PIANI DI CONTROLLO SALMONELLA: CONTROLLI …. Cibin/A.Ricci (IZSVe) Ministero della Salute 15 MAGGIO...

V. Cibin/A.Ricci (IZSVe) Ministero della Salute 15 MAGGIO 2013

Istituto Zooprofilattico Sperimentale delle Venezie · OIE/National Reference Laboratory for Salmonella

PIANI DI CONTROLLO SALMONELLA:CONTROLLI UFFICIALI ED AUTOCONTROLLO

RUOLO DEI LABORATORI

PIANI DI CONTROLLO SALMONELLA:CONTROLLI UFFICIALI ED AUTOCONTROLLO


Antonia Ricci/ Veronica Cibin

ROMA, Ministero della Salute, 15 MAGGIO 2013



Centro di Referenza Nazionale per le Salmonellosi

Istituito con decreto del Ministero della Sanità del 4 ottobre 1999,Si trova presso la sede centrale dell’IZSVenezie (Legnaro, PD)http://www.izsvenezie.it/index.php?option=com_content&view=article&id=192&Itemid=204

Svolge la propria attività nel settore della tipizzazione fenotipica e genotipica di stipiti di Salmonella spp. isolati da matrici di origine veterinaria

Funge da contact point con il CRL di Bilthoven (NL)

Coordina la rete di sorveglianza di laboratorio Enter-Vet dal 2002

Fornisce consulenza scientifica all’EFSA (European Food Safety Authority) attraverso la partecipazione a gruppi di lavoro



Attività di ricerca in ambito nazionale ed internazionale

Dal 2007 riconosciuto laboratorio di referenza OIE

Responsabile è la Dott.ssa Ricci Antonia

Collabora con il Ministero della Salute nella revisione delle proposte normative (UE, nazionali) e nella stesura dei piani nazionali dimonitoraggio e controllo delle infezioni di salmonella nelle popolazioni animali



ARGOMENTI

OBIETTIVI DEI PIANI DI CONTROLLO, FREQUENZE E MODALITA’ DI CAMPIONAMENTO




OBIETTIVI DEI PIANI DI CONTROLLO



SALMONELLA E SALMONELLOSI

•DANIEL ELMER SALMON (1850-1914)Nel 1885 isolò Salmonella Choleraesuis

Salmonelle non adattate all’ospite: In grado di colonizzare intestino diverse specie, contaminare ambiente, alimenti, mangimi e di provocare nell’uomo forme morbose di gravità variabile; trasmissione di tipo zoonosico (animale-uomo)



S. Enteritidis = Salmonella enterica sub. enterica sierotipo Enteritidis

specie sub -specie Habitat e gruppo numero di sierotipi

enterica Animali a sangue caldo (I) 1531salamae Animali a sangue freddo e

ambiente (II)505

arizonae Animali a sangue freddo e ambiente (IIIa)

99

diarizonae Animali a sangue freddo e ambiente (IIIb)

336

houtenae Animali a sangue freddo e ambiente (IV)

73

indica Animali a sangue freddo e ambiente (VI)

13

S. bongori Animali a sangue freddo e ambiente

22

Totale 2579

Famiglia Enterobacteriaceae

S. enterica



SALMONELLA E SALMONELLOSI

• La salmonellosi è la seconda zoonosi alimentare piùfrequente in Europa con 95,548 casi confermati nel 2011, (Italia: 3,344 casi) e la prima causa di focolai di malattia alimentare (26.6%)

• Trend decrescente 5,4% rispetto al 2010 e 37,9% rispetto al 2007: successo dei piani di controllo negli avicoli!

