei nuovi programmi statistici, ha permesso alle tecniche di indagine della geometria
morfometrica di divenire una tra le più promettenti tecniche per lo studio delle variazioni morfologiche in
campo biologico (Loy, 2007; Cardini, 2009).
Studi di morfometria possono esser effettuati su qualsiasi oggetto o organismo, quindi anche sulle
tartarughe marine e più precisamente sulle loro strutture anatomiche rigide come ad esempio il carapace, il
piastrone e la testa.
Questi studi possono fornirci informazioni su come queste strutture cambiano in base all’età dell’animale,
in base al sesso, in base alle dimensioni, o in base alla zona geografica di provenienza degli esemplari
analizzati. È possibile ottenere informazioni su quale singola parte di ogni singola struttura presa in esame è
più soggetta a modifiche rispetto ad altre.
Le tecniche della morfometria geometrica si rivelano quindi un importante strumento per svolgere indagini
sui reperti museali o, come nel nostro caso, su individui presenti in centri di recupero che risultano di
particolare importanza visto l’interesse conservazionistico di specie come Caretta caretta.
1.5.5 Studi geometrici sulle tartarughe marine
Non è noto se e come le strutture morfologiche di carapace, piastrone, testa e pinne delle tartarughe
variano in base alla taglia o al sesso dell’animale. Studi di allometria, morfometria lineare e morfometria
geometrica possono contribuire all’ottenimento di informazioni sempre più precise e dettagliate sulle
strutture anatomiche e sulle variazioni di forma delle tartarughe. Questi studi, però, essendo relativamente
recenti (i primi risalgono agli anni 2000), sono presenti in numero ridotto in letteratura e, permettono di
ottenere solo delle informazioni limitate. Tra gli studi di morfometria lineare effettuati sulle tartarughe
marine, i più importanti si sono focalizzati sulle variazioni che si verificano a livello di carapace, piastrone, e
sulle pinne.
Un recente studio ha investigato se la crescita allometrica negli hatchling di tartarughe marine derivi da un
adattamento antipredatorio (Salmon et al., 2013). Gli hatchling di tartaruga verde e di tartaruga comune
che hanno crescita allometrica ovvero che crescono più velocemente in larghezza rispetto che in lunghezza,
21
sono in grado di raggiungere più rapidamente la taglia-limite di protezione dai predatori e quindi non
entrano nella bocca dei pesci delfino (Coryphaena hippurus). Come prova di questa ipotesi, gli autori hanno
misurato di quanto la bocca dei pesci delfino aumenta con la lunghezza e in base a informazioni presenti in
letteratura su questi pesci, è stata determinata la probabilità che una piccola tartaruga, incontrando un
grosso pesce, non fosse soggetta a predazione se cresciuta allometricamente piuttosto che
isometricamente (Salmon et al., 2013).
Nishizawa et al. (2011) hanno studiato come differiscono gli omeri delle differenti specie di tartarughe
marine ed in particolare la loro implicazione sulla locomozione in tartarughe comuni e tartarughe verdi. È
stato visto che le tartarughe verdi hanno omeri relativamente più robusti rispetto alle tartarughe comuni, e
forse questo consente loro di resistere a carichi maggiori pensando alla grande mole dell’animale. In
entrambe le specie è stata osservata una crescita isometrica o allometrica leggermente negativa del
diametro dell’omero rispetto alla sua lunghezza. Le tartarughe marine svolgono quasi completamente il
proprio ciclo vitale in ambiente acquatico, ma durante le deposizioni delle uova le femmine si spostano in
ambiente terrestre, quindi i loro arti devono sia garantire il nuoto e la propulsione in acqua sia la
locomozione sulla terraferma. È stato osservato che le tartarughe verdi di grandi dimensioni sono più
soggette a rischio di frattura degli omeri rispetto a tartarughe di più piccole dimensioni. Anche in ambiente
acquatico il rischio di stress o frattura può aumentare se aumenta la velocità del nuoto. Questo modello
può esser correlato alla possibilità che le tartarughe più piccole nuotino ad una velocità relativamente
veloce rispetto alla lunghezza del proprio corpo (Nishizawa, et al., 2011).
Kamezaki et al. (1997) hanno effettuato degli studi allometrici per valutare l’accrescimento di specifiche
strutture in tartarughe comuni, attraverso diverse misurazioni a livello della testa, del carapace, del
piastrone e delle pinne anteriori e posteriori. È stata così discussa la relazione tra l’allometria e le
caratteristiche di tartarughe comuni in ogni fase vitale. Il campione era suddiviso arbitrariamente in quattro
gruppi in base alla lunghezza del carapace: hatchling, individui pelagici di piccole dimensioni, individui
pelagici di grandi dimensioni e individui bentonici. Negli hatchling, è stata messa in evidenza un’allometria
negativa tra la larghezza basale della pinna anteriore rispetto alla lunghezza del carapace, come per la
lunghezza e larghezza della testa, larghezza e lunghezza della pinna anteriore, lunghezza e larghezza della
pinna posteriore rispetto alla lunghezza del carapace. Questi risultati indicano una dimensione ridotta della
testa e delle pinne in fase di hatchling. Nella fase giovanile è stata messa in evidenza un’isometria tra la
lunghezza delle pinne e la lunghezza del carapace: in questa fase le pinne crescono più velocemente
rispetto che in altre fasi, e questo forse, consente la manipolazione del cibo per portarlo vicino alla bocca
per essere successivamente ingerito (Davenport e Clough, 1985). In individui adulti e subadulti, invece,
risulta che si sviluppano maggiormente la testa con la rispettiva muscolatura e la mascella in larghezza e
lunghezza per garantire una dieta variata, costituita da diversi invertebrati anche di resistente consistenza
(Dodd, 1988; Plotkin et. al., 1993; Plotkin, 1996).
22
Infine, Marhall et al. (2012) hanno studiato come la forza del morso e le dimensioni della testa regolano la
durezza delle prede ingerite in tartarughe comuni raccogliendo misurazioni della forza del morso in
tartarughe dalla fase di hatchling a quella adulta. Quando le tartarughe subadulte raggiungono la
dimensione in cui si verifica lo spostamento dall’ambiente pelagico a quello neritico, esse hanno una buona
capacità di frantumazione che permette loro di consumare numerose prede di piccole dimensioni ma di
resistente consistenza appartenenti a diverse specie bentoniche. Successivamente, quando le tartarughe
diventano adulte vengono predati organismi ancora più resistenti in seguito all’aumento delle dimensioni
della testa e delle prestazioni del morso. Queste modifiche della presa e della morfologia della testa e delle
mascelle, assicurano probabilmente un efficace meccanismo di ripartizione di risorse e una diminuzione
della concorrenza trofica (Arnold, 1983 ; Wainwright e Reilly, 1994). Tutti i dati morfometrici registrati sono
risultati buoni predittori per spiegare le prestazioni del morso, ma altre analisi dimostrarono che la
larghezza e la lunghezza del carapace erano i migliori predittori della forza del morso.
In seguito, è stata studiata la performance del morso in base alla morfometria della testa e del carapace
anche nelle tartarughe verdi (Marhall et al., 2013). Le tartarughe verdi adulte sono insolite rispetto ad altre
tartarughe marine in quanto sono prevalentemente erbivore, e questo tipo di dieta si riflette sulla
morfometria della testa, sul morso e sulla seghettatura del becco (Balazs, 1980; Bjorndal, 1997). Sulla base
degli studi precedenti sulla forza del morso in Caretta (Marhall et al., 2012), si è cercato di caratterizzare la
forza del morso di tartarughe verdi in base alla morfometria della testa e del carapace ipotizzando che la
forza del morso delle tartarughe verdi fosse minore rispetto a quella delle tartarughe comuni ma
positivamente correlata allo stesso modo alla morfometria della testa.
Le tartarughe analizzate provenivano da diverse aree geografiche, venivano pesate e misurate a livello della
larghezza, altezza e lunghezza della testa e ne veniva misurata la forza del morso. La forza del morso, è
risultata di entità minore rispetto a quella delle tartarughe comuni, ma ancora abbastanza forte per
garantire lo strappo e la masticazione dei vegetali. In particolare, la forza del morso è scalata
isometricamente rispetto alle dimensioni del corpo e a quelle della testa. Tutti i dati registrati erano buoni
predittori per spiegare le prestazioni del morso, ma altre analisi dimostrano che la massa corporea seguita
dalla larghezza e dall’altezza della testa sono migliori predittori della forza del morso rispetto alle
dimensioni del carapace (Marshall et al., 2013).
Uno studio effettuato su tartarughe comuni, ed in particolare sui carapaci e sui piastroni degli hatchling, ha
rivelato che le variazioni morfologiche degli hatchling possono esser correlate alla durata dell'incubazione
delle uova (Ferreira- Junior et al., 2011). I nidi in cui l'incubazione durava meno di 55 giorni, i piccoli erano
più rotondi rispetto a quelli nati da nidi con un incubazione di 67 giorni. La durata dell'incubazione spiega
solo una piccola parte della variazione totale nella forma del carapace e del piastrone nel suo complesso
(Ferreira- Junior et al., 2011).
23
Un altro studio ha messo in evidenza le differenze morfologiche tra le ossa che compongono i crani di
tartarughe verdi in fase adulta e giovanile in base alla diversa dieta dell’animale (Nishizawa et al., 2010),
ottenendo informazioni sulle dimensioni dell’orbita e sulla lunghezza del sopraoccipitale che sono maggiori
nei giovani rispetto agli adulti, mentre le dimensioni relative alle fosse infratemporale e parietale erano più
grandi negli adulti piuttosto che nei giovani. La differenza nella lunghezza relativa al sopraoccipitale non ha
evidenziato una diversa funzione trofica degli animali ( Nishizawa et al., 2010).
Studi comparati di morfometria geometrica sono stati effettuati su tartarughe che vivono in differenti
ambienti investigando, attraverso l’ausilio dei landmark, come varia il cingolo scapolare nei diversi tipi di
cheloni (Depencker et al., 2006) in relazione ai diversi ambienti dove essi vivono. Il metodo di Procuste fu
impiegato per confrontare l’articolazione della spalla (scapola e coracoide) in un campione di tartarughe
adulte.
I risultati hanno messo in evidenza una diversa organizzazione dell’articolazione in tartarughe provenienti
dai diversi ambienti. In particolare, in tartarughe terrestri la lunga struttura scapolare e il corto coracoide
sono associati ad un guscio a cupola e alla modalità di locomozione terricola, mentre le tartarughe marine e
d’acqua dolce, presentano un guscio piatto, un lungo coracoide, una scapola più corta e una particolare
muscolatura che permette il nuoto e l’eventuale locomozione terricola (Depencker et al., 2006).
1.6 Scopo della tesi
I risultati ottenuti dai pochi studi effettuati su tartarughe marine nel corso degli ultimi anni, mediante
morfometria geometrica, riassunti nel paragrafo precedente, mostrano quanto questo tipo di approccio sia
importante per ottenere delle informazioni valide sulle specie analizzate. Purtroppo, gli studi di
morfometria geometrica su tartarughe marine sono concentrati sullo studio dei carapaci e ossa della testa
degli animali e, non risultano in letteratura, studi che si focalizzino sulle variazioni di forma del piastrone,
del carapace, delle pinne anteriori e della testa in funzione della taglia dell’animale.
Questo è ciò che il mio lavoro si prefigge di fare.
Il presente studio ha lo scopo di mettere in evidenza le differenze e/o le somiglianze, ovvero le variazioni
morfologiche tra diversi individui di Caretta caretta in seguito all’allungamento del carapace. Particolare
attenzione è stata posta alle strutture corporee maggiormente soggette a modifiche in seguito allo sviluppo
dell’individuo e cioè carapace, piastrone, parti dorsale e laterali della testa e pinne anteriori.
24
2. MATERIALI E METODI
2.1 Area di studio
L’area di studio comprende le acque dell’Arcipelago delle Pelagie (isole di Lampedusa, Linosa e Lampione).
Le isole Pelagie (Fig. 7) per la loro posizione geografica al centro del Mediterraneo, sono un punto di unione
delle acque del bacino orientale, più calde, e di quelle del bacino occidentale, influenzate dalle correnti
atlantiche. In particolare l’isola di Lampedusa (Latitudine 35° 30I Nord e Longitudine 12° 36I Est) è situata al
margine settentrionale della piattaforma continentale tra la Sicilia e Tunisia-Libia, e l’area marina
circostante rappresenta una zona ad elevata densità di esemplari di tartaruga comune in quanto area di
foraggiamento e di transito durante gli spostamenti e le migrazioni (Margaritoulis et al., 2003).
Figura 7. Area di studio che comprende le acque tra le isole di Lampedusa, Linosa e Lampione (Agrigento).
25
2.2 Raccolta dei dati e studio bidimensionale
La raccolta dei dati è avvenuta in due periodi differenti: il primo da settembre a novembre 2012, il secondo
da maggio a ottobre 2013 ed ha riguardato un totale di 58 esemplari recuperati dal Centro WWF di
Lampedusa (Tab. 1, vedasi Appendice 2). Soltanto per 3 esemplari è stato possibile determinare il sesso, per
gli altri 55 esemplari non è stato possibile a causa della giovane età che non ha permesso di mettere in
risalto un evidente dimorfismo sessuale. La determinazione del sesso è avvenuta morfologicamente e
quando possibile attraverso necropsia.
