ENTOMOFAUNA EPIEDAFICA EN ÁREAS DE...
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ENTOMOFAUNA EPIEDÁFICA EN ÁREAS DE RESTAURACIÓN ECOLÓGICA DEL PARQUE ECOLÓGICO CANTARRANA (BOGOTA D.C) YUDY MARCELA LÓPEZ MORENO 20121010040 DIANA PAOLA PIANDA RODRÍGUEZ 20111010036 UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS FACULTAD DEL MEDIO AMBIENTE Y RECURSOS NATURALES PROYECTO CURRICULAR DE INGENIERÍA FORESTAL BOGOTÁ D. C. 2018
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ENTOMOFAUNA EPIEDÁFICA EN ÁREAS DE RESTAURACIÓN ECOLÓGICA
DEL PARQUE ECOLÓGICO CANTARRANA (BOGOTA D.C)
YUDY MARCELA LÓPEZ MORENO 20121010040
DIANA PAOLA PIANDA RODRÍGUEZ 20111010036
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DEL MEDIO AMBIENTE Y RECURSOS NATURALES
PROYECTO CURRICULAR DE INGENIERÍA FORESTAL
BOGOTÁ D. C.
2018
ENTOMOFAUNA EPIEDAFICA EN AREAS DE RESTAURACION ECOLOGICA
DEL PARQUE ECOLÒGICO CANTARRANA (BOGOTA D.C)
Trabajo de grado como requisito para optar al título profesional de Ingeniera Forestal
bajo la modalidad de investigación - innovación
Estudiantes
Yudy Marcela López Moreno 20121010040
Diana Paola Pianda Rodríguez 20111010036
Docente Director
Olga Patricia Pinzón Florián Ph.D.
Codirector
Lorena Andrea Cortés Ballén M.Sc.
Evaluadora
Korina Ocampo Zuleta
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DEL MEDIO AMBIENTE Y RECURSOS NATURALES
PROYECTO CURRICULAR DE INGENIERÍA FORESTAL
BOGOTÁ D. C.
2018
AGRADECIMIENTOS
Universidad Distrital Francisco José de Caldas Facultad del Medio Ambiente y Recursos
Naturales, por contribuir con nuestra formación profesional, brindarnos las herramientas
para hacer aportes a la sociedad.
Nuestra directora, Olga Patricia Pinzón Florián por brindarnos su apoyo en cada una de las
etapas de este proceso.
Nuestra codirectora Lorena Andrea Cortés Ballén por su acompañamiento durante la
investigación y la revisión del documento.
Nuestros familiares por su apoyo incondicional durante la elaboración de este trabajo y el
aprendizaje conjunto.
Al personal profesional de apoyo presente en el Laboratorio de Sanidad Forestal por su
colaboración y continuo empuje.
4
``Las especies que sobreviven no son las más fuertes, ni las más rápidas, ni las más
inteligentes; sino aquellas que se adaptan mejor al cambio``
Charles Darwin
5
TABLA DE CONTENIDO
1. INTRODUCCIÓN ........................................................................................................ 13
2. DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA ............................................................................ 15
2.1 PREGUNTA DE INVESTIGACIÓN ......................................................................... 15
2.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN ............................. 15
3. JUSTIFICACIÓN ........................................................................................................ 16
4. ESTADO DEL ARTE ................................................................................................... 17
4.1 IMPORTANCIA DE LOS INSECTOS COMO BIOINDICADORES ...................... 17
4.1.1 La edafofauna como bioindicador en la restauración .......................................... 17
4.2. PROCESOS DE RESTAURACIÓN Y CONSERVACIÓN EN BOSQUES
ANDINOS COLOMBIANOS .......................................................................................... 20
4.3 ÁREA DE ESTUDIO ............................................................................................ 21
4.4.1 Clima ................................................................................................................... 23
4.4.2 Antecedentes Históricos Parque Ecológico Cantarrana ...................................... 24
4.4.3 Problemática del Parque ...................................................................................... 25
4.4.4 Diversidad en Parque Ecológico Cantarrana ....................................................... 26
5. OBJETIVOS ................................................................................................................. 27
5.1 OBJETIVO GENERAL .............................................................................................. 27
5.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ..................................................................................... 27
6. METODOLOGÍA ......................................................................................................... 27
6.1 DELIMITACIÓN DE ÁREA DE ESTUDIO ............................................................. 27
6.2 FASE PRELIMINAR ................................................................................................. 27
6.3 FASE DE CAMPO ..................................................................................................... 29
6.3.1 Visita Previa ........................................................................................................ 29
6.3.2 Muestreo .............................................................................................................. 29
6.3.3 Muestreo de vegetación ....................................................................................... 30
6.3.4 Variables dasométricas de la vegetación ............................................................. 31
Diámetro ....................................................................................................................... 31
Diámetro de copa .......................................................................................................... 31
6.3.5 Recolección de Muestras Insectiles ..................................................................... 31
6.3.6 Colecta Manual .................................................................................................... 33
6.3.7 Extracción de insectos de la Hojarasca................................................................ 33
6
7.4 FASE DE LABORATORIO ....................................................................................... 34
7.4.1 Identificación taxonómica vegetal ....................................................................... 34
7.4.2 Identificación taxonómica insectil ....................................................................... 34
7.5 FASE DE ANÁLISIS ................................................................................................. 35
7.5.1 Análisis de composición vegetal ......................................................................... 35
7.5.2 Validación diseño del muestreo de insectos ........................................................ 35
7.5.3 Diversidad Alfa y Beta ........................................................................................ 36
7.5.4 Índices Empleados para el Cálculo de Diversidad Alfa ...................................... 36
7.5.5 Diversidad Alfa Verdadera .................................................................................. 36
7.5.6 Índices Empleados para Medir la Diversidad Beta ............................................. 37
7.7.7 Análisis de Variación Espacial ............................................................................ 37
8. RESULTADOS ............................................................................................................. 38
8.1 CARACTERIZACIÓN DE LA COBERTURA VEGETAL ..................................... 38
Caracterización de la cobertura vegetal zona alta ........................................................ 39
Caracterización de la cobertura vegetal zona media .................................................... 40
Caracterización de cobertura vegetal zona baja ........................................................... 41
8.2 ENTOMOFAUNA EPIEDÁFICA ............................................................................. 42