• 44.4% SE; 24.9 ST; 4.7% variante monofasica ST

EFSA, (European Food Safety Authority), ECDC (European Centre for Disease Prevention and Control), 2013.The European Union Summary Report on Trends and Sources of Zoonoses, Zoonotic Agents and Food-borne Outbreaks in 2011;EFSA Journal 2013,11(4):3129, 250 pp. doi:10.2903/j.efsa.2013.3129



Distribuzione strong evidence outbreaks SE per veicolo -2011



Distribuzione strong evidence outbreaks ST per veicolo -2011



Controllo delle zoonosi

Regolamento CE n.2160/2003 del 17 novembre 2003 sul controllo della salmonella e di altri agenti zoonotici specifici presenti negli alimenti



•Gli Stati Membri devono presentare programmi di controllo obbligatori per i sierotipi di salmonella rilevanti per la sanità pubblica (frequenza, rapida o recente diffusione, virulenza)

•Tali programmi devono perseguire obiettivi precisi e misurabili di riduzione della percentuale di infezione fissati dalla Commissione

Regolamento CE 2160/2003Obiettivi



Zoonosi ed agenti zoonotici

Popolazione animale

Segmento della catena alimentare

Obiettivo fissato entro(+ 6 mesi)

Obbligatorietàpiani di controllo da(+ 6 mesi)

Tutti i sierotipi di

salmonellae rilevanti per

la sanitàpubblica

Riproduttori specie Gallus

gallus

Produzione primaria

12.12.2004 12.06.2006

Galline ovaiole Produzione primaria

12.12.2005 12.06.2007

Polli da carne Produzione primaria

12.12.2006 12.06.2008

Tacchini Produzione primaria

12.12.2007 12.06.2009

Suini da ingrasso

Macellazione 12.12.2007 12.06.2009

Suini riproduttori

Produzione primaria

12.12.2008 12.06.2010



APPLICAZIONE DEI PIANI A LIVELLO NAZIONALE: FREQUENZE E MODALITA’

DEI CONTROLLI



ASPETTI COMUNI AI PIANI NAZIONALI DI CONTROLLO

PIANO DI AUTOCONTROLLO APPROVATO

OBBLIGATORIETA’ PER ALLEVAMENTI CON CONSISTENZA MAGGIORE DI 250 CAPI E ATTIVITA’ COMMERCIALE (comma 3, articolo 1 del Regolamento CE

2160/2003)

CAMPIONI UFFICIALI DA PARTE DEI SERVIZI VETERINARI IN UNA SELEZIONE DI ALLEVAMENTI/GRUPPI (fatta eccezione per i riproduttori)

LABORATORI DI ANALISI ACCREDITATI E METODICA PER ISOLAMENTO NELLA MATRICE TARGET ACCREDITATA; METODI ALTERNATIVI PER AUTOCONTROLLO POSSONO ESSERE UTILIZZATI SE VALIDATI IN ACCORDO A EN/ISO 16140

APPLICAZIONE DI MISURE SANITARIE RESTRITTIVE FINALIZZATE A CONTENERE LA DIFFUSIONE DELL’INFEZIONE IN CASO DI SIEROTIPI RILEVANTI PER LA SALUTE PUBBLICA



PULIZIA E DISINFEZIONE AMBIENTI PER SIEROTIPI RILEVANTI PRIMA DIRIACCASARE

INDAGINE EPIDEMIOLOGICA FINALIZZATA AD IDENTIFICARE LA FONTE DI INFEZIONE E METTERE IN ATTO MISURE CORRETTIVE

VIETATO USO DI ANTIBIOTICI PER IL CONTROLLO DELLE SALMONELLE E L’USO DI VACCINI VIVI NON DISTINGUIBILI DAI CEPPI DI CAMPO

I RISULTATI DELLE ANALISI, SIA UFFICIALI CHE AUTOCONTROLLO, DEVONO ESSERE DISPONIBILI PRIMA DELL’INVIO AL MACELLO DEGLI ANIMALI

REPORTISITCA: OBBLIGO DI INSERIMENTO DEI DATI NEL PORTALE DEDICATO SIA PER CONTROLLI UFFICIALI CHE AUTOCONTROLLI ED IN CASO DI SIEROTIPI RILEVANTI INFORMAZIONI DI DETTAGLIO RELATIVE AL “FOCOLAIO” SU SIMAN