A questo scopo è stata presa in considerazione la presenza delle unghie sulle pinne anteriori e la lunghezza
della coda. La dimensione in cui il dimorfismo sessuale diventa evidente differisce nei vari casi: ad esempio
un maschio medio presenta una coda particolarmente sviluppata quando raggiunge una dimensione di 75
cm di lunghezza curva del carapace (Curved Carapace Length, CCL) e raggiunge la maturità sessuale ad una
dimensione di 75-80 cm di CCL, per cui la determinazione del sesso basata sulle misurazioni della coda, è
possibile per esemplari con dimensione maggiore di 75 cm di CCL (Casale et al., 2005). In alcuni casi il sesso
dell’animale è stato individuato dopo la morte mediante necropsia, che mi ha permesso di osservare
l’apparato sessuale composto da testicoli oppure dalle ovaie (Wibbels, 1999), consentendomi di stabilire il
sesso anche in tartarughe con dimensioni minori di 75 cm di CCL dove non era presente dimorfismo
sessuale esterno.
Per ogni singolo esemplare, oltre al sesso, sono state raccolte informazioni sulla data e sull’area geografica
di recupero (principalmente Arcipelago delle Pelagie o lungo le coste siciliane), le modalità di recupero (in
seguito a spiaggiamento, catture accidentali da parte di reti a strascico, palangresi o altro), il peso e le varie
misurazioni standard di SCW (Straight Carapace Width), SCL (Straight Carapace Length) e CCL. La CCL e la
SCL sono misure prese dal punto centrale dello scudo nucale del carapace alla biforcazione dei due scudi
sopracaudali del carapace stesso (Fig. 8 e 9), la CCL misura la lunghezza curva del carapace e viene ottenuta
attraverso misurazione con un metro a nastro, mentre la SCL è la misurazione della lunghezza rettilinea del
carapace, ottenuta mediante un calibro. La SCW rappresenta la misura della massima larghezza del
carapace (Fig. 10) ed è ottenuta con un calibro (Wyneken, 2001).
Figura 8. Misurazione della CCL ( Curved Carapace Length) mediante un metro.
26
Figura 9. Misurazione dell’SCL ( Straight Carapace Length) mediante calibro.
Figura 10. Misurazione dell’SCW ( Straight Carapace Width) mediante calibro.
In seguito ogni esemplare è stato fotografato mediante una fotocamera digitale PENTAX (modello K100D
Super) a livello del piastrone, del carapace, della testa e delle pinne anteriori, quando presenti. Prima di
iniziare a fotografare le parti interessate, i vari esemplari sono stati ripuliti da alghe e da eventuali
organismi incrostanti presenti soprattutto sul carapace e sulla testa, e successivamente, l’animale è stato
completamente asciugato, per ridurre il riflesso della luce all’interno dell’obbiettivo della fotocamera. Per
evitare eventuali distorsioni e aumentare il contrasto, le foto sono state scattate con un campo neutro di
sfondo (telo bianco), ponendo di fianco alla parte fotografata una scala di 20 cm da utilizzare come
riferimento. Le foto sono sempre state scattate con la stessa fotocamera digitale e sempre alla stessa
distanza di 3 metri. Quando non era possibile scattare le foto vicino ad una sorgente luminosa naturale,
27
venivano scattate al chiuso, in una stanza con luci artificiali posizionate in modo da evitare la formazione di
ombre sull’oggetto fotografato. Per ogni esemplare sono state scattate dalle 20 alle 30 foto totali con e
senza flash al fine di individuare quelle che risultavano migliori per la digitalizzazione dei landmark. Nello
specifico gli scatti effettuati sono stati 3 per il piastrone, 3 per il carapace, in totale 10 per la testa
rispettivamente 4 per la parte dorsale e 3 per parte laterale destra e sinistra e infine 3 per entrambe le
pinne anteriori quando presenti. Successivamente le foto sono state archiviate in formato elettronico
(esempi di immagini usate per l’analisi sono visibili nelle Fig. 16-22). È stato poi necessario svolgere una
selezione per scegliere le foto migliori e più adatte per la digitalizzazione dei landmark.
2.3 Scelta dei landmark
Terminata la fase di acquisizione, computerizzazione e sistemazione delle foto, è iniziato lo studio sulla
struttura delle diverse parti della tartaruga: sulla base di studi precedenti (Ferreira-Junior et al., 2011) sono
stati scelti dei punti omologhi del carapace, del piastrone, della testa e di entrambe le pinne anteriori da
utilizzare per l’indagine di morfometria geometrica.
I landmark utilizzati sono comuni a tutte le tartarughe ma talvolta non è stato possibile prenderli in
considerazione a causa di danneggiamento o mancanza della parte interessata nell’animale analizzato.
Sulle foto del carapace sono stati presi in considerazione 38 landmark, mentre, sulle foto dei piastroni ne
sono stati scelti 21 (Fig. 11 e 12). Sono stati poi individuati 7 landmark per ogni lato della testa (Fig. 13), e 7
landmark per la porzione dorsale della testa (Fig. 14) mentre per le pinne anteriori sono stati scelti 5
landmark (Fig.15).
Le coordinate dei landmark, strumento di partenza per le analisi di morfometria geometrica, sono state
ricavate utilizzando i software del pacchetto Tps (Rohlf, 2010). Innanzitutto ho creato con TpsUtil un file
TPS con tutte le immagini dei piastroni, dei carapaci e delle altre strutture su cui digitalizzare i landmark.
Successivamente per procedere alla digitalizzazione delle immagini, è stato utilizzato il software TpsDig 2:
settata la scala usando lo strumento ‘image tool’ del menu e prendendo come unità di misura quella di
riferimento posta nella foto (20 mm); in questo modo il fattore di scala (mm/pixel) è usato per convertire le
coordinate da pixel a millimetri e per avere i landmark di tutti gli esemplari rapportati alla stessa scala.
28
Figura 11. Posizionamento dei landmark a livello del carapace. I landmark inseriti delimitano le seguenti parti del
carapace: 1, 18, 34, 35: scudo nucale; 1, 2, 3, 16, 17 e 18: 1° scudo vertebrale; 3, 4, 5, 14, 15 e 16: 2° scudo vertebrale;
5, 6, 7, 12, 13, e 14: 3° scudo vertebrale; 7, 8, 9, 10, 11 e 12: 4° scudo vertebrale; 9, 10, 23, 24 e 29: 5° scudo
vertebrale. I landmark 1, 2 e 28: 1° scudo costale di sinistra; 17, 18 e 19: 1°scudo costale di destra; 2, 3, 4, 27 e 28: 2°
scudo costale di sinistra; 15, 16, 17, 19 e 20: 2° scudo costale di destra; 4, 5, 6, 26 e 27: 3° scudo costale di sinistra; 13,
14, 15, 20 e 21: 3° scudo costale di destra; 6, 7, 8, 25 e 26: 4° scudo costale di sinistra; 11, 12, 13, 21 e 22 : 4° scudo
costale di destra; 8, 9, 24 e 25 : 5° scudo costale di sinistra; 10, 11, 22 e 23: 5° scudo costale di destra; 29 e 30:
lunghezza dello scudo sopracaudale. I landmark 31, 32, 33, 36, 37 e 38 sono punti sugli scudi marginali, i landmark 32
e 37 sono posizionati sulla massima larghezza del carapace.
29
Figura 12. Posizionamento dei landmark a livello del piastrone. I landmark delimitano le seguenti parti del piastrone:
1, 11, 12 e 13: coppia di scudi golari; 1, 2, 10, 11, 13 e 14: coppia di scudi omerali; 2, 3, 9, 10, 14 e 15: coppia di scudi
pettorali; 3, 4, 8, 9, 15 e 16: coppia di scudi addominali; 4, 5, 7, 8, 16 e 17: coppia di scudi femorali; 5, 6, 7 e 17: coppia
di scudi anali; 3 e 18: lunghezza del 1° scudo inframarginale di sinistra; 9 e 19: lunghezza del 1° scudo inframarginale di
destra. I landmark 20 e 21 sono posizionati a livello della larghezza massima del piastrone.
30
Figura 13. Posizionamento dei landmark per la parte dorsale della testa. I landmark sulla parte dorsale della testa
delimitano le seguenti parti: 1: unione degli scudi prefrontali con la struttura che accoglie le narici; 2 e 4: occhio di
sinistra; 3 e 5: occhio di destra. I landmark 6 e 7 sono posizionati a livello della larghezza massima della testa
all’attaccatura del collo.
Figura 14. Posizionamento dei landmark per la parte laterale della testa. I landmark sulla parte laterale della testa
delimitano le seguenti parti: 1, 2 e 3: struttura che accoglie le narici; 4: rostro del becco; 4 e 5: parte superiore del
becco; 6: punto di incontro tra gli scudi sopraoculare, postoculare e la parte che accoglie l’occhio; 7: parte posteriore
della testa, vicino al collo.
31
Figura 15. Posizionamento dei landmark per le pinne anteriori. I landmark sulla pinna anteriore delimitano le seguenti
parti: 2: attacco della prima unghia; 3: attacco della seconda unghia; 4: parte terminale della pinna. Il landmark 1 è
stato usato per esser messo a confronto con il LM 4 per studiare la lunghezza della pinna, il 5 per esser messo a
confronto con i LM 1 e 2 per studiare la larghezza della pinna.
32
Le figure 16-22 mostrano un esempio di landmark individuati su una tartaruga a livello di carapace,
piastrone, testa e pinne anteriori.
Figura 16. Posizionamento dei 38 landmark sul del carapace del campione fotografato.
33
Figura 17. Posizionamento dei 21 landmark sul piastrone del campione fotografato.
Figura 18. Posizionamento dei 7 landmark sulla parte dorsale della testa del campione fotografato.
34
Figura 19. Posizionamento dei 7 landmark sul lato sinistro della testa del campione fotografato.
Figura 20. Posizionamento dei 7 landmark sul lato destro della testa del campione fotografato.
35
Figura 21. Posizionamento dei 5 landmark sulla pinna anteriore sinistra del campione fotografato.
Figura 22. Posizionamento dei 5 landmark sulla pinna anteriore destra del campione fotografato.
36
Dopo aver scelto le immagini su cui effettuare le analisi è necessario posizionare i landmark
precedentemente scelti, e successivamente importarli sul pacchetto specializzato “MorphoJ”.
Per ogni struttura analizzata, è stato ottenuto un diagramma (Fig. 23 e 24) con cui osservare la forma media
ottenuta confrontando le varie strutture. Queste sono rappresentate da una nuvola di puntini blu che
rappresentano le posizioni dei punti di riferimento per i singoli campioni, mentre il punto blu più grande
rappresenta la posizione media del landmark evidenziato con un numero di color rosso. Inoltre è possibile
osservare di fianco ad esso un grafico con due curve, la curva blu rappresenta la distribuzione normale
multivariata adattata ai dati mentre la curva rossa rappresenta la deviazione del campione dalla media.
Nella parte in basso del diagramma è riportata una lista denominata included dove sono elencati i campioni
che costituiscono il set di dati, ordinati in base alla distanza dalla forma media. In questo modo è possibile
evidenziare ogni singola voce e osservare la relativa distanza e il codice identificativo del singolo campione.
La distanza di Procuste è una misura assoluta della deviazione della forma del mio campione, la distanza di
Mahalanobis invece fornisce informazioni su quanto insolito è un individuo e in che relazione questo si
trova con gli altri individui che compongono il campione. Un individuo che ha elevata distanza di
Mahalanobis rispetto agli altri individui ha una grande influenza sulla pendenza della curva o sui coefficienti
della regressione e fa parte degli outliers.
Figura 23. Esempio di rappresentazione degli outliers, della distanza di Mahalanobis e delle curve di distribuzione
sulla struttura del piastrone analizzata sul campione di 56 tartarughe.
37
Figura 24. Variazione della posizione dei landmark totali sulla struttura media dei piastroni ottenuta da un campione
di 56 Caretta caretta in seguito all’Analisi di Procuste (GPA).
Dopo aver effettuato la GPA, vengono create le matrici di covarianza che vengono utilizzate in un secondo
momento nelle Analisi delle Componenti Principali (Principal Component Analysis, PCA). La PCA permette di
visualizzare la variazione all’interno del campione ed evidenzia le caratteristiche principali che regolano la
variazione della forma delle strutture anatomiche da analizzare. In seguito alla PCA si ottiene una serie di
componenti principali, la prima componente principale è la combinazione lineare delle variabili avente
massima varianza, la seconda componente principale è la combinazione lineare delle variabili avente
varianza immediatamente inferiore e che non è correlata alla componente precedente. In modo analogo si
definiscono le componenti principali successive.
Oltre alla PCA è stata effettuata un’Analisi di Regressione Lineare con cui si valuta se esiste una relazione
tra una o più variabili dipendenti rispetto una o più variabili indipendenti. In una regressione c’è una
simmetria intrinseca tra le variabili dipendenti (da prevedere) e le variabili indipendenti (predette), e
questo distingue la regressione da altre tecniche di analisi. Le due variabili che sono state utilizzate in
questo studio, sono le coordinate di Procuste che provengono dal campione in seguito alla GPA (variabile
dipendente, asse y), e la misura della CCL e della SCL (indicatore della taglia dell’animale) come variabile
indipendente (asse x).
In seguito all’analisi esplorativa condotta col metodo delle componenti principali, è stata effettuata
un’analisi discriminante (DFA) per valutare se esistono differenze tra i lati della testa o tra le due pinne
anteriori, e se queste sono significative al fine dell’interpretazione dei risultati. Se la DFA non risulta
38
significativa accetto l’ipotesi nulla che tali strutture siano tra loro simmetriche e che subiscano variazioni
simmetriche di forma.
Le tartarughe totali utilizzate nel seguente studio sono 58 (Tab. 1, vedasi Appendice 2).