8.2.1 Composición General de la Entomofauna en el Parque ...................................... 42
8.2.2 Caracterización de Entomofauna para la Zona Alta ............................................ 48
8.2.3 Caracterización de Entomofauna para la Zona Media......................................... 50
8.2.4 Caracterización de Entomofauna para la Zona Baja ........................................... 52
8.2.5 Composición trófica de la Entomofauna ............................................................. 54
8.2.6 Caracterización de Collembola ............................................................................ 58
8.3 REPRESENTATIVIDAD DEL MUESTREO DE INSECTOS ................................. 58
8.4 ESTIMACIÓN DE LA DIVERSIDAD ALFA EN INSECTOS ................................ 61
8.5 DIVERSIDAD VERDADERA DE INSECTOS ....................................................... 62
8.6 ESTIMACIÓN DE LA DIVERSIDAD ALFA EN FLORA ...................................... 64
8.7 ESTIMACIÓN DE LA DIVERSIDAD BETA .......................................................... 65
8.8 ENTOMOFAUNA ASOCIADA Y VARIABLES AMBIENTALES ....................... 66
8.8.1 Análisis de Redundancia (RDA) - Entomofauna ................................................ 66
8.8.2. Análisis de Redundancia (RDA) – Entomofauna Epiédafica ............................. 71
9. DISCUSIÓN ................................................................................................................. 75
7
9.1 CARACTERIZACIÓN DE LA DIVERSIDAD INSECTIL EN EL PARQUE ......... 75
9.2 GRUPOS PREDOMINANTES .................................................................................. 77
9.3 FAMILIAS POCO REPRESENTADAS EN EL MUESTREO ................................. 79
9.4 DIVERSIDAD DE INSECTOS Y FLORA ................................................................ 79
9.5 COMPARACION CON ECOSISTEMAS MAS CONSERVADOS ......................... 81
9.6 INTERRELACIÓN VEGETACIÓN - ENTOMOFAUNA ....................................... 83
10. CONCLUSIONES ........................................................................................................ 85
11. RECOMENDACIONES .............................................................................................. 85
12. BIBLIOGRAFÍA .......................................................................................................... 86
8. ANEXOS ....................................................................................................................... 97
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Abundancia de cobertura vegetal. Caracterización de especies por zona de estudio
(alta, media, baja) ................................................................................................................. 38
Tabla 2. Abundancia absoluta de insectos encontrados en las zonas (Alta, Media, Baja) en
cada uno de los transectos(I-III). .......................................................................................... 43
Tabla 3. Abundancia absoluta y relativa de insectos por transecto y zona muestreada. ...... 45
Tabla 4. Abundancia absoluta de morfoespecies por familiav, (Ver Anexo 3.). .................. 45
Tabla 5. Abundancia absoluta de insectos obtenidos en Embudo de Berlesse..................... 47
Tabla 6. Individuos recolectados por captura directa ........................................................... 47
Tabla 7. Composición trófica de los individuos encontrados en el Parque Ecológico
Cantarrana. XX Muy frecuente, X Frecuente, xx algunas veces, x rara vez. (Anexo 4.) .... 55
Tabla 8. Abundancia absoluta de Collembola en las tres zonas de estudio.......................... 58
Tabla 9. Parámetros de la curva obtenida por el modelo de ajuste de Clench ..................... 59
Tabla 10. Parámetros obtenidos al estimar la eficiencia de muestreo por zonas .................. 61
Tabla 11. Características químicas de suelos de cada transecto muestreado, (JBJCM, 2017).
Se destaca que el humus se tomó como presencia (1) y ausencia (0), mientras que las demás
variables son continuas ......................................................................................................... 66
Tabla 12. Variables vegetales y de suelos organizadas en modelos para encontrar aquellas
que generaran mayor aporte a la variación en el ensamblaje de insectos en el Parque
Ecológico Cantarrana ........................................................................................................... 67
Tabla 13. Valores Eigen y porcentajes de variación total del Análisis de Redundancia. ..... 68
Tabla 14. Aporte de la variación al ensamblaje de la entomofauna por parte de las familias
mejor representadas en el área de estudio (Familias obtenidas después de la transformación
de Hellinger). ........................................................................................................................ 69
Tabla 15. Aporte a la variación de variables de riqueza en la vegetación y características del
suelo en el ensamblaje de la entomofauna............................................................................ 69
8
Tabla 16. Variables vegetales y de suelos organizadas en modelos para encontrar aquellas
que generaran mayor aporte a la variación en el ensamblaje de insectos en el Parque
Ecológico Cantarrana ........................................................................................................... 71
Tabla 17. Valores Eigen y porcentajes de variación total del Análisis de Redundancia para
la entomofauna epiedáfica. Datos obtenidos con ayuda del programa R Project. ................ 72
Tabla 18. Aporte de la variación al ensamblaje de la entomofauna epiedáfica por parte de
las familias y ordenes mejor representadas en el área de estudio (Ajuste de Hellinger). ..... 73
Tabla 19. Aporte a la variación de variables de riqueza en la vegetación y características del
suelo en el ensamblaje de la entomofauna epiedáfica. ......................................................... 73
Tabla 20. Valores comparativos índices (Simpson, Shannon, Margalef) ............................ 80
Tabla 21. Comparación de la fauna encontrada en el Parque Cantarrana con ecosistemas
más conservados. .................................................................................................................. 82
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Delimitación del área del Parque Ecológico Cantarrana ubicado en la localidad de
Usme Bogotá. ....................................................................................................................... 22
Figura 2. Precipitación promedio mensual Estación meteorológica San José (mm), (2011).
.............................................................................................................................................. 23
Figura 3. Valores Medios Mensuales de Temperatura (OC). Estación meteorológica San
José, (2011). .......................................................................................................................... 24
Figura 4. Cobertura vegetal característica de zona alta (A. Parcelas de vegetación, B.
cobertura característica) – Parque Ecológico Cantarrana. .................................................... 28
Figura 5. Cobertura vegetal característica del Parque Ecológico Cantarrana. A. zona media
(A. cobertura característica Acacia m, B. arbustos). ............................................................ 28
Figura 6. Cobertura vegetal característica de zona baja (A. y B. cobertura arbustiva
característica) – Parque Ecológico Cantarrana. .................................................................... 29
Figura 7. Diseño de la trampa de caída utilizada en este estudio, constituida por un vaso de
12 onzas, con 6 onzas de solución preservante y cubierto con ayuda de un plato de icopor.