ASPETTI SPECIFICI DEI PIANI DI CONTROLLO




Popolazione animale


Obiettivo fissato entro

Obbligatorietàpiani di controllo da



la sanitàpubblica


gallus

Produzione primaria

12.12.2004 12.06.2006


12.12.2005 12.06.2007


12.12.2006 12.06.2008


12.12.2007 12.06.2009

Suini da ingrasso

Macellazione 12.12.2007 12.06.2009

Suini riproduttori

Produzione primaria

12.12.2008 12.06.2010



Obiettivo definitivo: Regolamento UE 200/2010; per le modalità di controllo e analisi si rimanda al Regolamento CE 213/2009 (anche tacchini riproduttori)

• Enteritidis, Typhimurium (compresa variante monofasica), Hadar, Infantis, Virchow

• Target: percentuale massima di gruppi positivi pari a 1%

Riproduttori Gallus gallus

RIPRODUTTORI GALLUS GALLUS



Autocontrollo

3 controlli/ciclo in azienda:

� entro 4 settimane dalla fase di deposizione

� entro 8 settimane dalla data stabilita per la fine della deposizione

� durante la fase di deposizione, sufficientemente distanziato dai precedenti

Controllo ufficiale

presso allevamento

Ogni due settimane in deposizionePulcini di 1 giorno4 settimane di etàDue settimane prima dell’entrata in deposizione (o spostamento)

TUTTI I GRUPPITUTTI I GRUPPI


Frequenza minima campionamenti (piano 2013)

PRESSO INCUBATOIOPiano di autocontrollo approvato,

frequenza di campionamento sulla base di

una attenta analisi del rischio

PRESSO INCUBATOIO 2 controlli anno



COSA CAMPIONARE (1)


In azienda, per gruppo, almeno:A) 2 pool di feci “campione composito”, min 100 gr max 150 gr per poolB) 5 paia di sovrascarpeC) 1 paio di sovrascarpe + polvere con tampone di tessuto (900 cm2) D) Nei gruppi in gabbia, 2 pool di feci fresche (150 gr l’uno)

Per la ricerca inibenti: minimo 5 animali per gruppoprevista sempre per campionamento di conferma in circostanze eccezionali

Polvere e sovrascarpe/feci vanno tenuti separati per lPolvere e sovrascarpe/feci vanno tenuti separati per l’’analisianalisi



COSA CAMPIONARE_CONTROLLI UFFICIALI(2)

In incubatoio:A) rivestimenti interni di scatole trasporto pulcini B) 1 o più tamponi di tessuto da 900 cm2

C) gusci di uova rotte (250 grammi da cui sub-campione di 25 grammi)




È PREVISTO UN CAMPIONAMENTO UFFICIALE DI CONFERMA IN CIRCOSTANZE ECCEZIONALI OVVERO QUANDO L’AUTORITÀ COMPETENTE ABBIA RAGIONI PER DUBITARE DEL RISULTATO DELL’ANALISI (falsi positivi o falsi negativi); si tratta

di una ripetizione di analisi + ricerca inibenti da 5 animali per gruppo

CAMPIONAMENTO UFFICIALE

È PREVISTO UN CAMPIONAMENTO UFFICIALE CON MODALITA’ ROUTINARIE IN CASO DI POSITIVITA’ SE/ST IN AUTOCONTROLLO




Misure sanitarie restrittive per SE/ST (NB compresa variante monofasica*)

Animali positivi Gli animali positivi vanno posti sotto vincolo sanitario, abbattuti e distrutti o, in alternativa destinati alla macellazione mettendo in atto misure finalizzate ad evitare il rischio di diffusione di salmonelle; gli animali sono inviati al macello in vincolo sanitario. Presso lo stabilimento di macellazione vengono applicate le misure previste dal Regolamento 1086/2011/UE o in alternativa i gruppi positivi possono essere destinati direttamente al trattamento termico.

Uova prodotte da gruppo positivoLe uova dei gruppi risultati positivi a S. Enteritidis o Typhimurium ancora presenti nelle aziende di origine e/o destinazione sono distrutte.