Sul totale di 58 esemplari di tartaruga:
46 sono state utilizzate per effettuare studi sui carapaci
56 sono state utilizzate per effettuare studi sui piastroni
52 sono state utilizzate per effettuare studi sulle teste porzione dorsale
51 sono state utilizzate per effettuare studi sul lato destro delle teste
52 sono state utilizzate per effettuare studi sui lato sinistro delle teste
49 sono state utilizzate per effettuare studi sulle pinne anteriori destre
57 sono state utilizzate per effettuare studi sulle pinne anteriori sinistre
Non sempre è stato possibile effettuare confronti per tutte le strutture su ogni esemplare a causa
dell’assenza o dell’ incompletezza della parte interessata. Per le pinne anteriori il numero delle pinne
anteriori destre non corrisponde a quelle sinistre in quanto alcune tartarughe ricoverate al Centro di
Lampedusa arrivavano senza un arto natatorio oppure venivano sottoposte ad amputazione a causa di
necrosi dei tessuti dovuta principalmente all’azione di lenze e ami impigliati tra il collo e la pinna
dell’animale.
39
3. RISULTATI
3.1 Carapace
Sui 46 carapaci analizzati sono stati inseriti 38 landmark omologhi (Fig.25).
Figura 25. Variazione della posizione dei 38 landmark sui carapaci dopo l’Analisi di Procuste (GPA). La nuvola di puntini
blu rappresenta le posizioni dei punti di riferimento per le singole configurazioni del campione, mentre il punto blu più
grande rappresenta la posizione media del landmark evidenziato con un numero di color rosso.
L’analisi degli outliers (Fig.26) mostra che il campione che si discosta maggiormente dalla forma media
dell’intero campione è il 13LMP23, con una distanza di Mahalanobis di 0.00539, mentre il campione che si
avvicina di più alla forma media dell’intero campione è l’individuo 12LMP44 con una distanza di
Mahalanobis di 0.00072.
40
Figura 26. Rappresentazione degli outliers, della distanza di Mahalanobis e delle curve di distribuzione sul campione
totale per quanto riguarda i carapaci.
Dopo aver eseguito la GPA, vengono ottenute le nuove coordinate (shape variables; Tab. 2, vedasi
Appendice 2).
L’analisi delle componenti principali (PCA) evidenzia una maggior variazione di forma lungo l’asse della
prima componente principale (PC1) che da sola spiega il 33.87% della varianza (Fig. 27), mentre abbiamo
una variazione di forma del 25.35% lungo l’asse della seconda componente principale (PC2). In base allo
score plot ottenuto in seguito all’analisi delle componenti principali (Fig. 28) è possibile osservare la
distribuzione dei singoli campioni in un piano bidimensionale rispetto alla PC1 (asse x) e alla PC2 (asse y).
Figura 27. Grafico della varianza del campione dei carapaci dopo la PCA.
41
Figura 28. Diagramma delle componenti principali svolta sul campione di carapaci (n=46).
La griglia di deformazione lungo l’asse della prima componente principale (Fig. 29) mostra un maggior
cambiamento di forma attorno ai landmark (LM) che vanno da 1 a 7 e da 12 a 18, i quali si spostano verso la
parte anteriore dell’animale ovvero verso la testa, mentre i LM che vanno da 20 a 23 e quelli che vanno da 24
a 27 si spostano verso la parte posteriore dell’animale. I LM che non subiscono alcuna modifica sono il 34 e il
35.
Figura 29. Griglia di deformazione della variazione di forma del carapace lungo l’asse della prima componente principale
(PC1): in blu i vettori dei 38 landmark.
42
E’ stata quindi studiata la regressione (Fig. 30) tra la forma del carapace (espressa secondo le coordinate di
Procuste) e le dimensioni dell’individuo (CCL).
Figura 30 . Regressione tra forma (Coordinate di Procuste) e dimensioni (CCL) per il campione di carapaci (n= 46).
I risultati mostrano un andamento lineare, e la regressione risulta significativa (test di permutazione,
p<0.001), anche se la percentuale della variabilità predetta è pari solo al 14.89 %.
Per valutare se la lunghezza della CCL rispecchi la bidimensionalità della foto e non abbia un andamento
particolarmente differente rispetto alla SCL, è stata eseguita anche una regressione di confronto (Fig. 31)
tra la forma del carapace (espressa secondo le coordinate di Procuste) e le dimensioni dell’individuo
espresse come SCL.
43
Figura 31. Regressione tra forma (Coordinate di Procuste) e dimensioni (SCL) per il campione di carapaci (n= 46).
I risultati mostrano un andamento lineare, con una percentuale predetta pari al 15.11 % e la regressione
risulta significativa (test di permutazione, p<0.001). Ciò indica che utilizzare nella regressione la CCL o la SCL
per esprimere la lunghezza del campione è la medesima cosa, per cui in questo studio viene presa in
considerazione la CCL per rappresentare la dimensione dell’individuo.
44
3.2 Piastrone
Sui 56 piastroni studiati sono stati inseriti 38 landmark omologhi (Fig.32).
Figura 32. Variazione della posizione dei 21 landmark sui piastroni dopo l’Analisi di Procuste (GPA). Altre spiegazioni in
Fig. 25.
L’analisi degli outliers (Fig. 33) evidenzia che il singolo campione che si discosta maggiormente dalla forma
media dell’intero campione è il 12LMP42 con una distanza di Mahalanobis di 0.0128, a differenza
l’individuo che si avvicina maggiormente alla forma media dell’intero campione è il 13LMP25 con una
distanza di Mahalanobis di 0.00099.
45
Figura 33. Rappresentazione degli outliers, della distanza di Mahalanobis e delle curve di distribuzione sul campione
totale per quanto riguarda i piastroni.
Dopo aver effettuato la GPA, vengono ottenute le nuove coordinate (shape variables; Tab. 3, vedasi
Appendice 2).
L’analisi delle componenti principali (PCA) conferma una maggior variazione di forma lungo l’asse della
prima componente principale (PC1) che spiega il 36.47% della varianza (Fig. 34), mentre lungo l’asse della
seconda componente principale (PC2) abbiamo una variazione di forma del 19.76%. In base allo score plot
ottenuto in seguito all’analisi delle componenti principali (Fig. 35) è possibile osservare la distribuzione dei
singoli individui in un piano bidimensionale rispetto alla PC1 (asse x) e alla PC2 (asse y).
Figura 34. Grafico della varianza del campione dei piastroni dopo la PCA.
46
Figura 35. Diagramma delle componenti principali svolta sul campione di piastroni (n=56).
La griglia di deformazione lungo l’asse della prima componente principale (Fig. 36) mostra un maggior
cambiamento di forma attorno ai landmark (LM) 18, 19, 20 e 21 i quali si spostano verso la parte anteriore
dell’animale ovvero verso la testa. Cambiamento di forma si nota anche a livello dei LM 1, 2, 10, 11, 13, 14,
15, 16 e 17 che si spostano leggermente verso la parte posteriore dell’ animale ovvero verso la coda.
I LM che rimangono invariati di posizione sono il 6 e il 12.
Figura 36. Griglia di deformazione della variazione di forma del piastrone lungo l’asse della prima componente
principale (PC1): in blu i vettori dei 21 landmark.
47
Successivamente è stata studiata la regressione (Fig. 37) tra la forma del piastrone (espressa dalle
coordinate di Procuste) e le dimensioni dell’individuo (CCL).
Figura 37. Regressione tra forma (Coordinate di Procuste) e dimensioni (CCL) per il campione di piastroni (n= 56).
I risultati non mostrano un andamento lineare, e la regressione non risulta significativa (test di
permutazione, p=0.084) con una percentuale della variabilità predetta pari al 3.45 %.
48
3.3 Parte dorsale della testa
Sulle 52 teste esaminate sono stati inseriti 7 landmark omologhi (Fig. 38).
Figura 38. Variazione della posizione dei 7 landmark sulla parte dorsale delle teste dopo l’Analisi di Procuste (GPA).
Altre spiegazioni in Fig. 25.
L’analisi degli outliers (Fig. 39) evidenzia che il singolo campione che si discosta maggiormente dalla forma
media dell’intero campione è il 13LMP15 con una distanza di Mahalanobis di 19.5, mentre l’individuo che si
avvicina di più alla forma media dell’intero campione con una distanza di Mahalanobis di 3.23 è l’individuo
13LMP16.
49
Figura 39. Rappresentazione degli outliers, della distanza di Mahalanobis e delle curve di distribuzione sul campione
totale per quanto riguarda la parte dorsale della testa.
In seguito all’esecuzione della GPA, vengono ottenute le nuove coordinate (shape variables; Tab. 4, vedasi
Appendice 2).
L’analisi delle componenti principali (PCA) indica che la prima componente principale (PC1) spiega il 50.19%
della varianza e quindi una maggior variazione di forma (Fig. 40), mentre è presente una variazione di forma
del 34.33% lungo l’asse della seconda componente principale (PC2). In seguito all’analisi delle componenti
principali viene ottenuto lo score plot (Fig. 41) grazie al quale è possibile osservare la distribuzione dei
singoli individui in un piano bidimensionale rispetto alla PC1 (asse x) e alla PC2 (asse y).
Figura 40. Grafico della varianza sul campione della parte dorsale delle teste dopo la PCA.
50
Figura 41. Diagramma delle componenti principali svolta sull’intero campione della parte dorsale delle teste (n=52).
La griglia di deformazione lungo l’asse della prima componente principale (Fig. 42) mostra un maggior
cambiamento di forma attorno ai LM 6 e 7 i quali si spostano verso l’interno mettendo in evidenza un
restringimento e allungamento della testa. Cambiamento di forma si nota lievemente anche a livello dei LM
1, 2 e 3 che si spostano leggermente verso l’esterno, il tutto mette in evidenza un allungamento e
restringimento totale della testa.
Figura 42. Griglia di deformazione della variazione di forma della porzione dorsale delle teste lungo l’asse della prima
componente principale (PC1): in blu i vettori dei 7 landmark.
51
In seguito è stata studiata la regressione (Fig. 43) tra la forma della testa (espressa in coordinate di
Procuste) e le dimensioni dell’individuo (CCL).
Figura 43. Regressione tra forma (Coordinate di Procuste) e dimensioni (CCL) per il campione delle teste (n= 52).
I risultati mostrano un andamento lineare, e la regressione risulta significativa (test di permutazione,
p<0.001), anche se la percentuale della variabilità è pari solo al 13.49 %.
52
3.4 Testa laterale
3.4.1 Testa laterale destra
Sono stati inseriti 7 landmark omologhi su 51 lati destri delle teste (Fig.44).
Figura 44. Variazione della posizione dei 7 landmark sul lato destro della testa dopo l’Analisi di Procuste (GPA). Altre
spiegazioni in Fig. 25.
Analizzando gli outliers (Fig. 45) si osserva che il singolo individuo che presenta una distanza di Mahalanobis
di 21.01 che si discosta maggiormente dalla forma media dell’intero campione è il 13LMP37 mentre
l’individuo che si avvicina di più alla forma media dell’intero campione è l’individuo 12LMP18 con una
distanza di Mahalanobis di 3.05.
53
Figura 45. Rappresentazione degli outliers, della distanza di Mahalanobis e delle curve di distribuzione sul campione
totale per quanto riguarda il lato destro della testa.
Dopo aver eseguito la GPA, vengono ottenute le nuove coordinate (shape variables; Tab. 5, vedasi
Appendice 2).
L’analisi delle componenti principali (PCA) conferma una maggior variazione di forma lungo l’asse della
prima componente principale (PC1) che da sola spiega il 41.31% della varianza (Fig. 46), mentre lungo l’asse
della seconda componente principale (PC2) abbiamo una variazione di forma del 20.02%. In base allo score
plot ottenuto in seguito all’analisi delle componenti principali (Fig. 47) è possibile osservare il dislocamento
dei singoli campioni in un piano bidimensionale rispetto alla PC1 (asse x) e alla PC2 (asse y).
Figura 46. Grafico della varianza sul campione del lato destro delle teste dopo la PCA.
54
Figura 47. Diagramma delle componenti principali svolta sull’intero campione del lato destro delle teste (n=51).
La griglia di deformazione lungo l’asse della prima componente principale (Fig. 48) mostra un maggior
cambiamento di forma attorno al landmark 6 il quale si sposta indietro. Cambiamento di forma si nota
lievemente anche a livello dei LM 5 e 7 che si spostano lievemente verso l’occhio, inoltre i punti di
riferimento 3 e 4 si spostano leggermente in avanti andando a contribuire ad un aumento della ranfoteca.
Figura 48. Griglia di deformazione della variazione di forma del lato destro delle teste lungo l’asse della prima
componente principale (PC1): in blu i vettori dei 7 landmark.
55
E’ stata quindi studiata la regressione (Fig. 49) tra la forma del lato destro della testa (espressa secondo le
coordinate di Procuste) e le dimensioni dell’individuo (CCL).
Figura 49. Regressione tra forma (Coordinate di Procuste) e dimensioni (CCL) per il campione del lato destro delle
teste (n= 51).
I risultati mostrano un andamento lineare, e la regressione risulta significativa (test di permutazione,
p<0.001), anche se la percentuale della variabilità predetta è dell’ 11.78 %.
56
3.4.2 Testa laterale sinistra
Sui 51 lati destri delle teste sono stati inseriti 7 landmark omologhi (Fig. 50).
Figura 50. Variazione della posizione dei 7 landmark sul lato sinistro della testa dopo l’Analisi di Procuste (GPA). Altre
spiegazioni in Fig.25.
L’analisi degli outliers (Fig. 51) evidenzia che l’individuo che si discosta maggiormente dalla forma media
dell’intero campione è il 12LMP45 con una distanza di Mahalanobis di 18.36 mentre l’individuo 12LMP41
con una distanza di Mahalanobis di 1.10 è quello che si avvicina di più alla forma media dell’intero
campione.
57
Figura 51. Rappresentazione degli outliers, della distanza di Mahalanobis e delle curve di distribuzione sul campione
totale del lato sinistro della testa.
Dopo aver eseguito la GPA, vengono ottenute delle nuove coordinate (shape variables; Tab. 6, vedasi
Appendice 2).