Fuente: Autores .................................................................................................................... 30
Figura 8. Localización de los tres primeros transectos utilizados en el premuestreo. Fuente:
Autores ................................................................................................................................. 30
Figura 9. Trampas pitfall en campo– Parque Ecológico Cantarrana (A. Techo, B. vaso
plástico, C. trampa en campo) .............................................................................................. 32
Figura 10. Localización de los nueve transectos utilizados en el muestreo. Fuente: Autores
.............................................................................................................................................. 33
Figura 11 A. B. C. D. Embudos Berlesse con muestras de hojarasca y capa orgánica de
suelo ...................................................................................................................................... 34
Figura 12. Muestras separadas al nivel de orden previo al proceso de determinación
taxonómica y preservación. .................................................................................................. 35
9
Figura 13. IVI índice de valor de importancia para las especies vegetales de la zona alta de
muestreo ............................................................................................................................... 40
Figura 14 Perfil de vegetación en unos de los transectos desarrollados en la zona alta. ..... 40
Figura 15. IVI índice de valor de importancia para las especies vegetales de la zona media
de muestreo ........................................................................................................................... 41
Figura 16 perfil de vegetación en unos de los transectos desarrollados en la zona media. .. 41
Figura 17. IVI índice de valor de importancia para las especies vegetales de la zona Baja de
muestreo ............................................................................................................................... 42
Figura 18 Perfil de vegetación en unos de los transectos desarrollados en la zona Baja. .... 42
Figura 19. Abundancia relativa de ordenes encontrados en el Parque Ecológico Cantarrana
durante la época húmeda. ..................................................................................................... 43
Figura 20. Abundancia absoluta de morfoespecies insectiles presentes en la zona Alta ..... 48
Figura 21. Zona Alta: Abundancia absoluta por familia. ..................................................... 49
Figura 22. Zona Alta. Abundancia absoluta por orden......................................................... 49
Figura 23. Abundancia absoluta de las morfoespecies insectiles reconocidas en la zona
Media. ................................................................................................................................... 50
Figura 24. Zona Media. Abundancia de individuos insectiles en las morfoespecies y
familias de clasificación ....................................................................................................... 51
Figura 25. Zona Media. Representatividad de individuos insectiles en las familias y ordenes
de clasificación. .................................................................................................................... 51
Figura 26. Morfoespecies insectiles presentes en la zona Baja. ........................................... 52
Figura 27. Zona Baja. Abundancia de individuos insectiles en las morfoespecies y familias
de clasificación. .................................................................................................................... 53
Figura 28. Zona Baja. Representatividad de individuos insectiles en las familias y órdenes
de clasificación. .................................................................................................................... 53
Figura 29. Hábitos tróficos más frecuentes de cada una de las familias a las cuales
pertenecen las morfoespecies encontradas en el área de estudio.......................................... 54
Figura 30. Curvas de acumulación de especies por Zonas de estudio y del área general de
muestreo ............................................................................................................................... 59
Figura 31. Curvas de acumulación de especies por Zonas y del área en general ajustadas a
partir del modelo de Clench.................................................................................................. 60
Figura 32 Valores índice de Simpson para insectos ............................................................. 61
Figura 33. Diversidad estimada con el índice Shannon para cada zona del área estudiada. 62
Figura 34. Ordenes de diversidad (q0, q1,q2) en las zonas muestradas .............................. 62
Figura 35 Ordenes de diversidad (q0, q1,q2) en las zonas muestreadas A. (COLEOPTERA,
DERMAPTERA, HYMENOPTERA) y B. (COLEOPTERA, DERMAPTERA,
HYMENOPTERA Y COLLEMBOLA) .............................................................................. 63
Figura 36 Índice de Simpson para vegetación ...................................................................... 64
Figura 37. índice de Shannon para vegetación ..................................................................... 64
Figura 38. Dendrogramas de similitud para insectos tomando los transectos muestreados en
cada Zona (A= Alta, M= Media, B=Baja) A. Clúster de similaridad índice de Bray Curtis,
B. Clúster de similaridad índice de Jaccard .......................................................................... 65
10
Figura 39. Dendrogramas de similitud para vegetación tomando los transectos muestreados
en cada Zona (A= Alta, M= Media, B=Baja) A. Clúster de similaridad índice de Bray
Curtis, B. Clúster de similaridad índice de Jaccard. ............................................................. 65
Figura 40 Composición de la entomofauna del PEC explicada por las variables edáficas y
variables de riqueza vegetal generado a partir del modelo No.5. ......................................... 68
Figura 41 Matriz de correlaciones entre variables ambientales y la abundancia de las
familias insectiles pertenecientes a la entomofauna general, aplicando método de
Spearman: las correlaciones entre 0,7 y 1 son correlaciones positivas aceptables de la
misma forma que las correlaciones de -1 y -0,7, las correlaciones cuyo resultado es 0
indican la ausencia de correlación lineal entre las variables ................................................ 70
Figura 42. Composición de la entomofauna del PEC explicada por las variables edáficas y
variables de riqueza vegetal con la abundancia de los insectos epiedáficos generado a partir
del modelo No.9. .................................................................................................................. 72
Figura 43. Matriz de correlaciones que relaciona la entomofauna epiedáfica con las
variables físico químicas del suelo y la abundancia de los insectos, aplicación del método
de Spearman: correlaciones entre 0,7 y 1 son correlaciones positivas aceptables de la misma
forma que las correlaciones de -1 y -0,7, las correlaciones cuyo resultado es 0 indican la
ausencia de correlación lineal entre las variables ................................................................. 74
Anexo 1 Formato Base para la descripción de unidades de muestreo.................................. 97
Anexo 2 Formato Base para la identificación de insectos .................................................... 97
Anexo 3 Morfoespecies encontradas parque ecológico cantarrana ...................................... 97
Anexo 4 Composición trófica de los individuos encontrados en el Parque Ecológico
Cantarrana. XX Muy frecuente, X Frecuente, xx algunas veces, x rara vez ....................... 97
11
RESUMEN
Se caracterizó de manera preliminar la diversidad de la entomofauna del Parque Ecológico
Cantarrana con énfasis en los insectos caminadores del suelo y de la hojarasca. Para el
muestreo del área se subdividió en tres zonas (Alta, Media, Baja), cada una con diferente
estado de desarrollo de la vegetación, siendo principalmente arbórea o arbustiva. Para este
fin se emplearon tres métodos de recolección de insectos: la captura directa diurna durante
3 horas; extracción a partir de 18 muestras de hojarasca empleando el embudo Berlesse y
30 trampas de caída por cada zona distribuidas en 3 transectos de 100 metros, para un total
de 90 trampas. Se realizó un muestreo entre la tercera semana de Julio y el mes de Agosto
en la época húmeda. Se recolectaron 1776 individuos representados en 9 ordenes, 44
familias y 53 morfoespecies. En la edafofauna encontrada predominaron las familias
Staphylinidae (Coleoptera), Forficulidae (Dermaptera) y Formicidae (Hymenoptera),
siendo organismos de hábitos saprófagos, fitófagos, depredadores y omnívoros. Por último,
se encontró la diversidad general de la entomofauna muestreada no se diferenció
significativamente entre las zonas comparadas, sin embargo, se observa una tendencia a
mayor diversidad en la zona con predominio de vegetación de porte arbustivo.
12
ABSTRACT
Insect fauna of the “Parque Ecológico Cantarrana”, with emphasis in soil and litter, was
preliminarily characterized. Sampling are was subdivided in three zones (High, Medium,
Low) each with different vegetation age and size mainly arboreal or shrubby. Three insect
collecting methods were used: direct diurnal capture for 3 hours; extraction from 18 litter
samples using Berlesse funnels and 30 pitfall traps per zone. Traps and sampling was
conducted in three transects, of 100 meters each, which gave a total of 90 traps. Sampling
was performed during the third week of July and the month of August during the wet
season. A total of 1776 insects were collected, represented in 9 orders, 44 families and
aprox. 53 morphospecies. Staphylinidae (Coleoptera), Forficulidae (Dermaptera) and
Formicidae (Hymenoptera) families, predominated in the sampling, wich are organisms
with saprophagous, phytophagous, predatory and omnivorous habits. Finally, it was
established that the general diversity of the insect fauna sampled did not differed
significantly among the sampled areas, however, there is a tendency towards greater
diversity in the areas predominated by shrubby vegetation.
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1. INTRODUCCIÓN
Durante los últimos años la localidad de Usme ha presentado un deterioro progresivo en las
coberturas de vegetación nativa debida principalmente a acciones de tipo antrópico, entre
los cuales se encuentra la ampliación de la frontera agrícola y pecuaria, la introducción de
especies exóticas y el crecimiento urbano. Sin embargo, como indica Lobo-Guerrero (1998)
la principal problemática que se gesta desde los años 50 en las vegas del río Tunjuelo es la
extracción de materiales de construcción generando grandes canteras de gravilla y arena, lo
cual constituye enormes cortes a cielo abierto que alcanzan hasta 80 m de profundidad y a
su vez suelen ser rellenados con escombros, propiciando que las condiciones de
degradación se extiendan y amplíen sus límites (Calvachi, 2012).
La localidad de Usme presenta pocos espacios verdes, siendo uno de ellos el Parque
Ecológico Cantarrana el cual se ha visto afectado principalmente por el inadecuado manejo
de residuos sólidos por parte de residentes en predios cercanos, el pastoreo de ganado en
área del parque, la construcción y desarrollo de potenciales proyectos de vivienda en el
entorno, así como el deterioro de especies de flora por parte de los visitantes, lo cual
contribuye a la degradación de bienes y recursos ambientales (Gutiérrez et al., 2013).