* Regolamento UE 517/2011 che modifica Regolamento 200/2010




Popolazione animale






la sanitàpubblica


gallus

Produzione primaria

12.12.2004 12.06.2006


12.12.2005 12.06.2007


12.12.2006 12.06.2008


12.12.2007 12.06.2009

Suini da ingrasso

Macellazione 12.12.2007 12.06.2009

Suini riproduttori

Produzione primaria

12.12.2008 12.06.2010



NB!Modifica del Regolamento UE 200/2010……dal primo gennaio 2010 l’obiettivo per i riproduttori Gallus gallus include quale sierotipo rilevante anche la variante monofasica di ST e di conseguenza modifica del Regolamento CE 2160/2003

Obiettivo deve essere raggiunto ogni anno basandosi sulla situazione sanitaria dell’anno precedente

GALLINE OVAIOLE

Galline ovaiole

Obiettivo definitivo: Regolamento UE 517/2011

Target: Una percentuale minima annua di riduzione dei gruppi positivi di ovaiole adulte pari almeno a:

• 10 % se la prevalenza nell’anno precedente era inferiore al 10 %;

• 20 % se la prevalenza nell’anno precedente era tra il 10 e il 19 %;• 30 % se la prevalenza nell’anno precedente era tra il 20 e il 39 %;

• 40 % se la prevalenza nell’anno precedente era uguale o superiore al 40 %;

Sierotipi rilevanti: S.Enteritidis, S.Typhimurium (compresa variante monofasica)



FREQUENZA MINIMA DEI CAMPIONAMENTI (2013)

AUTOCONTROLLO

CONTROLLI UFFICIALI

Ogni 15 settimane a partire da quando le galline hanno un’età di 24 ± 2 settimaneInoltre:Pulcini di 1 giornoDue settimane prima dell’entrata in deposizione

In un gruppo per anno per azienda in aziende con almeno 1000 capi non prima di 9 settimane dalla data prevista di macellazione; in caso non siano presenti gruppi di questa età, eseguire comunque il campionamento nel gruppo di animali più vicino alla data di macellazione

Galline ovaiole

TUTTI I GRUPPI



COSA CAMPIONAREper gruppo, almeno

A) Nei gruppi in gabbia due pool di feci fresche da 150 grammiB) Nei gruppi a terra due paia di sovrascarpe

IN CASO DI CONTROLLO UFFICIALE UN ULTERIORE CAMPIONE

NB! Possibile sostituire un campione di feci/sovrascarpe con un campione di polvere (100 grammi oppure tampone di tessuto da 900 cm2)

In laboratorio I campioni vanno riuniti per analisi (discrezionalità del laboratorio per sovrascarpe), sovrascarpe e polvere vanno tenuti separati (in caso di autocontrollo possono essere uniti)

Animali (minimo 5 per gruppo) per la ricerca inibenti, sempre per campionamento di conferma in circostanze eccezionali

Galline ovaiole



CAMPIONAMENTO UFFICIALE

È PREVISTO UN CAMPIONAMENTO UFFICIALE CON MODALITA’ROUTINARIE IN CASO DI POSITIVITA’ SE/ST (inclusa variante

monofasica) IN AUTOCONTROLLO

È PREVISTO UN CAMPIONAMENTO UFFICIALE DI CONFERMA IN CIRCOSTANZE ECCEZIONALI, CONFORMEMENTE AL REGOLAMENTO CE 1237/2007, PER ESCLUDERE RISULTATI INIZIALI FALSO POSITIVI;In questo caso il campionamento consiste di 5 campioni di feci + 2 campioni di polvere + ricerca inibenti da 5 animali per gruppo

Galline ovaiole



Misure sanitarie restrittive per SE/ST

Animali positivi Stesse misure previste per i riproduttori Gallus gallus

Uova prodotte da gruppo positivo SE/ST o sospetto + o di cui non sia nota la qualifica sanitaria devono essere considerate di categoria B

Se + SE/ST in galline ovaiole che producono uova destinate alla pastorizzazione gli animali possono essere macellati a fine ciclo

Galline ovaiole




Popolazione animale






la sanitàpubblica


gallus

Produzione primaria

12.12.2004 12.06.2006


12.12.2005 12.06.2007


12.12.2006 12.06.2008


12.12.2007 12.06.2009

Suini da ingrasso

Macellazione 12.12.2007 12.06.2009

Suini riproduttori

Produzione primaria

12.12.2008 12.06.2010



Obiettivo definitivo: Regolamento (UE) 200/2012

•Sierotipi rilevanti: S. Enteritidis, Typhimurium (compresa variante monofasica)