L’analisi delle componenti principali (PCA) conferma una maggior variazione di forma lungo l’asse della
prima componente principale (PC1) che da sola spiega il 37.69% della varianza (Fig. 52), e una variazione
di forma pari al 25.34 % lungo l’asse della seconda componente principale (PC2). In seguito all’analisi delle
componenti principali viene ottenuto lo score plot (Fig. 53) grazie al quale è possibile osservare la
distribuzione dei singoli campioni in un piano bidimensionale rispetto alla PC1 (asse x) e alla PC2 (asse y).
Figura 52. Grafico della varianza sul campione del lato sinistro delle teste dopo la PCA.
58
Figura 53. Diagramma delle componenti principali (PCA) svolta sull’intero campione del lato sinistro delle teste (n=52).
La griglia di deformazione lungo l’asse della prima componente principale (Fig. 54) mostra un maggior
cambiamento di forma attorno al landmark (LM) 6 il quale si sposta indietro. Cambiamento di forma si nota
lievemente anche a livello dei LM 5 e 7 che si spostano lievemente verso l’occhio, inoltre i LM 3 e 4 si
spostano leggermente in avanti andando a contribuire ad un aumento della ranfoteca.
Figura 54. Griglia di deformazione della variazione di forma del lato sinistro delle teste lungo l’asse della prima
componente principale (PC1): in blu i vettori dei 7 landmark.
59
Successivamente è stata studiata la regressione (Fig. 55) tra la forma del lato sinistro della testa (in base
alle coordinate di Procuste) e le dimensioni (CCL).
Figura 55. Regressione tra forma (Coordinate di Procuste) e dimensioni (CCL) per il campione del lato sinistro delle
teste (n= 52).
I risultati mostrano un andamento lineare, la regressione è significativa (test di permutazione, p<0.001)
anche se la percentuale della variabilità è pari solo al 19.86 %.
Confrontando le griglie di deformazione delle teste (Fig. 48 e Fig. 54), emerge che il landmark 6 si sposta
indietro, mentre i LM 5 e 7 si spostano lievemente verso l’occhio. Inoltre i LM 3 e 4 si spostano leggermente
creando uno spostamento in avanti della ranfoteca.
Attraverso la DFA tale asimmetria risulta statisticamente significativa, quindi le variazioni che si verificano ai
due lati della testa vengono prese in considerazione. I due lati della testa sono tra loro asimmetrici (test di
permutazione; P-value parametric : 0,03).
60
3.5 Pinna anteriore
3.5.1 Pinna anteriore destra
Sono stati inseriti 5 landmark omologhi sulle 49 pinne anteriori destre (Fig. 56).
Figura 56. Variazione della posizione dei 5 landmark sulla pinna anteriore destra dopo l’Analisi di Procuste (GPA). Altre
spiegazioni in Fig. 25.
Dall’analisi degli outliers (Fig. 57) si osserva che l’individuo che si discosta maggiormente dalla forma media
dell’intero campione è il 12LMP18 con una distanza di Mahalanobis di 16.89 mentre l’individuo che si
avvicina di più alla forma media dell’intero campione è l’individuo 12LMP40 con una distanza di
Mahalanobis di 0.86.
61
Figura 57. Rappresentazione degli outliers, della distanza di Mahalanobis e delle curve di distribuzione sul campione
totale per la pinna anteriore destra.
Dopo aver eseguito la GPA, vengono ottenute le nuove coordinate (shape variables; Tab. 7, vedasi
Appendice 2).
L’analisi delle componenti principali (PCA) conferma una maggior variazione di forma lungo l’asse della
prima componente principale (PC1) che da sola spiega il 44.81% della varianza (Fig. 58), mentre abbiamo
una variazione di forma del 21.44% lungo l’asse della seconda componente principale (PC2). In base allo
score plot ottenuto in seguito all’analisi delle componenti principali (Fig. 59) è possibile osservare la
distribuzione dei singoli campioni su un piano bidimensionale rispetto alla PC1 (asse x) e alla PC2 (asse y).
Figura 58. Grafico della varianza del campione delle pinne anteriori destre dopo la PCA.
62
Figura 59. Diagramma delle componenti principali (PCA) svolta sull’intero campione delle pinne anteriori destre
(n=49).
La griglia di deformazione lungo l’asse della prima componente principale (Fig. 60) mostra un maggior
cambiamento di forma attorno ai LM 1, 4 e 5. Il LM 1 si sposta verso l’attacco della pinna al corpo. Il LM 5 si
sposta più all’interno della pinna mettendo in evidenza una restrizione della larghezza della pinna destra. Il
LM 4 si sposta verso l’interno e si abbassa di poco.
Figura 60. Griglia di deformazione della variazione di forma delle pinne anteriori destre lungo l’asse della prima
componente principale (PC1): in blu i vettori dei 5 landmark.
63
È stata quindi studiata la regressione (Fig. 61) tra la forma della pinna anteriore destra (espressa in
coordinate di Procuste) e le dimensioni dell’individuo (CCL).
Figura 61. Regressione tra forma (Coordinate di Procuste) e dimensioni (CCL) per il campione delle pinne anteriori
destre (n= 49).
I risultati mostrano un andamento lineare, e la regressione risulta significativa (test di permutazione, p<
0.001) con una percentuale di variabilità pari al 16.28 %.
64
3.5.2 Pinna anteriore sinistra
Sulle 57 pinne anteriori sinistre sono stati inseriti 5 landmark omologhi (Fig. 62).
Figura 62. Variazione della posizione dei 5 landmark sulla pinna anteriore sinistra dopo l’Analisi di Procuste (GPA).
Altre spiegazioni in Fig. 25.
L’analisi degli outliers (Fig. 63) mostra che l’individuo con una distanza di Mahalanobis di 18.31 che si
discosta maggiormente dalla forma media dell’intero campione è l’11LMP47, mentre il singolo campione
con la minore distanza di Mahalanobis di 0.72 che quindi si avvicina di più alla forma media dell’intero
campione è l’individuo 12LMP39.
65
Figura 63. Rappresentazione degli outliers, della distanza di Mahalanobis e delle curve di distribuzione sul campione
totale per quanto riguarda la pinna anteriore sinistra.
Dopo aver eseguito la GPA, vengono ottenute le nuove coordinate (shape variables; Tab. 8, vedasi
Appendice 2).
L’analisi delle componenti principali (PCA) conferma una maggior variazione di forma lungo l’asse della
prima componente principale (PC1) che da sola spiega il 33.16% della varianza (Fig. 64), mentre abbiamo
una variazione di forma del 28.29% lungo l’asse della seconda componente principale (PC2). In seguito
all’analisi delle componenti principali viene ottenuto lo score plot (Fig. 65) grazie al quale è possibile
osservare la distribuzione dei singoli individui in un piano bidimensionale rispetto alla PC1 (asse x) e alla
PC2 (asse y).
Figura 64. Grafico della varianza sul campione delle pinne anteriori sinistre dopo la PCA.
66
Figura 65. Diagramma delle componenti principali (PCA) svolta sull’intero campione delle pinne anteriori sinistre
(n=57).
La griglia di deformazione lungo l’asse della prima componente principale (Fig. 66) mostra un maggior
cambiamento di forma attorno ai landmark (LM) 1, 4, 5 e 3. Il LM 1 si allontana rispetto all’attacco della
pinna al corpo. Il LM 5 si sposta più all’interno della pinna mettendo in evidenza una restrizione della
larghezza della pinna sinistra. Il LM 3 si sposta verso la parte terminale della pinna a causa dello
spostamento dell’unghia mentre il LM 4 si sposta verso l’interno e si abbassa di poco.
Figura 66. Griglia di deformazione della variazione di forma delle pinne anteriori sinistre lungo l’asse della prima
componente principale (PC1): in blu i vettori dei 5 landmark.
67
Successivamente è stata studiata la regressione (Fig. 67) tra la forma della pinna anteriore sinistra (in base
alle coordinate di Procuste) e le dimensioni dell’individuo (CCL).
Figura 67. Regressione tra forma (Coordinate di Procuste) e dimensioni (CCL) per il campione delle pinne anteriori
sinistre (n= 57).
I risultati mostrano un andamento lineare, e la regressione è significativa (test di permutazione, p<0.001),
anche se la percentuale della variabilità predetta è pari solo al 9.03 %.
Confrontando le griglie di deformazione delle pinne anteriori (Fig. 60 e Fig. 66), emerge che i landmark 1, 2,
4 e 5 di entrambi gli arti, subiscono i medesimi spostamenti. Il LM 3, della pinna anteriore sinistra, evidenzia
una variazione di posizione in direzione del LM 4, tale osservazione non è stata riscontrata nella pinna
anteriore destra. Attraverso la DFA tale asimmetria non risulta statisticamente significativa, quindi le
variazioni che si verificano tra le due pinne anteriori non vengono prese in considerazione. Le pinne
anteriori sono tra loro simmetriche (test di permutazione; P-value parametric : 0,20).
68
4. DISCUSSIONE
Nel presente lavoro di tesi particolare attenzione è stata posta nel capire come precise strutture
anatomiche delle tartarughe quali carapace, piastrone, pinne anteriori e testa siano in grado di modificarsi
in seguito all’accrescimento dell’animale, mediante un potente metodo diagnostico quale la morfometria
geometrica.
L’insieme dei dati analizzati in questo studio ha consentito di ottenere:
1. Acquisizione e studio di 58 esemplari di tartaruga comune.
2. Realizzazione di un archivio fotografico relativo all’intero campione di carapaci, piastroni, pinne
anteriori e lato destro, sinistro e dorsale delle teste.
3. Individuazione delle regioni anatomiche più soggette a variazione e interpretazione in termini
funzionali e adattativi.
Di seguito sono riportate in dettaglio le variazioni di forma nelle strutture anatomiche studiate, ovvero a
livello del piastrone, del carapace, della testa e delle pinne anteriori sul campione totale.
4.1 Carapace e piastrone
In base alla griglia di deformazione della PC1 (Fig. 29) si nota un lieve allungamento del carapace in seguito
ad un allungamento e una restrizione della larghezza (SCW) dello stesso, oltre ad un avanzamento anteriore
degli scudi vertebrali con un particolare aumento di dimensione del terzo e quarto scudo vertebrale. Tutto
questo mette in evidenza una crescita allometrica dovuta ad un contemporaneo allungamento e restrizione
della struttura del carapace. È ipotizzabile che tale adattamento favorisca in qualche modo una migliore
idrodinamicità dell’animale in ambiente acquatico, garantendo anche una miglior motilità dell’animale
durante la fase di deposizione delle uova in ambiente terrestre da parte delle femmine. A livello del
piastrone, osservando la griglia di deformazione della PC1 (fig. 35) non si nota un’allometria significativa
nonostante un lieve spostamento della larghezza massima da una zona leggermente posteriore ad una più
anteriore. Le singole coppie di scudi subiscono una leggerissima variazione, soprattutto la prima coppia
golare, la seconda coppia omerale e la terza coppia pettorale ma la lunghezza del piastrone resta invariata.
Sembra che in tutte le tartarughe analizzate la struttura del piastrone non subisca particolari variazioni
durante le fasi di accrescimento dell’animale. Probabilmente, per esplicare al meglio le proprie funzioni
protettive, questa struttura non subisce particolari modifiche in base all’accrescimento dell’animale.
69
Contrariamente a quanto si potesse pensare, la struttura del carapace e del piastrone non subiscono
variazioni di pari passo ma ogni struttura varia indipendentemente dall’altra. Entrambe costituiscono la
corazza difensiva dell’animale, ma la parte dorsale varia maggiormente rispetto alla parte ventrale,
continuando però a garantire difesa e idrodinamicità all’animale.
4.2 Testa
A livello della parte dorsale della testa, osservando la griglia di deformazione della PC1 (Fig. 41) è evidente
un allungamento della struttura con una relativa restrizione nella parte posteriore vicino al collo,
probabilmente, anche in questo caso, per favorire l’idrodinamismo dell’animale. Si potrebbe ipotizzare che
un simultaneo allungamento e restrizione della testa possa in qualche modo consentire alla testa
dell’animale di entrare all’interno di anfratti rocciosi dove magari sono presenti prede come echinodermi,
molluschi o altri invertebrati. Possiamo ipotizzare inoltre che una modifica della grandezza della testa e
della forza del morso siano collegati al tipo di alimentazione dell’animale, regolandone l’accesso alle risorse
alimentari e favorendo l’accesso a nuove nicchie trofiche (Marshall et al., 2012). La modifica della
morfologia della testa, del becco, delle mascelle e di conseguenza della presa, sono probabilmente un
efficace meccanismo di ripartizione di risorse, che porta ad una diminuzione della concorrenza trofica
(Arnold, 1983 ; Wainwright e Reilly, 1994), consentendo alla tartaruga di avere una dieta variegata
costituita da organismi di varia natura (Dodd, 1988; Plotkin et. al., 1993; Plotkin, 1996). Sappiamo che gli
hatchling di Caretta presentano un testa ridotta (Kamezaki et al., 1997) e che si cibano di prede morbide
(Marshall et al., 2012), mentre i subadulti presentano una testa abbastanza sviluppata (Kamezaki et al.,
1997) che permette loro di cibarsi di piccole prede ma che possono presentare una relativa consistenza
aumentando la forza del morso (Marshall et al., 2012). Infine, gli adulti hanno una testa e una muscolatura
ben sviluppate (Kamezaki et al., 1997) ed una maggiore forza del morso che consente loro di predare
organismi particolarmente resistenti (Marshall et al., 2012) che non vengono predati da altri predatori.
Sembra che tale allungamento e restrizione della testa non vadano ad incidere sulla posizione degli occhi, in
quanto, anche in seguito alla variazione di forma della testa, la posizione degli occhi resta invariata (Fig. 41).