El ecosistema predominante en el área de muestreo corresponde al bosque andino, siendo
este un hábitat de numerosas especies que cumplen funciones como la regulación hídrica
(Bubb et al., 2004), además se caracteriza por su gran riqueza de flora siendo el resultado
de múltiples fenómenos ocurridos en el pasado, contribuyendo a conformar un escenario
con alta heterogeneidad ambiental y por ende con alta diversidad regional (Van Der
Hammen et al., 1995). En la región Andina se concentra el mayor desarrollo económico y
urbano del país (Van der Hammen y Rangel, 1997). Lo cual cataloga a los ecosistemas
andinos como los más diversos y amenazados (Etter y Villa, 2000), incrementando su
transformación.
Debido a la degradación del ecosistema en áreas del parque, el Jardín Botánico ha asistido
el proceso de recuperación del ecosistema que ha sido degradado, de tal forma que se
reintegren los componentes básicos de la estructura, función y composición de especies.
Dentro del proceso de restauración ecológica es relevante el papel que cumple la
comunidad de insectos ya que estos responden a las condiciones de la vegetación, y por ello
es que caracterizar sus poblaciones puede ser utilizado como bioindicador del entorno. La
restauración de ecosistemas degradados es un tema de creciente interés (Mattoni et al.,
2000), y por ende se hace necesario estimar el éxito o el fracaso de cualquier proyecto de
restauración, siendo el monitoreo de la dinámica de la diversidad insectil una herramienta
apropiada para ese propósito, (Guzmán-Mendoza et al., 2016); de tal forma que entender
los patrones estructurales del hábitat y su relación con las comunidades de insectos resulta
fundamental a la hora de diseñar un programa de manejo y conservación (Guzmán-
Mendoza et al., 2016).
14
En este sentido, los artrópodos son organismos útiles como indicadores ya que reúnen
varias características como: su abundancia y diversidad en la naturaleza, participan en
diferentes redes tróficas y además son sensibles a perturbaciones antropogénicas (Cardoso,
et al., 2011). Particularmente, los macroinvertebrados edáficos son frecuentemente usados
como indicadores del estado de conservación de un ecosistema ya que permiten evaluar con
facilidad el impacto sobre la diversidad debido a las actividades humanas (Aguirre, 2011;
Cabrera et al., 2011).
Dentro de los artrópodos, los insectos son reconocidos por su éxito evolutivo, gran
abundancia, diversidad, presencia en la mayoría de hábitats y roles funcionales y además
representan un excelente papel a la hora de evidenciar los procesos de fragmentación de la
cobertura vegetal, en donde pueden ser el reflejo de los ciclos de nutrientes, o ser parte de
la dieta de otros organismos, tienen altas tasas de recambio y de crecimiento, incluso son el
reflejo de condiciones heterogéneas en escalas muy finas debido a su distribución
microgeográfica, de esta manera puede ser catalogada como una herramienta útil al evaluar
la efectividad de estrategias de manejo de un ecosistema (Malenque et al., 2007; Guzmán-
Mendoza et al., 2016).
En el contexto anterior, el Parque Ecológico Cantarrana se ha convertido en un eje
ambiental de gran relevancia para la Localidad de Usme debido a los diversos servicios
ecosistémicos que brinda a la población circundante, por tal motivo es necesario
caracterizar la entomofauna presente en áreas del Parque Ecológico Cantarrana, resaltando
la importancia de los insectos en diversos procesos ecológicos que han sido desarrollados.
15
2. DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA
2.1 PREGUNTA DE INVESTIGACIÓN
¿Cómo es la composición de la entomofauna epiedáfica en las áreas en proceso de
restauración ecológica del Parque Ecológico Cantarrana?
2.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN
El Parque Ecológico Cantarrana, se encuentra situado en la Localidad Quinta de Usme de la
ciudad de Bogotá, al finalizar la cuenca media del rio Tunjuelo entre 2630 y 2680 msnm
(Acueducto de Bogota, 2013). La Empresa de Acueducto y Alcantarillado de Bogotá –
EAAB es la propietaria del predio, el cual cuenta con una extensión de 100 hectáreas cuyos
usos propuestos son de tipo forestal y de recreación pasiva (Romero, 2012).
Las actividades del Jardín Botánico José Celestino Mutis iniciaron en el 2012 con la
recuperación de coberturas vegetales en gran parte de la extensión superficial del parque,
entre el 2014 y 2015 se reintrodujeron 2127 individuos de las especies Alnus acuminata,
Lycianthes lycioides, Baccharis latifolia, Dodonaea viscosa, Duranta mutisii, Xylosma
spiculifera, Bernadesia spinosa, Monnina aestuans, Caesalpinia spinosa, Cestrum mutisii,
Croton hibiscifolius, Myrcianthes leucoxyla y Viburnum triphyllum (Cortes, 2016).
Cabe destacar que el Parque Ecológico Cantarrana ha sido una zona expuesta a diferentes
procesos de degradación, entre estos se encuentran los generados por actividades mineras,
actualmente se busca la recuperación paisajística y restauración ambiental de dicha zona
por medio de actividades de restauración con especies propias del bosque andino
anteriormente mencionadas, lo cual contribuye a la generación de bienes y servicios
ecosistémicos que proporcionan recreación y beneficios ambientales para las comunidades
asentadas en esta zona (Cortes, 2016).
Debido a la ausencia de información relacionada con la insectofauna epiedafica del área de
intervención en restauración del parque, es necesario conocer la composición y estimar la
diversidad existente entre tres zonas que han sido intervenidas. Reconociendo que, dentro
de la macrofauna, los insectos son particularmente importantes en el funcionamiento del
ecosistema, debido a su participación en procesos ecológicos como la descomposición de
materia orgánica, herbívora y polinización, asimismo se reproducen con rapidez, presentan
grandes tamaños poblacionales y son relativamente fáciles de muestrear (Brown Jr., 1991;
Kremen, 1993; McGeoch, 1998; Longcore, 2003). Adicionalmente los insectos cumplen
diversas funciones entre las cuales se encuentra la fragmentación mecánica y
desintegración de los residuos orgánicos del suelo, el aumento de la fertilidad edáfica por
medio del enriquecimiento microbiológico producto de su microflora intestinal (Barrera et
al., 2010). Considerando la importancia de este grupo de organismos y su potencial como
16
indicadores, en el presente estudio se busca caracterizar la diversidad de la entomofauna
epiedáfica del área piloto de investigación.
En el campo de la restauración ecológica, la macrofauna edáfica cobra gran importancia
debido a su capacidad para favorecer el ambiente edáfico en el cual se desarrollan las
plantas. De igual manera, su estudio permite entender el estado y la dinámica del suelo
como ecosistema para así plantear tratamientos que faciliten su restablecimiento (Barrera et
al., 2010).
3. JUSTIFICACIÓN
Los ecosistemas andinos son sido considerados de gran importancia ecológica debido a su
amplia diversidad y especiación (Ulloa y Jorgensen, 2005). Por su parte los patrones de
diversidad de los bosques Andinos se ven ampliamente influenciados por la elevación, ya
que conforme la altitud se incrementa por encima de los 1500 m, la diversidad y la altura
del dosel disminuyen y las comunidades de epífitas y musgos aumentan en diversidad y
biomasa (Scatena et al., 2010). Sin embargo, este tipo de ecosistemas andinos también han
estado expuestos a la transformación del paisaje original, siendo amenazados por el avance
de la frontera agropecuaria, la explotación excesiva de los recursos hídricos y la deficiente
planeación del uso de la tierra (Arellano y Rangel, 2008). Para el caso del área de estudio se
encuentran diversas presiones de origen antrópico como la extracción de material para
construcción, introducción de especies exóticas y la ampliación urbanística, lo cual
contribuye a la degradación ecosistémica.