•Target: percentuale massima di gruppi positivi pari a 1%

Polli da carne

POLLI DA CARNE



Autocontrollo

Una volta all’anno nel 10% delle aziende con almeno 5000 polli, entro 3 settimane dalla data di macellazione prevista*

Controllo ufficiale

Entro 3 settimane dalla data di macellazione prevista*Oppure, nei casi autorizzati da servizio vet entro 6 settimane - per ciclo > 81 gg- Produzione biologica (Reg. CE 889/2008)

Un gruppo per annoTUTTI I GRUPPI

Polli da carne




COSA CAMPIONAREalmeno

DUE PAIA DI SOVRASCARPE PER GRUPPO

La misura di controllo è identificata con il miglioramento delle misure di biosicurezza

Gli animali positivi SE/ST vanno posti sotto vincolo sanitario e destinati alla macellazione; applicazione di quanto previsto dal Regolamento UE

1086/2011 o in alternativa trattamento termico

DESTINO DEGLI ANIMALI

Polli da carne

NB! Possibile sostituire un campione di sovrascarpe con un campione di polvere (100 grammi oppure tampone di tessuto da 900 cm2)

Polvere e sovrascarpe vanno analizzati separatamente; le due paia di sovrascarpe vanno riunite in un unico pool, se >2 possibile raggruppare in sub-campioni



Nel caso dei polli da carne non è prevista l’obbligatorietàdel campionamento di conferma a seguito di positività in autocontrollo

Polli da carne




Popolazione animale






la sanitàpubblica


gallus

Produzione primaria

12.12.2004 12.06.2006


12.12.2005 12.06.2007

Broiler Produzione primaria

12.12.2006 12.06.2008


12.12.2007 12.06.2009

Suini da ingrasso

Macellazione 12.12.2007 12.06.2009

Suini riproduttori

Produzione primaria

12.12.2008 12.06.2010



PIANO CONTROLLO TACCHINI RIPRODUTTORI

Tacchini riproduttori

• Sierotipi rilevanti: Enteritidis, Typhimurium (compresa variantemonofasica)

• Target: 1%, percentuale massima di gruppi positivi




Autocontrollo

Una volta all’anno nel 10% delle aziende negli animali tra la 30° e 45°settimana di età

Controllo ufficiale

Ogni 4 settimane in deposizione presso

allevamento (ultimo campionamento entro 3 settimane dalla macellazione oppure, nei casi autorizzati da Servizio vet entro 6 settimane)Pulcini di 1 giorno4 settimane di etàDue settimane prima dell’entrata in deposizione

TUTTI I GRUPPITUTTI I GRUPPI

In incubatoio piano di autocontrollo approvato + controlli ufficiali due volte/anno

Cosa campionare e misure restrittive sovrapponibili ai riproduttori Gallus gallus

Tacchini riproduttori




PIANO CONTROLLO TACCHINI DA INGRASSO

Tacchini da ingrasso

• Sierotipi rilevanti: Enteritidis, Typhimurium (compresa variantemonofasica)

• Target: 1%, percentuale massima di gruppi positivi




Autocontrollo

Una volta all’anno nel 10% delle aziende con almeno 500 tacchini da ingrasso entro 3 settimane dalla data di macellazione prevista*

Controllo ufficiale

Entro 3 settimane dalla data di macellazione prevista *(oppure

entro 6 settimane nei casi autorizzati dal servizio vet)- Ciclo > 100 giorni- Produzione biologica (Reg. CE 889/2008)

ALMENO IN UN GRUPPOTUTTI I GRUPPI

Tacchini da ingrasso

COSA CAMPIONARE e MISURE SANITARIE


COME POLLI DA CARNE



Nel caso dei tacchini da ingrasso e tacchini riproduttori (ultimo campionamento prima del depopolamento) non èprevista l’obbligatorietà del campionamento di conferma a seguito di positività in autocontrollo per motivi logistici

É prevista la possibilità di un campionamento di conferma in circostanze eccezionali per i tacchini riproduttori