Ciò sembra mettere in evidenza che la posizione ottimale degli occhi sia proprio quella che viene
mantenuta. Probabilmente, gli occhi in quella specifica posizione consentono all’animale di avere un’ottima
visibilità dell’ambiente, consentendo inoltre di visualizzare al meglio prede o eventuali disturbi che si
possono manifestare. Andando ad analizzare sempre la testa, ma lateralmente, in base alle griglie di
deformazione della PC1 (Fig. 47 e Fig. 53) la struttura triangolare che accoglie le narici si allunga di poco
verso il basso. Per quanto invece riguarda la ranfoteca, la sua attaccatura alla testa si sposta leggermente
indietro mentre il rostro si sposta in avanti andando appunto a mettere in evidenza un allungamento della
70
struttura della mascella. Possiamo ipotizzare che un allungamento del rostro e in generale una variazione di
forma della ranfoteca siano associati al tipo di alimentazione dell’animale e forse alla forza del morso
dell’animale stesso. Probabilmente questa modifica a livello del rostro facilita la lacerazione delle prede o
semplicemente la loro presa. Maggior variazione si nota però a livello dello scudo postoculare e di quello
sopraoculare che si spostano andando ad allungare posteriormente la parte molle che accoglie l’occhio.
Probabilmente la diposizione degli scudi sul muso è collegata alla struttura scheletrica interna. Alcuni studi
hanno messo in evidenza le differenze morfologiche tra le ossa che compongono i crani di tartarughe verdi
in fase adulta e giovanile in base alla diversa dieta dell’animale, osservando che le dimensioni dell’orbita e
la lunghezza del sopraoccipitale sono maggiori in tartarughe giovani piuttosto che in tartarughe adulte,
mentre le dimensioni relative delle fosse infratemporale e parietale sono più grandi in esemplari adulti
piuttosto che in quelli giovani (Nishizawa et al., 2010). È stato inoltre visto che la differenza nella lunghezza
del sopraoccipitale non evidenziava una diversa funzione trofica nelle tartarughe (Nishizawa et al., 2010).
Non sappiamo se nelle diverse fasi di accrescimento dell’animale la variazione delle ossa che compongono i
crani è identica tra tartarughe comuni e tartarughe verdi e se tali modifiche vanno ad influenzare le scelte
alimentari dell’animale. Inoltre non sappiamo se un’eventuale modifica delle ossa interne è riconducibile ad
una variazione degli scudi esterni presenti sulla testa e viceversa, non avendo informazioni su come le ossa
interne della testa e gli scudi variano, se contemporaneamente oppure no.
4.3 Pinne anteriori
Sempre in base alle griglie di deformazione della PC1 (Fig. 59 e Fig. 65), entrambe le pinne anteriori
subiscono una leggera restrizione in larghezza mentre la lunghezza dell’arto natatorio e la posizione delle
unghie rimangono pressoché invariate. Le differenze morfologiche nelle pinne anteriori possono essere
collegabili ad una variazione della struttura ossea delle pinne stesse oppure ad una modifica della struttura
muscolare (Depencker et al., 2006) che consente in qualche modo una maggiore efficienza con un relativo
vantaggio meccanico durante le fasi di nuoto e magari una facilitazione degli spostamenti dell’animale sulla
terraferma durante la fase di deposizione delle uova. Probabilmente è proprio un’organizzazione di questo
tipo che consente alle pinne anteriori di esplicare al meglio le funzioni di capacità propulsiva (Castro e
Huber, 2011), ed è ipotizzabile che tale adattamento possa favorire le varie forme di migrazioni, a lunga
distanza, che questi animali sono noti compiere in varie fasi del loro ciclo vitale (Plotkin, 2003). In particolar
modo, a livello delle pinne anteriori sembra che il diametro e la lunghezza degli omeri varino seguendo
un’allometria leggermente negativa, e che le pinne subiscano modifiche ossee in lunghezza e larghezza per
evitare fratture durante i movimenti nei diversi ambienti (Nishizawa et al., 2011). I risultati di questo studio
sembrano in effetti avvalorare questa ipotesi.
71
È anche possibile che la variazione di forma delle pinne anteriori sia legata alla dieta dell’animale nelle
diverse fasi di sviluppo, infatti in tartarughe in fase giovanile è evidente un’isometria tra la lunghezza delle
pinne e la lunghezza del carapace (Kamezaki et al., 1997). Al contrario, un’allometria negativa tra la
lunghezza e larghezza delle pinne anteriori rispetto alla lunghezza del carapace, indica una dimensione
ridotta delle pinne e un basso accrescimento di tali strutture in fase di hatchling (Kamezaki et al., 1997). In
fase giovanile le pinne anteriori crescono più velocemente rispetto che in altre fasi, consentendo una
miglior manipolazione del cibo presente nella colonna d’acqua per esser portato vicino alla bocca e
successivamente ingerito (Davenport e Clough, 1985).
72
5. CONCLUSIONI
I metodi della morfometria geometrica bidimensionale, si sono rivelati uno strumento molto accurato per
analizzare le differenze di forma e di dimensione nella tartaruga comune Caretta caretta.
Sebbene la morfometria geometrica, soprattutto in questi ultimi anni, stia fornendo importanti
informazioni in campo antropologico, zoologico e botanico, (Bruner et al., 2004; Rufino et al., 2004; Costa
et al., 2004; Viscosi et al., 2011) ci sono ancora dei limiti che impediscono di arrivare ad una conoscenza più
completa ed esauriente delle specie analizzate, soprattutto a causa del limitato numero di studi
morfometrici presenti in letteratura, della difficoltà di posizionamento dei landmark omologhi sulle
strutture esaminate per effettuare i confronti tra i diversi individui, e spesso della difficoltà nell’avere a
disposizione gli organismi che si vuol andare a studiare.
Punti di forza della morfometria geometrica, sono però legati al fatto che mediante questo tipo di
approccio è possibile visualizzare le differenze di forma delle parti analizzate, preservandone l’integrità
biologica e le relazioni geometriche tra le diverse parti dell’organismo esaminato, evitando appunto che le
informazioni ottenute si trasformino in una serie di misure lineari prive di senso.
Gli obiettivi prefissati all’inizio dello studio sono stati raggiunti con successo ed è stato possibile tracciare
un primo quadro su quali strutture corporee subiscano modifiche in seguito all’accrescimento in individui
appartenenti alla popolazione mediterranea di tartaruga comune e, nel mio caso specifico, recuperati nella
zona centrale del bacino.
I risultati ottenuti nel corso di questo studio, sono riusciti per la prima volta a mettere in evidenza le
modifiche strutturali a livello di carapace, testa e pinne anteriori che intervengono in tartarughe comuni di
taglia compresa tra 17,7 e 78,8 cm di CCL. In base ai confronti effettuati sui pochi studi presenti in
letteratura, tali modifiche morfometriche sono state tentativamente collegate ai diversi adattamenti che
l’animale mette in atto e che ne facilitano la sopravvivenza nel proprio ambiente naturale nelle diverse fasi
del proprio ciclo. Purtroppo il campione a disposizione, essendo abbastanza ridotto e poco variabile
rispetto alla dimensione dell’animale, può fornire soltanto delle informazioni limitate. È auspicabile che
queste informazioni siano le prime di una lunga serie ottenute un successivi studi di questo tipo.
Le informazioni ottenute in questo studio, derivano dalla collaborazione e dal coordinamento con la flotta
locale, con i turisti e con le istituzioni locali di Lampedusa che hanno permesso, in seguito a importanti
campagne di sensibilizzazione sviluppatesi negli anni, il recupero e il successivo trasferimento dei diversi
esemplari di tartaruga marina presso il centro di recupero e soccorso WWF di Lampedusa. L’osservazione
degli esemplari nei centri di recupero non soltanto è un ottima maniera per raccogliere informazioni sulla
biologia, sul comportamento in cattività o sui diversi fattori che contribuiscono a causare la mortalità degli
73
esemplari, ma rende anche possibile effettuare particolari studi morfometrici come quello condotto in
questo studio.
Le oltre 1000 fotografie scattate sull’intero campione, sono state selezionate ed organizzate in un archivio
fotografico creando una banca dati fotografica. In questa banca dati, biologi e ricercatori che svolgono
indagini di tipo morfometrico potrebbero immettere o acquisire fotografie d’interesse, che dovranno
essere scattate seguendo la stessa procedura standard qui seguita (vedasi Appendice 1).
Tutto questo potrebbe contribuire così al confronto di risultati, allo scambio di dati e di informazioni utili
soprattutto per studiare specie di interesse conservazionistico e di difficile reperimento come in questo
caso.
Future direzioni
Sarebbe interessante poter approfondire lo studio della popolazione di Caretta del Mediterraneo,
ampliando il campione con esemplari recuperati in altre zone per capire quali strutture anatomiche sono
soggette a maggiori modifiche. Mi auguro che questo lavoro possa essere solo l’inizio di uno studio più
dettagliato e complesso, dove sia possibile effettuare confronti su un campione più numeroso di
tartarughe, provenienti da diverse aree geografiche. In questo modo potrebbe essere possibile capire, se i
possibili cambiamenti morfometrici siano connessi alle diverse aree di recupero, oppure indagare gli effetti
del dimorfismo sessuale per valutare, se alcune strutture siano più o meno soggette a modifiche in base al
sesso dell’animale. Ad esempio, sarebbe interessante capire se la posizione delle unghie varia tra individui
di sesso maschile e femminile. Sappiamo che i maschi presentano delle unghie più grandi e spesse che
consentono loro di aggrapparsi al carapace delle femmine durante gli atti copulatori, ma non sappiamo
però se le unghie dei maschi e delle femmine si trovino in posizioni differenti a livello delle pinne anteriori.
Infine sarebbe anche utile ottenere un campione molto più numeroso e variabile, magari con un ampio
range dimensionale costituito da hatchling appena nati fino ad arrivare ad individui adulti di oltre 80 cm di
CCL. In questo modo si potrebbe arrivare a delineare un quadro più dettagliato sulle relazioni tra la
morfometria e gli altri diversi aspetti della biologia della specie Caretta caretta.
74
Bibliografia
Ackerman, R.A., (1980). Physiological and ecological aspects of gas exchange by sea turtle eggs. Am. Zool.,
20 (3), 575–583.
Adams, D.C., Rohlf, F.J., Slice, D.E., (2004). Geometric morphometrics: 10 years of progress following the
‘revolution’. Italian Journal of Zoology, 71, 5-16.
Argano, R., (1978). Project 1474 marine turtles. West and central Mediterranean. WWF Yearbook 1977-78,
pp. 154.
Argano, R., Baldari, F., (1983). Status of western Mediterranean sea turtles. Rapports et Procès-verbaux
des reunions de la Commission Internationale pour l’exploration Scientifique de la Mer Méditerranée 28,
233–235.
Argano, R., Basso, R., Cocco, M., Gerosa, G., (1992). Nuovi dati sugli spostamenti di Tartaruga marina
comune (Caretta caretta) in Mediterraneo. Boll. Museo Istituto Biol. Univ. Genova 56–57, 137–164.
Arianoutsou, M., (1988). Assessing the impacts of human activities on nesting of loggerhead sea-turtles
Caretta caretta (Linnaeus, 1758) on Zakynthos island, western Greece. Env. Cons., 15 (4), 327–334.
Arnold, S. J., (1983). Morphology, performance, and fitness. Integrative and Comparative Biology. 23, 347-
361.
Balazs, G.H., (1980). Synopsis of biological data on the green turtles in the Hawaiian islands. NOAA
Technical Memorandum NOAA-TM-NMFS-SWFC-7 , 141 pp.
Balazs, G.H., (1985). Impact of ocean debris on marine turtles: entanglement and ingestion, pp. 387–429.
In: Shomura, S., Yoshida, H.O. (Eds.), Proceedings of the workshop on the fate and impact of marine debris.
NOAA Technical Memorandum NMFS-SWFC-54. U.S. Department of Commerce.
Balletto, E., Giacoma, C., Piovano, S., Mari, F., Dell’Anna L., (Eds.), (2003). Piano d’Azione per la
conservazione della tartaruga marina Caretta caretta nelle isole Pelagie. Edi-tur srl, 60 pp.
75
Bartoli, L., (Eds.), (2006). Spiaggiamenti di tartarughe marine lungo le coste pugliesi – Analisi dei dati dal
1996 al 2006. Regione Puglia, Assessorato Ecologia, Autorità Ambientale Regionale, Area Naturalistica, 70
pp.
Basso, R., Cocco, M., (1986). Il progetto nazionale tartarughe marine. Thalassia Salentina 16, 65–72.
Basso, R., (1992). Osservazioni e ricerche sulle tartarughe marine presenti nei mari italiani. Del Grifo, Lecce,
71 pp.
Bentivegna, F., Paglialonga, A., (1998). Identification of the Gulf of Naples as a feeding ground and
migratory path for the Caretta caretta in the Mediterranean sea. Proceeding of 18th International Sea
Turtle Symposium 3-7 March 1998. Mazatlán, Mexico. NOAA Technical Memorandun, NMFS-SEFSC 436,
95–97 pp.
Bentivegna, F., Ciampa, M., Mazza, G., Paglialonga, A., Travaglini, A., (2003). Loggerhead turtle (Caretta
caretta) in Tyrrhenian Sea: trophic role of the Gulf of Naples. In: Margaritoulis, D., Demetropoulos, A., (Ed.),
Proceedings of the first Mediterranean conference on marine turtles. Barcelona Convention - Bern
Convention - Bonn Convention (CMS), Nicosia, Cyprus, 71–75 pp.
Bentivegna, F., Treglia, G., Hochsched, S., (2008). The first report of a loggerhead turtle Caretta caretta
nest on the central Tyrrhenian coast (western Mediterranean). Jour. Mar. Bio. Ass, vol. 3, 1–3 pp.