Una de las medidas para recuperar ecosistemas consiste en los procesos de restauración
ecológica, definida como el trabajo de apoyar a la recuperación de la trayectoria histórica
de un ecosistema que ha sido dañado, degradado o destruido (SER, 2004), a través de
técnicas de restauración, y el estudio de la fauna epiedáfica puede ser de vital importancia
por su participación en diversos procesos ecológicos.
En los ecosistemas alto andinos, las comunidades de insectos son componentes
estructurales importantes porque participan en el mantenimiento de la estructura del suelo,
en la descomposición de la materia orgánica, en el ciclo de los nutrientes y en el
mantenimiento de redes tróficas, además existen grupos de artrópodos presentes en el suelo
que establecen indicadores respecto al estado de restauración de bosques que han sufrido
cambios o han sido reemplazados por pastos (Nakamura et al., 2003). En este sentido se
destaca la importancia de contribuciones al conocimiento de los insectos en ambientes alto
andinos de Colombia como los bosques y los páramos (Fagua y Bonilla, 2005).
En contexto anterior, el Parque Ecológico Cantarrana no es ajeno a la degradación
ambiental por ende el conocimiento de la composición de la macrofauna puede contribuir a
evaluar el avance de los procesos de restauración ecológica que se han llevado a cabo de tal
17
forma que se exalte la importancia de los insectos en diversos procesos ecológicos y en el
funcionamiento de este tipo de ecosistema andino. Se pretende realizar la clasificación
taxonómica de la entomofauna al nivel de familia de tal forma que los resultados puedan
ser comparados con los encontrados en estudios previos cercanos al Parque Ecológico
Cantarrana (Morales y Amat, 2012; Corporación Suna Hisca, 2002).
4. ESTADO DEL ARTE
4.1 IMPORTANCIA DE LOS INSECTOS COMO BIOINDICADORES
Los insectos son organismos reconocidos por su alto éxito evolutivo, alta abundancia,
diversidad, gran variedad de hábitats y posiciones funcionales, son frecuentemente usados
como indicadores del estado de un ecosistema y permiten evaluar con facilidad el impacto
sobre la diversidad debido a las actividades humanas (Aguirre, 2011; Cabrera et al., 2011).
Los insectos representan un excelente papel a la hora de evidenciar los procesos de
fragmentación de la cobertura vegetal, siendo el reflejo del impacto sobre los ciclos de
nutrientes, entre otras funciones ecológicas al ser parte de la dieta de otros organismos; son
fácilmente estudiados por sus altas tasas de recambio y de crecimiento, incluso permiten ser
parte de la diferenciación de condiciones heterogéneas en escalas muy finas debido a su
distribución microgeográficas; pueden ser catalogados como una herramienta útil al evaluar
la efectividad de estrategias de manejo de un ecosistema (Malenque et al., 2007; Guzmán-
Mendoza et al., 2016).
El patrón de diversidad de los insectos no depende de variables aisladas del ecosistema,
sino más bien estrechamente relacionadas con el suelo, la vegetación y la topografía
(Mendoza, 2014). Por otro lado, los insectos son organismos fáciles y menos costosos de
medir, y en comparación con la observación de vertebrados, permiten capturar grandes
cantidades de individuos en cortos periodos con ayuda de métodos pasivos (Guzmán-
Mendoza et al., 2016). Asimismo, es posible relacionar sus patrones de abundancia y de
diversidad con otras variables estrechamente relacionadas con el suelo, la vegetación y la
topografía (Mendoza, 2014).
4.1.1 La edafofauna como bioindicador en la restauración
La literatura mundial sobre restauración, registra relativamente pocas experiencias en las
cuales se incluyan los insectos u otros artrópodos del suelo, a continuación, se describen
algunas de las experiencias tomadas de la literatura mundial a nivel mundial en los últimos
diez años.
18
En el norte de la Republica Checa, en áreas recuperadas que antiguamente fueron zonas de
aprovechamiento industrial, se encontró gran variedad de especies insectiles, se logró
registrar 585 especies, de las cuales seis (6) se consideraron en listas rojas, 17 en peligro
debido a que eran especialistas. Se observó que las especies registradas en la lista roja (6) y
en peligro (17) se hallaban en los sitios menos perturbados, no recuperados posiblemente al
verse amenazados por el hombre (Tropek et al., 2014).
En el sur de Inglaterra se han realizado investigaciones en sitios con restauración de
pastizales, encontrando que la riqueza de las mariposas era (8) ocho veces mayor en sitios
restaurados comparados con los pastos originales (Alison et al., 2017).
En el proyecto de restauración Costera de Punakaiki (Nueva Zelanda) se estableció para
mejorar la revegetación del bosque, luego de 6 años se establecieron algunos indicadores
del éxito de la restauración entre los cuales se encuentran escarabajos peloteros, polillas e
invertebrados de hojarasca todos indicativos de sitios forestales maduros (Smith et al.,
2015).
También en la región de Sudbury, Ontario, Canadá, se ha trabajado en sitios donde
anteriormente se dedicaban a la extracción de Cobre o Níquel, en los cuales la
contaminación se presenta en diferentes grados en el ecosistema, pero gracias a las obras de
restauración se restablecieron 16 grupos taxonómicos de hormigas con alta abundancia,
mostrando disminución con respecto a la cercanía a áreas más contaminadas, además de ver
la presencia de otros insectos como los escarabajos carábidos, colémbolos, moscas,
escarabajos nocturnos, avispas, moscas fóricas y lepidópteros (Babin-Fenske y Anand,
2011).
Los insectos desempeñan un papel importante en diversos procesos como la fragmentación
de la cobertura vegetal, ciclos de nutrientes y en la dieta de otros organismos consumidores
(Iannacone y Alvariño, 2016); además, se les considera un instrumento valioso en la
evaluación de estrategias de manejo de los ecosistemas forestales (Malenque et al., 2007) e
indicadores de cambios ambientales rápidos. A continuación, se documentan trabajos de
investigación relevantes en los cuales los insectos han sido empleados en la descripción de
cambios en el entorno, actuando como bioindicadores.
En los bosques ribereños de los ríos Pepital y Grande de la Amazonia (Alcântara-
Maranhão-Brasil) se determinó la abundancia y riqueza de Formicidae e Isoptera,
estableciendo que el cambio en el uso del suelo tiene un fuerte efecto sobre la riqueza de
Isóptera y la abundancia y riqueza de Formicidae, destacando el potencial de los dos grupos
como bioindicadores de la degradación de los bosques ribereños (Pinzón et al., 2015). Con
respecto a las hormigas de acuerdo a Chanastásing et al. (2011), las especies Solenopsis
geminata y Dorymyrmex sp., son indicadoras de monocultivos, mientras que según
19
Guzmán et al. (2014), la diversidad de hormigas no necesariamente se asocia con
ambientes conservados.
