Irmi cnr
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A"vità in cui è impegnato il CNR
• OR CNR -‐ GENOMNIA 1 U=lizzo di tecniche di sequenziamento massivo degli acidi nucleici (Next Genera=on Sequencing, NGS) per il controllo qualità e sicurezza nell’uso terapeu=co di cellule staminali
• OR CNR 2 Implementazione di sistemi HTS per l’iden=ficazione di nuove molecole regolatrici della proliferazione e del differenziamento delle cellule staminali.
• OR CNR -‐ GENOMNIA 3 Implementazione di biomatrici in grado di controllare il differenziamento di cellule staminali verso feno=po muscolare striato, modulando l'ambiente cellulare ed extracellulare, e s=molare l'angiogenesi
OR CNR – GENOMNIA 1
• Tecniche di sequenziamento massivo degli acidi nucleici per affrontare in modo innova=vo i problemi connessi al controllo di qualità e alla sicurezza nell’uso terapeu=co delle cellule staminali • RI 1.1 (mesi 1-‐24) Analisi dei bio-‐contaminan= in batch di cellule staminali u=lizzando tecniche di RNA-‐seq
• RI 1.2 (mesi 1-‐24) Generazione di insiemi di marcatori di espressione genica (signatures) per caraVerizzare i diversi =pi di cellule staminali
• RI 1.3 (mesi 1-‐24) Analisi della stabilità genomica delle cellule durante la fase di espansione in cultura
• SS 1.4 (mesi 24-‐36) Validazione dei risulta= oVenu= aVraverso le analisi bioinforma=che su nuove culture sperimentali
OR CNR 2 • Iden=ficazione e caraVerizzazione di nuove molecole che regolano la proliferazione e/o il differenziamento delle cellule staminali tramite la piaVaforma robo=ca Cell-‐Maker e la microscopia a fluorescenza automa=zzata
• Screening basato su feno=po cellulare • RI 2.1 (mesi 1-‐6) Costruzioni di linee di cellule staminali ingegnerizzate per lo studio
della proliiferazione e/o differenziamento • RI 2.2 (mesi 7-‐12) Screening in automazione di librerie di compos=
farmacologicamente a]vi sulle linee precedentemente definite • SS 2.3 (mesi 13-‐36) Validazione dell’a]vità dei compos= iden=fica= su cellule
staminali umane
• Screening basato su fluorescenza automa=zzata • RI 2.4 (mesi 1-‐6) Analisi del differenziamento miogenico di mesangioblas= murini • RI 2.5 (mesi 7-‐12) Iden=ficazione di molecole in grado di modulare le capacità
differenzia=ve miogeniche • RI 2.6 (mesi 13-‐24) Analisi mul=parametrica dei profili di a]vazione di proteine
regolatrici nei processi differenzia=vi dei mesangioblas= • SS 2.7 (mesi 24-‐36) Validazione degli effe] delle molecole sull’a]vazione dei vari
pathway monitora= mediante analisi mul=parametrica
OR CNR e GENOMNIA 3 • Implementazione di biomatrici in grado di controllare il differenziamento di cellule staminali e cellule iPS verso feno=po muscolare striato, modulando l'ambiente cellulare ed extracellulare, e s=molare l'angiogenesi • Generazione e caraVerizzazione di iPS umane da fibroblas= e precursori miogenici pericitari per la formazione di muscolo ar=ficiale, in modo da confrontare le due diverse sorgen= cellulari per la loro capacità differenzia=va in senso muscolo-‐scheletrico
• Generazione di tessuto ar=ficiale muscolare derivato da precursori miogenici umani differenzia= da iPS sfruVando le capacità muscolo indu]ve e di scaffolding di biomateriali. Sarà studiato il ruolo della matrice extracellulare (ECM) nel promuovere il differenziamento cellulare e la complessa organizzazione dell’architeVura =ssutale tridimensionale. L’obie]vo è di generare materiali innova=vi e biocompa=bili in grado di mimare proprio le caraVeris=che della ECM e quindi influenzare le capacità differenzia=ve delle cellule iPS .
• Sviluppo di molecole e/o pep=di sinte=ci in grado di controllare la proliferazione e/o differenziamento e/o migrazione delle cellule staminali muscolari, per favorire la riparazione del danno muscolare acuto, e/o delle cellule endoteliali e dei loro precursori, per controllare l’angiogenesi associata al processo di rigenerazione
Gruppi PartecipanA
• Equipe Francesca De Santa – Armando Felsani, IBCN • Equipe Cesare Gargioli, UniRoma2 • Equipe Roberto Rizzi, IBCN • Equipe Gabriella Minchio], IGB-‐ABT
PEG-Fibrinogen molecules purification
Hydrogel mould
Photoinitiation
365nm (12W)
Hydrogel formation nLacZ-PLGF-Mabs
The PEG-fibrinogen gel
PEGylated-‐Fibrinogen (PF) allows myofibers formaAon
Mabs (nLacZ)
8mg/ml
PF
SYTOX Green Myosin heavy chain
Artificial muscle generation after subcutaneous implant
Impiant Scaffold
Cells
Tibialis Anterior
Artificial Muscle
Tibialis Anterior
Fibroblasts, Pericites and Satellite isolation Reprogramming into iPS cells iPS engineering for PLGF-MMP9 (PiPS-MiPS) Myogenic differentiation In Vivo In Vivo experiments supported by Hydrogel-scaffold
PLGF-‐iPS and MMP9-‐iPS supported by hydrogel scaffold possess an enhanced capacity to engraP and generate muscle in vivo In vitro
In vivo
• Cripto Loss of Func=on ( Cripto LOF) Guardiola et al., PNAS 2012
• Cripto Gain of Func=on (Cripto GOF)
Modelli Murini condizionali in cellule staminali muscolari
(satelli=)
• Approcci gene=ci e farmacologici alla rigenerazione muscolare
• Mobilizzazione delle cellule staminali muscolari (satelli=) in modelli murini di danno muscolare acuto
• Iden=ficazione di nuovi regolatori delle cellule staminali (Automazione HTS)
IGB “A.B.T.” Gabriella Minchio]
• Proteina Cripto ricombinante
• Delivery sistemico -‐Biopolimeri
Approcci farmacologici
RNA Seq/cellule satelli=
Cripto LOF
Cell-‐based Phenotypic Screening: Iden;ficazione di nuovi regolatori delle cellule staminali
Cell Prolifera=on
Cell Colony Phenotype
Targeted Differen=a=on
• LOPAC • HDAC Inhibitors
Small molecules
Casalino et al., Journal Molecular Cell Biol, 2011 Casalino et al., Molecular Biotechnology, 2011
96-channel head disposable pipetting tips
The system executes Protocols for targeted differentiation of stem cells Screening of compounds libraries
Advantage/benefits High standard reliability, performance and flexibility Low user intervention Contamination risk reduction
Method standardization Up to 4000 single compounds simultaneously screened
Complete sterility
Robo=c plajorm: The Cell maker