Bjournal, K.A., (1997). Fermentation in reptiles and amphibian. In : Mackie, R.I., White, B.A., (Eds.),
Gastrointestinal Micobiology. Gastrointestinal Ecosystems and Fermentations, vol. 1. ITP, New York, 199-
230 pp.
Bjorndal, K.A., (1997). Foraging ecology and nutrition of sea turtles. In : Lutz, P.L. and Musick, J.A. (Eds.) The
biology of sea turtles, pp. 199-231. CRC Press, Boca Raton.
Bjorndal, K.A., Bolten, A., and Martins, H.R., (2000). Somatic growth model of juvenile loggerhead sea
turtles Caretta caretta: duration of pelagic stage. Marine Ecology Progress Series 202, 265-272 pp.
Blackith, R., Reyment, R. A., (1971). Multivariate morphometrics. Academic Press, New York.
76
Bolten, A.B., Lutz, P.L., Musick, J.A. and Wyneken, J., (2003). Variation in sea turtle life history patterns:
neritic vs. oceanic developmental stages. In: The Biology of Sea Turtles (Ed.). Boca Raton: CRC Press, 243-
257 pp.
Bolten, A.B., (2003a). Variation in Sea Turtle Life History patterns: Neritic vs. Oceanic Development Stages.
In: P.L. Lutz and J. A. Musick (eds). The Biology of Sea Turtles, Vol. II. Chapter 9. CRC Press.
Bolten, A.B., (2003b). Active Swimmers-Passive Drifters: The Oceanic Juvenile Stage of Loggerheads in the
Atlantic System. In Bolten, A. & Witherington, B.E. (eds). Loggerhead SeaTurtles. Chapter 4. Smithsonian
Institution Press. Washington D.C., USA.
Bookstein, F.L., (1986). Size and shape spaces for landmark data in two dimensions. Stat. Sci., 1: 181-222.
Bookstein, F.L., (1991). Morphometric tools for landmark data: geometry and biology. Cambridge University
Press, Cambridge.
Bookstein, F.L., (1996a). Biometrics, biomathematics and the morphometric synthesis. Bull. Math. Bid., 58:
313-365.
Bookstein, F.L., (1998). A hundred years of morphometrics. ActaZool. Acad. Sci. Hung., 44: 7-59.
Bowen, B.W., Avise J.C., Richardson, J.I., Meylan, A.B., Margaritoulis, D., HopkinsMurphy, S.R., (1993).
Population structure of loggerhead turtles (Caretta caretta) in the northwestern Atlantic Ocean and
Mediterranean Sea. Conservation Biology 7, 834-844 pp.
Bowen, B.W., (2003). What is a Loggerhead Turtle? The Genetic Perspective. In Bolten, A. & Witherington,
B.E. (eds). Loggerhead Sea Turtles. Chapter 1. Smithsonian Institution Press. Washington D.C., USA.
Bruner, E., Manzi, G., (2004). Variability in facial size and shape among North and East Africans human
population. Italian Journal of Zoology, 71:1, 51-56 pp.
Bumpus, H.C., (1898). The elimination of the unfit as illustrated by the introduced sparrow Passer
domesticus. Biol. Lect. Mar. Biol.Lab. Woods Hole, 11: 209-226.
77
Caliani, I., Casini, S., Campani, T., Giannetti, M., Marsili, L., Fossi, M.C., (2010). First assessment of DNA
damage in Mediterranean pelagic species loggerhead turtle and swordfish: application of comet assay and
diffusion assay in frozen total blood. Comparative Biochemistry and Physiology A, Molecular and Integrative
Physiol, 157, S14–S14.
Campani, T., Baini, M., Giannetti, M., Cancelli, F., Mancusi, C., Serena, F., Marsili, L., Casini, S., Fossi., M.C.,
(2013). Presence of plastic debris in loggerhead turtle sea along the Tuscany coasts of the Pelagos
Sanctuary for Mediterranean Marine Mammals (Italy). Marine Pollution Bulletin 74, 225–230.
Cardini, A., Nagorsen, D., O’Higgins, P., Polly, P. D., Thorington, Jr R. W., Tongiorgi, P., (2009). Detecting
biological uniqueness using geometric morphometrics: an example case from the Vancouver Island
marmot. Ecology, Ethology and Evolution, doi:10.1111/j.1439-0469.2008.00503.x.
Casale, P., Freggi, D., Basso, R., (2005). Size at male maturity, sexing methods and adult sex ratio in
loggerhead turtles (Caretta caretta) from Italian waters investigated through tail measurements.
Herpetolog. J. 15: 145-148.
Casale, P., Catturino, L., Freggi, D., Rocco, M., Argano, R., (2007). Incidental catch of marine turtles by
Italian trawlers and longliners in the central Mediterranean. Aquatic Conservation: Marine and Freshwater
Ecosystems 17, 686–701.
Casale, P., Abbate, G., Freggi, D., Conte, N., Oliverio, M., Argano, R., (2008a). Foraging ecology of
loggerhead turtles Caretta caretta in the central Mediterranean Sea: evidence for a relaxed life history
model. Mar. Ecol. Prog. Ser. Vol. 372, 265–276.
Casale, P., Freggi, D., Rocco, M., (2008b). Mortality induced by drifting longline hooks and branchlines in
loggerhead sea turtles, estimated through observation in captivity. Aquatic Conservation: Marine and
Freshwater Ecosystems 18, 945–954.
Casale, P., Affronte, M., Insacco, G., Freggi, D., Vallini, C., Pino d’Astore, P., Basso, R., Paolillo, G., Abbate,
G., Argano, R., (2010). Sea turtle strandings reveal high anthropogenic mortality in Italian waters. Aquatic
Conservation, Marine and Freshwater Ecosystems, 20, 611–620.
Casale, P., Margaritoulis, D., (Ed.), (2010). Sea turtles in the Mediterranean: Distribution, threats and
conservation priorities. Gland, Switzerland, IUCN, pp. 294
78
Casale, P., (2011). Sea turtle by-catch in the Mediterranean. Fish and Fisheries 12, 299–316.
Castro, P., Huber, M.E., (2011). Biologia Marina. Edizione italiana a cura di Roberto Sandulli, Giuseppe
Giaccone, Angelo Tursi. (Ed.), McGrow Hill, 2011. – XVI, 517 pp.
Centro Studi Cetacei, (2000). Tartarughe marine recuperate lungo le coste italiane. Rendiconto 1998
(Reptilia). Atti Soc. it. Sci. nat. Museo civ. Stor. nat. Milano, 141(I), 145–158.
Centro Studi Cetacei, (2002). Tartarughe marine recuperate lungo le coste italiane. II. Rendiconto 1999
(Reptilia). Atti Soc. it. Sci. nat. Museo civ. Stor. nat. Milano, 142 (II), 265–281.
Centro Studi Cetacei, (2004). Tartarughe marine recuperate lungo le coste italiane. IV. Rendiconto 2001
(Reptilia). Atti Soc. it. Sci. nat. Museo civ. Stor. nat. Milano, 145 (I), 171–216.
Clarke, M.R, Campbell, A.C., Hameid, W.S., Ghoneim, S., (2000). Preliminary report on the status of marine
turtle nesting populations on the Mediterranean coast of Egypt. Biol. Cons., 94, 362–371.
Costa, C., Pasqualetto, L., Tibaldi, E., Loy, A., (2004). Shape changes and differences in the canial region in
Acipenser baerii and Acipenser naccarii of the different size. Italian Journal of Zoology, 71:1, 56-61 pp.
Davenport, J., and Clought, W., (1985). The use of limbscales or “pseudoclaws” in food hadling by young
loggerhead turtles. Copelia 1985: 786-788.
De Metrio, G., Megalofonou, P., (1988). Mortality of marine turtles Caretta caretta and Dermochelys
coriacea (Linnaeus, 1758) consequent to accidental capture in the Gulf of Taranto. Rapp. Comm.Iint. Mer
Médit,. 31 (2), 285.
De Metrio, G., Petrosino, G., Matarese, A., Tursi, A., Montanaro, C., (1983). Importance of the fishery
activities with drift lines on the populations of Caretta caretta and Dermochelys coriacea (Linnaeus, 1758)
(Reptilia, Testudines), in the Gulf of Taranto. Oebalia, IX (n.s.) 43–53.
Depecker, M., Berge, C., Renous, S., Penin, X., (2006). Geometric morphometrics of the shoulder girdle in
extant turtles (Chelonii). J. Anat. 208, 35–45 pp.
79
Di Palma, M.G., (1978). Notizie sulle Tartarughe marine in Sicilia (Reptilia, Testudines). Naturalista Sicil. 2,
1-6.
Dodd, C.K., (1988). Synopsis of the biological data on the loggerhead sea turtle Caretta caretta (Linnaeus
1758). U.S. Fish and Wildlife Service Biological Report 88:1-110.
Dryden I.L., Mardia K.V., (1998). Statistical shape analysis. JohnWiley & Sons, New York.
Epperly, S.P., Braun, J., Veishlow,. A., (1995). Sea turtles in North Carolina waters Conserv. Biol., 9 (2), 384–
394.
Fadda, D., Lenti, G., Ollano, G., Russo, A., (2006). Riassunti del 6° Congresso Nazionale della Societas
Herpetologica Italica, pp. 228.
Ferreira Junior, P.D., Treichel, R.L., Scaramussa, T.L., Scalfoni, J. T., (2011). Morphometric pattern in Caretta
caretta (Linneaus, 1758) (Cheloniidae) hatchlings from nets with different embryo development rates. Braz
J. Biol., 2011. Vol. 71, no. 1, p. 151-156.
Fisher R. A., (1935). The logic of inductive inference. J. R. Stat.Soc, 98: 39-82.
Fossette, S., Hobson, V.J., Girard, C., Calmettes, B., Gaspar, P., Georges, J., Hays, G.C., (2010). Spatio-
temporal foraging patterns of a giant zooplanktivore, the leatherback turtle. J. Mar. Syst 81: 225-234.
Hanson, J., Wibbels, T., Martin, R.E., (2000). Use of miniature data loggers to estimate sex ratios of
hatchling loggerhead sea turtles. In: Proceedings of the 18th International Symposium on Sea Turtle Biology
and Conservation. Mazatlan, Mexico, 3-7 marzo, 1998, 136–138.
Hickman, C.P. Jr., Roberts, L.S., Larson, A., (2004). Diversità animale. Edizione italiana a cura di Marina
Cobolli. (Ed.), McGraw-Hill, pp. 401.
Hendrickson J.R. (1980). The ecological strategies of sea turtles. Integrative and Comparative Biology, vol.
20, 597-608 pp.
Heppell, S.S., Limpus, C.J., Crouse, D.T., Frazer, N.B., Crowder, L.B., (1996). Population model analysis for
the loggerhead sea turtle, Caretta caretta, in Queensland. Wildlife Research 23:143-159.
80
Hotelling H., (1933). Analysis of a complex of statistical variables in-to principal components. J. Educ.
Psychol., 24: 417-441, 498-520.
Hughes, G.R., (1989). Sea Turtles. In: R. Crawford And A. Payne (Eds) Oceans Of Life Off Southern Africa,
Vlaeberg, Cape Town pp. 230-243.
James, M.C., Herman, T.B., (2001). Feeding of Dermochelys coriacea on Medusae in the Northewest
Atlantic. Chelonian Conserv. Biol. 4: 202-205.
Jolicoeur P., (1963). The generalization of the allometry equation.Biometrics, 19: 497-499.
Kamezaki N., Matsui M., (1997). Allometry in the Loggerhead Turtle, Caretta caretta .Chelonian
Concervation and Biology, 2(3): 421-425.
Kasparek, M., Godley, B.J., Broderick, A.C., (2001). Nesting of Green turtle, Chelonia Mydas, in the
Mediterranean : a review of status and conservation need. Zooogy in the Middle East, 45-74 pp.
Klingenberg C. P., Mclntyre G. S., (1998) - Geometric morphometrics of developmental instability: analyzing
patterns of fluctuating asymmetry with Procuste methods. Evolution, 52: 1363-1375.
Lazar, B., Margaritoulis, D., Tvrtkovic, N., (2004). Tag recoveries of the loggerhead sea turtle Caretta caretta
in the eastern Adriatic Sea: implications for conservation. J. Mar. Biol. Ass. U.K., 84, 475–480.
Limpus, C.J., Gyuris, E., Miller, J.D., (1988). Reassessment of the taxonomic status of the sea turtle genus
Natator McCulloch, 1908, with a redescription of the genus and species. Trans. R. Soc. South Aust., 112 (1),
1-9.
Limpus, C.J., Miller, J.D., Parmenter, J., Reimer, D., Mc Lachlan, N., Webb, R., (1992). Migration of
green (Chelonia mydas) and loggerhead (Caretta caretta) turtles to and from eastern Australia rookeries.
Wildlife Resources 19.
81
Limpus, C.J., Limpus, D.J., (2003). Biology of the loggerhead turtle in western South Pacific Ocean foraging
areas. In: Bolten, A.B., Witherington, B.E. (Ed.), Loggerhead sea turtles. Smithsonian Books, Washington,
DC, 93–113.
Lohmann, K.J., (1991). Magnetic orientation by hatchling loggerhead sea turtle (Caretta caretta). Journal of
Experimental Biology 155, 37-49.
Lohmann, K.J., Lohmann, C.M.F., (1993). A light-independent magnetic compass in the leatherback sea
turtle. Biological Bulletin 185, 149-151.
Lohmann, K.J., Lohmann, C.M.F., (1994). Acquisition of magnetic directional preference in hatchling
loggerhead sea turtles. Journal of Experimental Biology 190, 1-8.