Por su parte los ortópteros se consideran excelentes bioindicadores para la evaluación del
cambio ecológico asociado a los diferentes manejos y usos del territorio (Andersen et al.,
2001). También Saha et al. (2011), indican que ortópteros de la familia Acrididae son
afectados por disturbios antropogénicos, asociando su diversidad con ambientes dominados
por malezas.
Lomov et al. (2006), mencionan la utilización de mariposas como indicadores ecológicos
para evaluar los impactos de la fragmentación, del fuego y de las plantas invasoras.
Por otro lado, los insectos que corresponden a la mesofauna son bioindicadores de la
estabilidad y la fertilidad del suelo (García y Bello, 2014), entre ellos se destacan los ácaros
y los colémbolos, por ser los principales representantes de este tipo de fauna, en el caso de
los colémbolos dependen de factores como materia orgánica y humedad, siendo
susceptibles a las perturbaciones del medio (Chocobar, 2010).
Según Bellinger y Janssens (2003), algunos insectos son capaces de fraccionar y triturar los
restos vegetales, y los alimentos que ingieren intervienen en la formación de humus. Estos
hexápodos constituyen indicadores del pH del suelo y la humedad; algunas especies son
sensibles a los productos químicos, mientras que otras aumentan su densidad. También
sirven para revelar las diferencias entre los bosques, así como en la evolución de los
ecosistemas con diferentes grados de perturbación (Palacios, 2000).
Los colémbolos de las familias Entomobryidae y Isotomidae se han asociado a suelos
manejados a partir de diferentes tipos de abonos orgánicos, atribuyendo su aumento a la
entrada de materia orgánica al suelo (Socarrás y Rodríguez, 2001). Por su parte Guillen et
al. (2006), reportaron una relación entre las poblaciones de algunas especies de colémbolos
y algunos indicadores como resistencia a la penetración, pH, materia orgánica y biomasa
microbiana, identificando cambios en la estructura de las comunidades de colémbolos por
efecto de los cambios en las variables por diferentes usos del suelo, de tal forma que los
colémbolos pueden ser utilizados como bioindicador de calidad del suelo y de manejo de
los ecosistemas.
A nivel del orden Coleoptera la subfamilia Scarabaeinae, es abundante en los ecosistemas
tropicales, por lo cual se le atribuye como uno de los grupos más convenientes para el
monitoreo de la biodiversidad (Favila, 2004). En Colombia los coleópteros de las familias
Dynastidae, Melolonthidae, Scarabaeidae y Passalidae han sido utilizados para evaluar
cambios en la estructura de la vegetación o en el microclima del bosque, teniendo en cuenta
20
la sensibilidad de estos ante procesos de perturbación, fragmentación, caza y por su
potencial papel como bioindicador (Nichols et al., 2009).
4.2. PROCESOS DE RESTAURACIÓN Y CONSERVACIÓN EN BOSQUES
ANDINOS COLOMBIANOS
Colombia es uno de los países megadiversos más importante a nivel mundial, pero este
enfrenta altas dificultades en el desarrollo de estrategias de conservación de ecosistemas
gracias a la ausencia o deficiencia de información de la ecología de las especies. Incluso a
nivel de los insectos se observan pocos grupos taxonómicos que hagan parte de un sistema
de información completo, si existiera se podrían brindar respuestas a las preguntas de
investigación en regiones ya censadas o de los grupos encontrados, pero sin este sistema no
es posible identificar los vacíos de conocimiento a simple vista (Noriega et al., 2015).
La familia Formicidae ha sido identificada como indicadora de procesos de restauración de
vegetación alto andina, incluso en áreas que hacían parte del paisaje rural ganadero. Se
reporta el monitoreo de la restauración ecológica, utilizando hormigas para evaluar el
cambio de uso del suelo de ganadería y plantaciones forestales, a conservación del bosque
andino (Mendoza et al., 2007). El monitoreo se basó en la abundancia de las especies
Linepithema pilliferum, Gnamptogenys bisulca, Pachycondyla aenescens, P. becculata y
Cyphomyrmex rimosus y su presencia y abundancia se relacionó con la calidad del hábitat y
fue el reflejo del estado de la restauración en aquel sitio (Mendoza et al., 2007).
Los macroinvertebrados han sido parte de la evaluación de procesos de restauración y de la
calidad del agua en muestreos sobre cuencas hidrográficas. En la Cuenca Alta del Río
Chicamocha, en áreas de amortiguación del Macizo de Iguaque y en la Cuenca
Hidrográfica del Río Hacha, donde junto a su presencia y abundancia se tuvo en cuenta la
dinámica del ecosistema, las estrechas relaciones presentes en las cadenas tróficas o la
influencia de las áreas urbanas al interior de la cuenca (Peláez y Remicio, 2014; Rocha et
al., 2015). Otros trabajos parecidos se presentan en la parte alta del río Tunjuelo y en la
Quebrada Los Cáquezas (Vereda Los Soches), en donde se establecieron relaciones entre
las coberturas de bosque presentes, los sustratos y/o la caracterización de los parámetros
fisicoquímicos del agua (Pérez, 2015; Gutiérrez y Morales, 2015).
Dentro de la entomofauna epiedafica se destacan los estafilínidos al ser una familia
indicadora de procesos de restauración efectivos o de conservación de suelos en áreas de
restauración de bosque andino, como en la Reserva Natural La Sonadora, (Méndez et al.,
(2012) el cual se compara la diversidad entre sitios restaurados y sitios no restaurados al
comparar la variación de estos individuos con respecto a la diversidad de flora presente
(estructura y composición), el estado sucesional y la altitud de las áreas de muestreo.
También la identificación de individuos de las familias de abejas silvestres hasta llegar a
especies ha sido determinante para evaluar el grado de restauración de áreas degradadas
21
comparadas con áreas descapotadas o en conservación, tal como se evidencia en el trabajo
de (Fernández y Zambrano, 2011)
En los bosques andinos colombianos se cuenta con algunas experiencias en los cuales se ha
utilizado un solo orden paras evaluar el estado de avance de la restauración, o en ordenes
muy diversos se utilizan algunas familias. como Melolonthidae por Muñoz (2009) o la
familia Passalidae por Moreno, (2014); en abejas silvestres como Castañeda, (2014); en la
diversidad de mariposas como Pérez y Salcedo (2017); incluso en hormigas por su relación
con el suelo.
Pocas contribuciones significativas se han realizado en la entomofauna de ambientes alto
andinos en Colombia, por ejemplo, Salamanca y Chamorro; Sturm y Rangel (1995);
Andrade y Amat (2000), por ello es importante estudiar la riqueza y diversidad de insectos
en altitudes superiores a los 2600 metros, demostrando la participación de estos en los
diferentes procesos ecológicos como la dispersión, la herbívora, la polinización entre otras.
En Bogotá, se ha observado alta diversificación de dípteros y coleópteros (Chaves, 2010).
Los insectos han sido poco estudiados en lugares periurbanos de la ciudad de Bogotá y se
pueden encontrar asociados a los suelos del bosque, la hojarasca y el follaje. Dentro de los
insectos más diminutos e imperceptibles están los colémbolos y los dipluros encontrados en
suelo y hojarasca, las larvas de los órdenes Diptera, Lepidoptera y Coleoptera; con
deposiciones animales se pueden ver cucarrones o moscas; con la hojarasca además de los
anteriores es posible encontrar tijeretas (Dermaptera), cucarachas (Blattaria), zancudos
(Diptera) y grillos (Orthoptera). En el follaje se pueden encontrar saltamontes (Orthoptera),
avispas (Hymenoptera), escarabajos (Coleoptera), membrácidos (Homoptera), insectos palo
(Phasmatidae) e incluso chinches (Hemiptera) (Chaves, 2010).