Tacchini



OBIETTIVI DEI PIANI DI CONTROLLO, FREQUENZE E MODALITA’ DI CAMPIONAMENTO



LABORATORI CHE ESEGUONO LE ANALISI DEI CAMPIONI PRELEVATI DALL’AUTORITA’ COMPETENTE (ACCREDITATI IN ACCORDO A ISO 17025)

LABORATORI CHE ESEGUONO LE ANALISI DEI CAMPIONI PRELEVATI NELL’AMBITO DELL’AUTOCONTROLLO (ACCREDITATI IN ACCORDO A ISO

17025)

LABORATORI DEGLI IIZZSS

CENTRO DI REFERENZA NAZIONALE PER LE SALMONELLOSI C/O IZSVENEZIE

CENTRO DI REFERENZA NAZIONALE PER L’ANTIBIOTICORESISTENZA C/O IZSLTAnalisi del profilo dell’antibioticoresistenza 1 colonia/campione ufficiale +

CENTRO DI REFERENZA NAZIONALE PER L’EPIDEMIOLOGIA ED IL CENTRO SERVIZI NAZIONALE C/O IZSAM



CRNS E CIRCUITI INTERLABORATORIO

ISOLAMENTOCircuito interlaboratorio annuale rivolto in primis ai laboratori degli IIZZSS che effettuano isolamento di Salmonella dai campioni dei piani (matrice è costituita da feci di pollo)Tra settembre/ottobreNel 2012 (V) hanno partecipato 24 laboratori IZS e 1 lab privato

SIEROTIPIZZAZIONECircuito interlaboratorio annuale rivolto in primis ai laboratori degli IIZZSS che Effttuano sierotipizzazione di isolati di Salmonella

Tra dicembre-gennaioNel 2012-2013 (XII) hanno partecipato 10 laboratori IZS e 2 lab privati

Modalità di accesso tramite iscrizione via webhttp://www.izsvenezie.it/index.php?option=com_content&view=article&id=1116:schema-2011&catid=90&Itemid=151



ALCUNI DETTAGLI RISPETTO ALLA GESTIONE DEI CAMPIONI IN LABORATORIO…

DAL RICEVIMENTO DEI CAMPIONI ALLA REFERTAZIONE



CONFERIMENTO CAMPIONI (trasporto)

I campioni vanno inviati al laboratorio di analisi entro 24 ore dal prelievo

Trasporto a temperatura ambiente al riparo da calore (>25°C) e luce solare direttaMEGLIO A TEMEPRATURA DI REFRIGERAZIONE

In laboratorio conservazione a T di refrigerazione ed analisi entro 48 ore dal ricevimento

NB!comunque l’analisi deve avvenire entro 96 ore dal prelievo (ovvero 4 giorni)



ACCETTAZIONE DEI CAMPIONI UFFICIALI: CRITICITA’

INCONGRUENZE NELLA SCHEDA ACCOMPAGNATORIA

INCONGRUENZE RELATIVE AL NUMERO DI CAMPIONI

POLVERE NON SUFFICIENTE

MANCATO RISPETTO DEI TEMPI



METODI DI ANALISI

Isolamento: ISO 6579-2002/amd1:2007: MSRV come unico terreno di arricchimento selettivo (LABORATORI ACCREDITATI)

Per i campioni in autocontrollo possibili metodi alternativiPer i campioni in autocontrollo possibili metodi alternativi purché convalidati in conformità della norma EN/ISO 16140/2003Laboratorio che esegue le analisi e flusso delle informazioni deve essere chiaramente riportato nel piano di autocontrollo

Tipizzazione sierologica secondo lo schema Kauffman-White-Le MinorIn caso di campioni ufficiali è prevista sempre la sierotipizzazione “completa”

In caso di campioni in autocontrollo è prevista la sierotipizzazione completa per:Riproduttori Gallus gallus e tacchiniPossibilitPossibilitàà di escludere/confermare la sola presenza di SE/ST in caso di podi escludere/confermare la sola presenza di SE/ST in caso di polli da lli da carne, tacchini da ingrasso e galline ovaiolecarne, tacchini da ingrasso e galline ovaiole



Divieto di utilizzare vaccini vivi non distinguibili da ceppi di campo

Il laboratorio di analisi effettua test discriminatorio sulla base delle informazioni riportate sulla scheda

accompagnatoria campioni

Gallivac SE, Merial (KIT IDT Salmonella Diagnosticum)Avipro Salmonella Vac T e AviPro Salmonella Vac E, Lohmann (non cresce nel terreno MSRV)

Nel caso in cui il richiedente l’analisi lo ritenga opportuno, sulla base

delle informazioni a sua disposizione, potrà richiedere al laboratorio in via eccezionale, di procedere ad effettuare il test discriminatorio anche nei confronti del ceppo vaccinale riferibile al vaccino Gallivac SE.