Lohmann, K.J., Witherington, B.E., Lohmann C.M.F., Salmon M., (1997). Orientation, Navigation, and Natal
Beach Homing in Sea Turtles. In P.L. Lutz and J. A. Musick (eds). The Biology of Sea Turtles, Vol. I. Chapter 5.
Loy, A., (2007). Morphometrics and Theriology. Homage to Marco Corti. Hystrix Italian Journal of
Mammology, 18 (2), 115-136.
Luschi, P., (2013). Long-Distance Animal Migrations in the Oceanic Environment: Orientation and
Navigation Correlates, ISRN Zoology, Vol. 2013, Article ID 631839, pp.23. doi:10.1155/2013/631839.
Lutcavage, M.E., Lutz, P.L., Bossart, G., Hudson, D., (1995). Physiologic and clinicopathologic effects of crude
oil on loggerhead sea turtle. Arch. Environ. Contam. Toxicol., 28, 417–422.
Lutcavage, M.E., Lutz, P.L., (1997). Diving physiology. In: The Biology of Sea Turtles (Ed. by P. L. Lutz & J. A.
Musick), Boca Raton, CRC Press, 277–296.
Marcus L. F., (1990). Traditional morphometrics. In: F.J. Rohlf & F.L. Bookstein (eds), Proceedings of the
Michigan morphometrics workshop. Spec. Publ. No. 2. University of Michigan Museumof Zoology, Ann
Arbor, pp. 77-122.
Mann, T.M., (1977). Impact of developed coastline on nesting and hatchling sea turtles in southeastern
Florida. Unpublished Master's Thesis, Florida Atlantic University, Boca Raton, pp. 100.
82
Mardia K.V., Bookstein F.L., Moreton I.J., (2000). Statistical assess-ment of bilateral symmetry of shapes.
Biometrika, 87: 285-300.
Margaritoulis D., Argano, R. Baran, I., Bentivegna, F., Bradai, M.N., Camiñas. J.A., Casale, P., De Metrio, G.,
Demetropoulos, A., Gerosa, G., Goodley, B., Haddoud, D., Houghton, J., Laurent, L.& Lazar, B., (2003).
Loggerhead turtles in the Mediterranean. Present knowledge and conservation perspectives. In Bolten, A.
& Witherington, B.E. (eds). Loggerhead Sea Turtles. Chapter 11. Smithsonian Institution Press. Washington
D.C., USA.
Margaritoulis, D., (1988). Nesting of the loggerhead sea turtle Caretta caretta on the shore of Kiparissia
Bay, Greece, in 1987. Mesogee, 48, 59–65.
Marshall, C.D., Guzman, A., Narazaki, T., Sato, K., Kane, E.A., Sterba Boatwright, B. D., (2012). The
ontogenetic scaling of the bit force and head size in loggerhead sea turtles (Caretta caretta): implications
for durophagy in neritic, benthic habitats. The Journal of Experimental Biology 215, 4166 – 4171.
Marshall, C.D., Wang, J., Rocha Olivares, C., Godinez Reyes, C., Fisler S., Narazaki, T., Sato, K., Sterba –
Boatwright, B. D., (2013). Scaling of bite performance with head and carapace morphometrics in green
turtles (Chelonia mydas). Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 451 (2014) 91–97.
Meschini, P., Mancusi, C., Nicolosi, P., Rosselli, A., (1998). Sea Turtles recovered in the south Ligurian and
northern-central Tyrrhenian Seas. Medmaravis 5th symposium on marine wildlife, 284–286.
Miller, J.D., (1997). Reproduction in sea turtles. In: Lutz P.L., and Musick, J.A., (Eds), The biology of sea
turtles., Vol. I. Chapter 3, 51-81 pp.
Miller, J. D., Limpus C. .J., Godfrey M. H., (2003). Nest Site Selection, Oviposition, Eggs, Development,
Hatching, and Emergence of Loggerhead Turtles. In Bolten, A. & Witherington,B.E. (Eds). Loggerhead Sea
Turtles. Chapter 8. Smithsonian Institution Press. Washington D.C.,USA.
Mingozzi, T., Masciari, G., Paolillo, G., Pisani, B., Russo, M., Massolo, A., (2006). Discovery of a regular
nesting area of loggerhead turtle Caretta carettain southern Italy: a new perspective for national
conservation. Biodiversity Conserv., 16, 3519–3541.
83
Myers, E.M., Janzen, F.F., Adams, D.C., Turker, J.K., (2006). Quantitative genetics of plastron shape in slider
turtles(Trachemys scripta). Evolution, vol. 60, no. 3, 563-572 pp..
Mortimer, J.A., (1982). Factors influencing beach selection by nesting sea turtles. In: Bjorndal, K.A., (Ed.),
Biology and Conservation of Sea Turtles, Smithsonian Inst. Press, Washington, D.C., 45–51.
Mrosovsky, N., (1968). Nocturnal emergence of hatchling sea turtle: control by thermal inhibition of
activity. Nature 220:1338-1339.
Mrosovsky, N., (1980). Thermal biology of sea turtles. American Zoologist 20:531-547.
Mrosovsky, N., (1988). Pivotal temperatures for loggerhead turtles from northern and southern nesting
beaches. Canadian Journal of Zoology 66:661-669.
Monteiro, L.R., Cavalcanti, M.J., Sommer, H.J., (1997). Comparative ontogenetic shape changes in the skull
of Caiman species (Crocodylia: Alligatoridae). Journal of Morphology, vol. 231, no. 1, 53-62 pp.
Monteiro, L.R. , Reir, S.F., (1999). Princípios de morfometria geométrica. Ribeirão Preto: Holos Editora.
Monteiro, L.R., Diniz-Filho, J. A . F., Reis, S. F. and Araújo, E.D., (2002). Geometric estimates of heritability in
biological shape. Evolution, vol. 56, no. 3, 563-572 pp.
Musick, J., Limpus, C., (1997). Habitat utilization and migration in juvenile sea turtles. In:Lutz, P., Musick,
J.(Ed.), The biology of sea turtles. CRC Press, Boca Raton, FL, 137–163 pp.
National Research Council (NRC)., ( 1990). Decline of the sea turtles causes and prevention.
National Academy Press. Washington, D.C., (1990), 259 pp.
Nishizawa, H., Asahara, M., Kamezaki, N., Arai, N., (2010). Differences in the Skull Morphology between
Juvenile and Adult Green Turtles: Implications for the Ontogenetic Diet Shift. Current Herpetol. Vol 1, 97–
101 pp.
Nishizawa, H., Asahara, M., Kamezaki, (2011). Ontogenetic Scaling of the Humerus in Sea Turtles and its
Implications for the Locomotion. Zoological Science 30 (3): 211-216. 2013.
84
Oruç, A., (2001). Trawl fisheries in the Eastern Mediterranean and its impact on marine turtles. Zoology in
the Middle East 24, 119–125.
Pearson, K., (1895). Note on regression and inheritance in the case of two parents. Proc. R. Soc. Lond., 58:
240-242.
Pearson, K., (1901). On lines and planes of closest fi t to systems of points in space. Phil. Mag. Ser. 6, 2: 559-
572.
Plotkin, P.T., (1996). Occurrence and diet of juvenile loggerhead sea turtles, Caretta caretta, in the
northwestern Gulf of Mexico. Chelon. Conserv. Biol. 2 (1):78- 80.
Plotkin, P.T., Wickstein, M.K., and Amos, A.F., (1993). Feeding ecology of the loggerhead sea turtles Caretta
caretta in the Northwestern Gulf of Mexico. Mar. Biol. 115: 1-15.
Plotkin, P.T., (2003). Adult migrations and habitat use. In: Lutz, P.L., Musick, J.A., and Wyneken, J. (Eds.).
Biology of Sea Turtles. Volume 2. Boca Raton, 225-242 pp.
Primack, R., (1998a). Essential of conservation biology. Sinauer Associates, Sunderland.
Pritchard, P.C., (1997). Evolution, phylogeny, and current status. In: Lutz, P. L., Musick, J. A. (Eds) The
biology of sea turtles. Boca Raton, FL, CRC Press, 1–28 pp.
Pritchard, P.C.H. , Mortimer, J.A., (1999). Taxonomy, external morphology, and species identification. In:
Karen L. Eckert, Karen A. Bjorndal, F. Alberto Abreu-Grobois and Marydele Donnelly (eds.), Research and
Management Techniques for the Conservation of Sea Turtles. IUCN/SSC Marine Turtle Specialist Group
Publ. No. 4. Washington, D.C. 21-38 pp.
Piovano, S., Nicolini, G., Nannarelli, S., Dominici, A., Lo Valvo, M., Di Marco, S., Giacoma, C., (2006). Analisi
delle deposizioni di Caretta caretta sui litorali italiani. In: Societas Herpetologica Italica. Atti del V Congresso
Nazionale, Calci, Pisa. 29 Settembre – 3 Ottobre 2004, a cura di Zuffi M.A.L., Firenze University Press,
Firenze, 199–205 pp.
Reyment R.A., (1991). Multidimensional paleobiology. Pergamon Press, New York.
85
Rohlf, F.J. & Slice, D.E., (1990). Extensions of the Procuste method for the optimal superimposition of
landmark. Systematic Zoology, 39, 40-59.
Rohlf, F.J. & Marcus, L.F., (1993). A revolution in morphometrics. Trends in Ecology & Evolution, 8, 129-
132.
Rohlf, F.J., (1998). On applications of geometric morphometrics to studies of ontogeny and phylogeny. Syst.
Biol., 47: 147-158.
Rufino, M., Abello, P., Yule, A.B., (2004). Male and female carapace shape differences in Liocarcinus
depurator (Decapoda, Brachyura): An application of geometric morphometric to crustaceans. Italian Journal
of Zoology, 71:1, 79, 83 pp.
Salmon, M., Scholl, J., Allometric growth in juvenile marine turtles: possible role as an antipredator
adaptation. Zoology (2014).
Sella, I., (1982). Sea Turtles in the eastern Mediterranean and northern Red Sea. In: Bjorndal, K.A., (Ed.),
Biology and Conservation of Sea Turtles, Smithsonian Inst. Press, Washington, D.C., 417–423.
Sindaco, R., Doria, G., Razzetti, E., Bernini, F., (2006). Atlante degli anfibi e rettili d’Italia. Societas
Herpetologica Italica, Edizioni Polistampa, Firenze.
Schuyler, Q., Hardesty, B.D., Wilcox, C., Townsend, K., (2013). Global analysis of anthropogenic debris
ingestion by sea turtles. Conservation Biology, Vol. 00, No. 00, 1–11.
Schroeder, B.A., Foley, A.M., Bagley, D.A., (2003). Nesting Patterns, Reproductive Migrations, and Adult
foraging Areas of Loggerhead Turtles. In Bolten, A. & Witherington, B.E. (eds).
Loggerhead Sea Turtles. Chapter 7. Smithsonian Institution Press. Washington D.C., USA.
Stancyk, S.E., (1982). Non-human predators of sea turtles and their control. In: Bjorndal, K.A., ( Ed.), Biology
and Conservation of Sea Turtles, Smithsonian Inst. Press, Washington, D.C., 139–152.
Thomson, J.A., Heithaus, M.R., Dill, L.M., (2011). Informing the interpretation of dive profiles using animal-
borne video: A marine turtle case study. Journal ofExperimental Biology 410, 12-20 pp.
86
Valenzuela, N., Adams, D.C., Bowden, R.M., Gaurer, A.C., (2004). Geometric morphometric sex estimation
for hatchling turtles: a powerful alternative for detecting subtle sexual shape dimorphism. Copeia (2004), 4,
735-742 pp.
Viscosi, V., Cardini, A., (2011). Leaf Morphology, Taxonomy and Geometric Morphometrics: A simplified
Protocol for Beginners, Plos ONE, 6 (10): e25630. doi:10.1371/journal.pone.0025630.
Wainwright, P.C., Reilly, S.M., (1994). Ecological Morphology: Integrative Organismal Biology. Chicago, IL:
University of Chicago Press.
Wibbels T., (1999). Diagnosing the sex of sea turtles in foraging habitats. In: Eckert K.L., Bjorndal K.A.,
Abreu-Grobois F.A., Donnelly M. (eds), Research and Management Techniques for the Conservation of Sea
Turtles, IUCN/SSC Marine Turtle Specialist Group Publication No. 4, pp. 139-143.
Witherington, B.E., Martin, R.E., (1996). Understanding, assessing, and resolving light-pollution problems on
sea turtle nesting beaches. FMRI Tech. Rep. TR-2. Florida Marine Research Institute, St. Petersburg, Florida,
73 pp.
Witherington, B.E., (1999). Reducing threats to nesting habitat. In: Eckert, K.L., Bjorndal, K.A., Abreu-
Grobois, F.A., Donnelly, M., (Ed.), 1999. Research and Management Techniques for the Conservation of Sea
Turtles. IUCN/SSC Marine Turtle Specialist Group. Publication No 4. Washington, 179–183.
Wyneken, J., Salmon, M., (1992). Frenzy and postfrenzy swimming activity in loggerhead, green
andleatherback hatchling sea turtles. Copeia 1992, 478-484.
Wyneken, J., (1997). Sea turtle locomotion: mechanism, behaviour, and energetics. In P.L. Lutz and J.A.
Musick (eds) The biology of sea turtles (eds), pp.165-194. CRC Press, Boca Raton.
Wyneken, J., (2001). The Anatomy of Sea Turtles. U.S. Department of Commerce NOAA Technical
Memorandum NMFS-SEFSC- 470, 1-172 pp.
Wyneken, J., (2002). The External Morphology, Musculoskeletal System, and Neuro-Anatomy of Sea Turtles,
In P.L. Lutz and J. A. Musick (eds). The Biology of Sea Turtles, Vol. II. Chapter 2. CRC Press.
87
Wyneken, J., (2005). Guide to the anatomy of the sea turtle, NMFS Technical Publication. NOAA Technical
memorandum.