4.3 ÁREA DE ESTUDIO
El Parque Ecológico Cantarrana (Figura 1) fue creado como una de las medidas
estructurales de mitigación de riesgo por desbordamiento del Río Tunjuelo con el artículo
76 del Decreto 619 del 2000, finalmente fue entregado como uno de los sitios verdes del
Distrito Capital en el año 2007. Está situado en la localidad de Usme en Bogotá en las
coordenadas N 4°30’12,829”, W 74°07’24,245” (Datum Observatorio Astronómico de
Bogotá), entre 2625 y 3000 msnm, se encuentra ubicado cerca a la desembocadura de
Yomasa, al final de la parte media de la cuenca del río Tunjuelo, tiene una extensión de 100
has, está rodeado por los barrios Monte blanco, Villa Anita, Brazuelos y Serranías.
22
Figura 1. Delimitación del área del Parque Ecológico Cantarrana ubicado en la localidad de Usme Bogotá. Fuente: Modificado de Acueducto de Bogotá, IGAC, (2017).
Tiene como fuentes hídricas el río Tunjuelo y la quebrada Chuniza; dicha zona se consideró
hidráulicamente potencial para tener la capacidad para controlar inundaciones del río
Tunjuelo, por ello se llevó a cabo una gran obra civil descrita como “Presa Seca” construida
por la Empresa de Acueducto y Alcantarillado de Bogotá EAAB-ESP (Gutiérrez et al.,
2013; Gutiérrez et al., 2016; Decreto 190 de 2004; JBJCM, 2010). Esta presa solo se llena
en caso de crecidas, pero se desocupa gracias a su diseño: por la existencia de un orificio en
el fondo y la existencia de un vertedero aledaño (Acueducto de Bogotá, 2013).
Geomorfológicamente, esta área hace parte de la formación Tunjuelo y un valle tectónico
limitado por la falla del río Tunjuelo (Occidente), la falla de Bogotá y la falla de Piedra La
Bala (Oriente); se caracteriza por sus grandes cantos rodados, gravilla, arena, gravas, limo y
arcilla, puesto que antes era fuente de explotación de canteras y al principio hacían parte de
23
las deposiciones dejadas por el rio; en esta área se pueden observar precipitaciones de 900 a
1000mm, que van en aumento según el gradiente en sentido Este-Oeste, gracias a esto se
describe como una zona moderadamente húmeda (llegando hasta el 73 % de humedad)
(IDEAM, 2002).
La temperatura media puede oscilar entre los 12 a los 15 °C; con respecto a la variación
anual de lluvias se observan altas precipitaciones en los meses de abril, mayo y junio,
mientras que para el final del año en julio y agosto se observan lluvias esporádicas, pero de
octubre a diciembre se manifiestan nuevamente temporadas lluviosas (IEU, 2011). Por la
alta diferencia altitudinal y la interacción de diferentes factores ambientales en la localidad
de Usme se observa el desarrollo de diferentes coberturas de vegetación y suelos,
presentando características de bosque alto andino, subpáramo y páramo (IEU, 2011;
Cárdenas y Salamanca, 2012).
4.4.1 Clima
La información climatológica se obtuvo a partir de los datos generados por el IDEAM de la
estación San José la cual se encuentra en las instalaciones del Parque Ecológico Cantarrana
sin embargo actualmente se encuentra inactiva, los datos se muestran en la Figura 2.
Figura 2. Precipitación promedio mensual Estación meteorológica San José (mm), (2011).
En el Parque Ecológico Cantarrana se establece en un régimen bimodal marcado (Figura 3),
la primera temporada de lluvia se presenta en la primera parte del año en los meses de
marzo, abril, mayo y junio este a su vez presenta los valores medios más altos con 105 mm
y 88 mm de precipitación, la segunda temporada se establece en los meses de septiembre,
octubre y noviembre, tendiendo a presentarse menores precipitaciones.
24
Figura 3. Valores Medios Mensuales de Temperatura (OC). Estación meteorológica San José, (2011).
La temperatura del parque no varía abruptamente a lo largo del año, los valores máximos
que alcanzan están entre 14 y 14,5 °C, los mínimos están entre 12,8 y 13,3 °C.
4.4.2 Antecedentes Históricos Parque Ecológico Cantarrana
Inicialmente el uso del suelo en la localidad era variado debido a la presión antrópica, por
lo cual era posible observar distintas coberturas y usos como: bosque medianamente
intervenido, vegetación natural intervenida, corredores de árboles plantados como cercas
vivas, barreras cortavientos, pastos naturales, rastrojo bajo o vegetación poco densa,
algunos cultivos, ganado, pastos enmalezados hasta construcciones residenciales,
industriales, carreteras y caminos (INGETEC, 2005).
La intervención de la vegetación natural de este parque en sus inicios era el reflejo del
deterioro y la destrucción de un importante ecosistema, esta se conformaba por enclaves de
matorral subxerofítico andino y bosque alto andino, presentando la presencia de cactus y
plantas suculentas, hasta al interior del bosque bajo de dosel cerrado se encontraban
especies pertenecientes a la familia Ericaceae y Melastomataceae (INGETEC, 2005).
En el año 2000 cuando se estipulo la construcción de la Presa Seca se consideró el
Protocolo Distrital de Restauración Ecológica para establecer la combinación de
herramientas físicas y químicas necesarias a llevarse a cabo para la restauración de este
ecosistema, se seleccionaron algunas especies nativas y exóticas naturalizadas capaces de
favorecer y acelerar el proceso de sucesión, que con su introducción en poblaciones
vegetales pudieran garantizar la cobertura vegetal y la recuperación del sitio a mediano
plazo (INGETEC, 2005).
Para la recuperación del área debido a la obra se recomendaron diferentes fórmulas
florísticas: barreras de contención de escorrentía (Orthrosanthus chimboracensis, Lycium
25
spp., Dodonaea viscosa, Cortaderia nitida), especies para el control de erosión (Bejaria
resinosa, Muehlembeckia tamnifolia, Cavendishia bracteata, Macleania rupestris, Rubus
bogotensis, Morella parvifolia), para la expansión de la vegetación (Muehlembeckia
thamnifolia y Rubus spp.), para atracción de avifauna (Gaultheria spp., Berberis spp.,
Pernettya spp., Hesperomeles spp., Montanoa piramidata), para la formación de cobertura
en el suelo o en el estrato arbustivo (Solanum spp., Macleania rupestris, Baccharis spp.,
Morella parvifolia) (INGETEC, 2005).
Una vez la empresa de Acueducto finalmente construye esta presa y la entrega a la
comunidad en el año 2007, se presenta una obra ingenieril con la capacidad de almacenar
2’400.000 m3 de agua, ayudando en la evacuación regulada del agua del conducto y evitar
posibles inundaciones en el futuro; además de ser todo un escenario de recreación para las
comunidades por sus ciclorruta de 3,5 km, caminos de piedra, senderos ecológicos, zonas
verdes y pista de patinaje (Metrovivienda y Secretaría Distrital de Ambiente, 2011).