REFERTAZIONE CAMPIONI UFFICIALI (1)

Si evidenzia che i laboratori devono garantire risposte analitiche nel tempo piùbreve possibile, poiché la ricerca e sierotipizzazione delle salmonelle hanno carattere di priorità.I risultati di tali analisi devono essere comunicati rapidamente al richiedente

l’analisi ed in ogni caso l’assenza di Salmonella nel campione esaminato, deve essere comunicata entro 5 giorni lavorativi dalla data di inizio analisi.

Si ritiene di fondamentale importanza, in caso di positività, indicare già in prima istanza il sierotipo isolato, e non una generica presenza di Salmonella spp. Inoltre, in caso di identificazione di sierotipi rilevanti il laboratorio che ha effettuato l’isolamento o la sierotipizzazione dovrà procedere ad effettuare il test che consente di differenziare il ceppo vaccinale dal ceppo di campo, ed il risultato di tale test dovrà essere riportato nel rapporto di prova.



REFERTAZIONE CAMPIONI UFFICIALI (2)

A fronte di reali difficoltà che possono intercorrere nel corso dell’identificazione del sierotipo di appartenenza degli isolati, a garanzia della rapiditàdell’emissione dell’esito, si suggerisce che, il laboratorio che esegue la sierotipizzazione, valuti l’opportunità di emettere un rapporto di prova in cui si evidenzi l’esclusione di sierotipi appartenenti a S. Enteritidis e Typhimurium (per i quali è prevista l’applicazione di misure sanitarie restrittive) e che prosegua solo successivamente e nei tempi consoni alla sierotipizzazione completa.



L’esito degli esami dei campioni prelevati in autocontrollo può essere comunicato all’Autorità competente sia dal laboratorio che ha eseguito l’analisi sia dal responsabile dell’allevamento.

Deve essere concordato, tra il laboratorio ed il responsabile dell’allevamento, chi si fa carico di comunicare l’esito all’Autorità competente (la modalità di

gestione del flusso delle informazioni è da specificare nel piano di

autocontrollo aziendale), ma allevatore e laboratorio sono entrambi garanti dell’informazione all’Autorità competente e quindi perseguibili in caso diinadempienze.

Il laboratorio è sempre comunque tenuto a comunicare l’esito al richiedente l’analisi.

REFERTAZIONE CAMPIONI AUTOCONTROLLO (1)



In caso di isolamento di sierotipi rilevanti, la trasmissione dell’informazione all’Autorità Competente ha carattere di urgenza;

per l’isolamento di sierotipi non rilevanti, la trasmissione dell’informazione, comunque obbligatoria, è realizzata tramite registrazione in SIS dei campionamenti completi di esito, incluso il sierotipo,nei modi e tempiprevisti.

Il Servizio Veterinario competente ha però facoltà di richiedere, specificando ciò specificando ciò nel piano di autocontrollo approvatonel piano di autocontrollo approvato, la comunicazione di tutti gli esiti negativi/positivi degli autocontrolli, indipendentemente dai sierotipi isolati, con la frequenza ritenuta opportuna.

REFERTAZIONE CAMPIONI AUTOCONTROLLO (2)



GRAZIE PER L’ATTENZIONE

PIANI DI CONTROLLO SALMONELLA: CONTROLLI …. Cibin/A.Ricci (IZSVe) Ministero della Salute 15 MAGGIO...

Documents

Transcript of PIANI DI CONTROLLO SALMONELLA: CONTROLLI …. Cibin/A.Ricci (IZSVe) Ministero della Salute 15 MAGGIO...