Yerli, S.V., Demirayak, F., (1996). Marine Turtle in Turkey: A Survey on Nesting Site Status. Unpublished
Report. DHKD, CMS Rep. No:96/4, Istanbul, 133 pp.
Zelditch, M.L., Swiderski D.L., Fink W.L., (2000). Discovery ofphylogenetic characters in morphometric data.
In: J.J., Weins (ed.), Phylogenetic analysis of morphological data. Smithsonian Institution Press, Washington,
37-83 pp.
Zelditch, M.L., Swiderski, D.L., Sheets, H.D., Fink, W.L., (2004). Geometric morphometric for biologists,
Elsevier Ltd.
88
Appendice 1: Procedura standard per eseguire le foto e per il posizionamento dei
landmark
Recuperare il più alto numero possibile di campioni da studiare. Procurarsi un telo bianco, una scala di
riferimento e una fotocamera digitale con la quale effettuare tutte le fotografie che poi verranno caricate in
un secondo momento sui software d’elaborazione dati.
Scegliere un luogo fisso dove effettuare qualsiasi volta le fotografie sui diversi esemplari da studiare.
Posizionare la fotocamera sempre alla stessa distanza di 3 metri aiutandosi con un treppiede o con una
struttura rigida che permette di posizionare la fotocamera digitale a tale distanza rispetto a ciò che si
desidera fotografare. Prima di effettuare le fotografie per aumentare il contrasto posizionare a terra un telo
bianco sul quale porre l’esemplare da studiare e la relativa scala di riferimento scelta. Ogni esemplare
prima di esser fotografato deve esser il più pulito possibile, eliminare quindi eventuali organismi epibionti
soprattutto a livello delle strutture che si vuol fotografare e studiare, successivamente asciugare l’animale
per evitare i riflessi della luce all’interno della fotocamera.
Iniziare a fotografare solo quando l’animale è tranquillo e immobile, se così non fosse tappare gli occhi
all’animale mediante un panno umido ed aspettare. Per ogni esemplare scattare più foto possibili, con e
senza flash. Trasferire le fotografie su un computer e svolgere una minuziosa selezione per scegliere le più
adatte per la digitalizzazione dei landmark.
Trasferire le fotografie sul programma TpsUtil per esser convertite nel formato tps. Successivamente
trasferire il tutto sul programma TpsDig 2 dove è possibile settare la scala e posizionare i landmark
omologhi sulle varie strutture anatomiche che si vuol studiare. Infine, trasferire le fotografie con i rispettivi
landmark sul software MorphoJ e iniziare le varie analisi statistiche.
Buon lavoro.
89
Appendice 2: Tabelle
ID CCL (cm) SCL (cm) SCW (cm) SESSO DATA RITROVAMENTO
3908A 64,6 58,6 / no id. 30/05/2007
11LMP84 39 34,7 28,6 no id. 13/12/2011
12LMP17 66,3 62,7 51,7 no id. 28/06/2012
12LMP18 73,8 69,1 65,7 no id. 02/07/2012
12LMP20 45,6 40,8 35,1 no id. 05/07/2012
12LMP21 75,7 69,9 65 maschio 10/07/2012
12LMP22 34,9 30,4 30,2 no id. 20/07/2012
12LMP27 42,1 37,6 32,5 no id. 03/08/2012
12LMP28 47,4 42,3 36,5 no id. 05/08/2012
12LMP35 41,3 37,3 32,4 no id. 29/08/2012
12LMP36 52,2 48,5 39,2 no id. 31/08/2012
12LMP38 53,6 49,5 45,7 no id. 09/09/2012
12LMP39 50 43,5 38 no id. 12/09/2012
12LMP40 57,5 53,4 44 no id. 16/09/2012
12LMP41 65,4 58,9 50,2 no id. 20/09/2012
12LMP42 65 60,3 49 no id. 23/09/2012
12LMP43 40,8 37,3 31,3 no id. 01/10/2012
12LMP44 45,1 40,2 33,7 no id. 05/10/2012
12LMP45 42,1 38,9 32,5 no id. 19/10/2012
12LMP46 53,1 49,1 40,3 no id. 25/10/2012
12LMP47 54,1 49,9 50,5 no id. 14/11/2012
12LMP49 67 55,3 46,8 no id. 03/12/2012
13LMP01 42,8 38,2 30,7 no id. 27/01/2013
13LMP05 49,8 44,7 38,2 no id. 16/04/2013
13LMP07 17,7 15,6 16,4 no id. 18/04/2013
13LMP08 29,6 27 21 no id. 21/04/2013
13LMP10 35 31,4 27,2 no id. 15/06/2013
13LMP11 34,7 31,1 25,8 no id. 15/06/2013
13LMP12 46,2 41,7 35,1 no id. 15/06/2013
90
13LMP13 47,4 43,1 35,2 no id. 15/06/2013
13LMP14 33,6 31,2 26,6 no id. 03/07/2013
13LMP15 54,3 48,8 39,9 no id. 14/07/2013
13LMP16 56 50 42,1 no id. 14/07/2013
13LMP17 71 65,8 54,2 no id. 15/07/2013
13LMP18 48,3 43,5 38,7 no id. 21/07/2013
13LMP19 59,9 54,7 45,7 maschio (necropsia) 24/07/2013
13LMP20 57,5 50,5 43,3 no id. 29/07/2013
13LMP21 28,3 25,6 23,1 no id. 05/08/2013
13LMP22 36,6 32,7 28,3 no id. 05/08/2013
13LMP23 40,6 35,7 31,4 no id. 05/08/2013
13LMP24 57,7 51,9 45,1 no id. 05/08/2013
13LMP25 45,8 41,4 35,5 no id. 05/08/2013
13LMP26 44 38,7 32,7 no id. 05/08/2013
13LMP27 54,6 49,2 40,4 no id. 06/08/2013
13LMP28 56,2 49,9 40,8 no id. 06/08/2013
13LMP29 48,3 43,7 36,6 no id. 07/08/2013
13LMP30 48,9 44,7 37,6 no id. 08/08/2013
13LMP31 21,7 18,8 15,3 no id. 12/08/2013
13LMP32 67,1 59,9 49,2 no id. 13/08/2013
13LMP33 48,4 42,4 36 no id. 18/08/2013
13LMP34 38,6 34,3 28,1 no id. 19/08/2013
13LMP35 65 60,3 48,8 no id. 23/08/2013
13LMP37 61 54,8 45,3 no id. 25/08/2013
13LMP38 41,2 37,6 30,9 no id. 25/08/2013
13LMP39 63,4 58,7 47,5 no id. 07/09/2013
13LMP40 38,1 33,7 27 no id. 10/09/2013
13LMP41 78,8 73,5 57 maschio 15/09/2013
13LMP42 66,3 60,2 60 no id. 25/09/2013
Tabella 1. Dati identificativi delle 58 tartarughe utilizzate. Sono riportati il codice identificativo dell’animale, le
rispettive misure di CCL (Curved Carapace Length), SCL (Straight Carapace Length) e SCW (Straight Carapace Width) in
cm, il sesso quando identificato e la relativa data di ritrovamento.
91
Average shape:
Lmk. Axis 1 (x) Axis 2 (y)
1 0,17475402 0,03559685
2 0,14193413 0,04468356
3 0,12019532 0,02891916
4 0,07203665 0,04326984
5 0,02690006 0,02864038
6 -0,02819976 0,04851222
7 -0,07015086 0,0279019
8 -0,11861181 0,05152406
9 -0,15988645 0,01780111
10 -0,15988645 -0,01780111
11 -0,11861181 -0,05152406
12 -0,07015086 -0,0279019
13 -0,02819976 -0,04851222
14 0,02690006 -0,02864038
15 0,07203665 -0,04326984
16 0,12019532 -0,02891916
17 0,14193413 -0,04468356
18 0,17475402 -0,03559685
19 0,14380231 -0,10604573
20 0,06181616 -0,16014629
21 -0,03488674 -0,15223711
22 -0,12586709 -0,1112155
23 -0,19942228 -0,0513693
24 -0,19942228 0,0513693
25 -0,12586709 0,1112155
26 -0,03488674 0,15223711
27 0,06181616 0,16014629
28 0,14380231 0,10604573
29 -0,23563106 0
30 -0,25377863 0
31 -0,15318199 0,11769971
32 0,04233001 0,18488856
33 0,15127017 0,13097766
34 0,199873 0,03258832
35 0,199873 -0,03258832
92
Average shape:
Lmk. Axis 1 (x) Axis 2 (y)
1 -0,10645683 0,21826344
2 -0,1309504 0,11235032
3 -0,18881265 -0,01142185
4 -0,15929757 -0,11501863
5 -0,0910812 -0,19755966
6 0 -0,32511941
7 0,0910812 -0,19755966
8 0,15929757 -0,11501863
9 0,18881265 -0,01142185
10 0,1309504 0,11235032
11 0,10645683 0,21826344
12 0 0,27433362
13 0 0,16963445
14 0 0,09189921
15 0 0,01633553
16 0 -0,07736941
17 0 -0,18677634
18 -0,26522274 -0,00403478
19 0,26522274 -0,00403478
20 -0,2987837 0,01595235
21 0,2987837 0,01595235
Procuste sums of squares: 0.169305475190447
Tabella 3. Rappresentazione delle nuove coordinate bidimensionali dei piastroni dopo l’Analisi di Procuste (GPA).
36 0,15127017 -0,13097766
37 0,04233001 -0,18488856
38 -0,15318199 -0,11769971
Procuste sums of squares: 0.12636455299769217
Tabella 2. Rappresentazione delle nuove coordinate bidimensionali dei carapaci dopo l’Analisi di Procuste (GPA).
93
Average shape:
Lmk. Axis 1 (x) Axis 2 (y)
1 0,3146532 0
2 0,22269929 0,13879752
3 0,22269929 -0,13879752
4 0,05084289 0,27833696
5 0,05084289 -0,27833696
6 -0,43086877 0,34048876
7 -0,43086877 -0,34048876
Procuste sums of squares: 0.139345477290357
Tabella 4. Rappresentazione delle nuove coordinate bidimensionali delle teste dopo l’Analisi di Procuste (GPA).
Average shape:
Lmk. Axis 1 (x) Axis 2 (y)
1 0,273389 0,130173
2 0,246451 0,085473
3 0,304563 0,028674
4 0,265914 -0,24446
5 -0,2258 -0,20286
6 -0,19277 0,188279
7 -0,67176 0,014725
Procuste sums of squares: 0.13754562277281154
Tabella 5. Rappresentazione delle nuove coordinate bidimensionali del lato destro delle teste dopo l’Analisi di
Procuste (GPA).
94
Lmk. Axis 1 (x) Axis 2 (y)
1 -0,27295 0,13286
2 -0,24903 0,081555
3 -0,3055 0,026109
4 -0,26401 -0,24623
5 0,233134 -0,20052
6 0,189227 0,191078
7 0,669128 0,015146
Procuste sums of squares: 0.13205804897903653
Tabella 6. Rappresentazione delle nuove coordinate bidimensionali del lato sinistro delle teste dopo l’Analisi di
Procuste (GPA).
Average shape:
Lmk. Axis 1 (x) Axis 2 (y)
1 -0,57648 0,066036
2 -0,13604 0,167205
3 0,268219 0,165575
4 0,611291 -0,06449
5 -0,16699 -0,33432
Procuste sums of squares: 0.11635566091849761
Tabella 7. Rappresentazione delle nuove coordinate bidimensionali delle pinne anteriori destre dopo l’Analisi di
Procuste (GPA).
95
Average shape:
Lmk. Axis 1 (x) Axis 2 (y)
1 0,585392 0,063934
2 0,131797 0,167565
3 -0,27417 0,163758
4 -0,60495 -0,06441
5 0,16193 -0,33085
Procuste sums of squares: 0.13204616038106434
Tabella 8. Rappresentazione delle nuove coordinate bidimensionali delle pinne anteriori sinistre dopo l’Analisi di
Procuste (GPA).
96
Ringraziamenti
Questo lavoro è stato possibile grazie alla collaborazione dei numerosi pescatori, turisti e forze
dell’ordine che hanno avvistato, recuperato e successivamente agevolato il trasferimento degli
esemplari di tartaruga marina presso il Centro di recupero e soccorso WWF di Lampedusa.
Colonna portante e punto di riferimento durante i 7 mesi della mia permanenza sull’isola è stato il
Centro WWF, in collaborazione con il quale ho svolto il mio lavoro.
Un ringraziamento di cuore va alla direttrice del Centro, dott.sa Daniela Freggi, per avermi aiutato,
guidato e insegnato gran parte delle cose che so sulle tartarughe marine. Non la ringrazierò mai
abbastanza per avermi accolto a braccia aperte e per avermi insegnato a lavorare sul campo.
Ringrazio i miei compagni di avventura Amedeo Ciccocioppo e Giulia Vagnoli, che con me, hanno
vissuto le emozioni e le varie fasi legate ai nostri progetti di studio. Non dimenticherò mai l’arrivo
sull’isola, la cura del Centro e delle sue pazienti, le campagne di sensibilizzazione, il rilascio delle
tartarughe in mare, la raccolta dei dati e la loro successiva elaborazione.
Gran parte della riuscita di questa tesi è da attribuirsi al lavoro e alla pazienza dei miei relatori,
dott. Paolo Casale e prof. Paolo Luschi che hanno contribuito a fornirmi il background necessario
allo svolgimento del mio lavoro e che mi hanno supportato durante tutto il periodo di internato di
tesi, elaborazione dati e stesura della tesi stessa. Li ringrazio per avermi dato la possibilità di
presentare il mio lavoro al prossimo XXXV Simposio sulle Tartarughe Marine che si terrà il
prossimo aprile in Turchia.