En el año 2015, el Acueducto realizó un plan de manejo ambiental para realizar obras de
mantenimiento en el canal de aducción de la presa, para mover los sedimentos acumulados
en los bordes del Río Tunjuelo, llevar a cabo la adecuación de taludes y la realización de
jarillón de mejoramiento de cauce del canal del río Chisacá. En colaboración de miembros
del Jardín Botánico de Bogotá, como medidas de prevención el Acueducto llevo a cabo el
rescate de flora y fauna en las zonas de mantenimiento, estas se trasladaron al interior del
parque al ser parte de este ecosistema para su establecimiento definitivo (Gutiérrez, 2015).
Actualmente, el Jardín Botánico de Bogotá continúa trabajando en el proceso de
restauración ecológica del Parque Ecológico Cantarrana, con la plantación de 1200
individuos en el año 2017, que hacen parte de las especies nativas de bosques andinos,
capaces de contribuir en los procesos ecológicos existentes para la recuperación del
ecosistema.
4.4.3 Problemática del Parque
En los alrededores del Parque Ecológico Cantarrana confluyen tres formas de uso del suelo,
tales como, la reserva forestal, el rural y el urbano, el uso urbano se encuentra alojado en
gran mayoría de los límites del parque gracias a la existencia de urbanizaciones de origen
ilegal, a las actividades industriales de curtiembres, frigoríficos, químicos, plásticos, entre
otros derivados; y este último tipo de uso es el que mayor impacto genera en los
ecosistemas subsecuentes por la alta contaminación con vertimientos directos del
alcantarillado de la ciudad, lixiviados provenientes del relleno de Doña Juana, junto a los
aguas residuales productos de canteras (Acueducto de Bogota, 2013; Sanabria, 2013).
26
Entre los tensionantes presentes en el área de estudio se hallan la presencia de especies
invasoras como el retamo espinoso (Ulex europaeus) y liso(Genista monspessulana), mora
(Rubus floribundus), bejuco (Muehlembeckia tamnifolia), acacia (Acacia spp.) y eucalipto
(Eucalyptus spp.); la compactación de suelo gracias al manejo inadecuado del pastoreo, la
erosión de los suelos, las altas tasas de deforestación, la presencia de residuos sólidos de
escombros, vidrios, basuras y residuos (Camacho y Galeano, 2015)
Cambios microclimáticos al interior del Parque
Estos se hallan relacionados con los cambios de precipitación, la evapotranspiración, los
vientos de norte a sur, las temperaturas cerca al lecho del rio o al interior del bosque,
haciendo que se presente un clima seco a semi húmedo. Sumado a los cambios de la
cobertura vegetal nativa por las diferentes actividades antrópicas presentadas en la zona
(INGETEC, 2005; Barrera, 2010).
4.4.4 Diversidad en Parque Ecológico Cantarrana
Pocos trabajos documentan la diversidad florística y faunística en el área de estudio. Se
cuenta con reportes breves por parte del Acueducto antes de la realización de la obra y de
las operaciones de restauración después de dicha obra, más no un estudio concienzudo de la
misma, (JBJCM, 2010).
La diversidad faunística destaca la presencia de artrópodos, junto a los reptiles (lagartos) y
anfibios, relacionados por el establecimiento de redes tróficas al ser parte de la
depredación; incluso posiblemente relacionados con aves presentes, como las Gruiformes,
Ciconiformes, Anseriformes, Falconiformes, entre otras. Se reporta la presencia de algunas
especies a nivel faunístico: 13 en reptiles, 38 en anfibios, 268 en aves, 7 en mamíferos, pero
ningún reporte de la entomofauna del sitio, sin embargo, no hay que olvidar su importancia,
sobre todo al ser parte de la dieta del 70% de las aves encontradas (Sanabria, 2013).
27
5. OBJETIVOS
5.1 OBJETIVO GENERAL
Caracterizar la entomofauna presente en tres áreas del Parque Ecológico Cantarrana con
diferente estado de restablecimiento de cobertura vegetal.
5.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS
• Estimar posibles relaciones entre la diversidad insectil epiedáfica y la diversidad de la
vegetación y variables ambientales del sitio
• Caracterizar los hábitos alimenticios de la entomofauna encontrada con los registros en
la literatura
• Comparar la composición de insectos del Parque Ecológico Cantarrana con la
composición conocida de otros ecosistemas cercanos más conservados
6. METODOLOGÍA
La presente investigación fue de carácter descriptivo, explicativo y correlacional, y se
fundamentó en la estimación y relación de la riqueza y la diversidad de la entomofauna
epiedáfica con la vegetación presente en diferentes áreas del Parque Ecológico Cantarrana,
ubicado en la Localidad de Usme en Bogotá.
La obtención de las muestras de la entomofauna se realizó utilizando trampas pasivas y a
través de la recolección manual directa de especímenes en campo organizadas en transectos
de muestreo, mientras que la de la vegetación se llevó a cabo en transectos
6.1 DELIMITACIÓN DE ÁREA DE ESTUDIO
De acuerdo con la delimitación del Parque Ecológico Cantarrana establecida por la
Empresa de Acueducto y Alcantarillado de Bogotá, se elaboró el mapa de la zona de
muestreo, identificando los transectos por medio de las coordenadas de cada trampa, así
como los senderos, ciclo rutas, y fuentes hídricas.
6.2 FASE PRELIMINAR
Se realizó una revisión documental del área de estudio, junto a otros artículos o estudios
relacionados con el medio físico y biológico a trabajar, consecuente con el contexto
histórico de la zona; asimismo, se llevó a cabo la revisión de cartografía base y temática
para tener un reconocimiento previo del área sabiendo las zonas de acceso, áreas urbanas,
zonas de restauración, ciclorruta o vías pavimentadas, entre otras, estructuras.
28
Caracterización de la zona de muestreo
Las tres zonas de estudios se establecieron dentro del área piloto de investigación ubicada
en el Parque Ecológico Cantarrana, estas labores se han venido desarrollando por parte del
Jardín Botánico, cada zona fue seleccionada según la cobertura vegetal y las condiciones
del terreno, presentando entre la zona alta y media microclimas diferentes a los que se
desarrollan en la zona baja.
Zona de muestreo alta
Esta zona se caracteriza por presentar cobertura tanto arbórea como arbustiva, sin embargo,
se establece clara dominancia de la especie Acacia decurrens y Acacia melanoxylon, debido
a la presencia de estas dos especies se presenta un microclima dentro de esta zona, por lo
cual las incidencias de los rayos de sol son menores y a su vez los vientos llegan con menos
velocidad (Figura 4).
Figura 4. Cobertura vegetal característica de zona alta (A. Parcelas de vegetación, B. cobertura característica) –
Parque Ecológico Cantarrana.
Zona de muestreo media
Es caracterizada por presentar individuos tanto arbóreos como arbustivos esta presenta
condiciones similares a la zona alta, sin embargo, el terreno presenta porcentajes de
pendiente menores (15%), las especies más dominantes corresponden Acacia decurrens y
Acacia melanoxylon (Figura 5).
Figura 5. Cobertura vegetal característica del Parque Ecológico Cantarrana. A. zona media (A. cobertura
característica Acacia m, B. arbustos).
A
A B
B
29
Zona de muestreo baja
Esta zona se caracteriza por presentar alta dominancia de la cobertura arbustiva, siendo las
especies más representativas Hesperomeles goudotiana y Dodonaea viscosa, además la
incidencia de los vientos es más fuerte a su vez al no haber cobertura arbórea los rayos
solares caen directamente (Figura 6).
Figura 6. Cobertura vegetal característica de zona baja (A. y B. cobertura arbustiva característica) – Parque
Ecológico Cantarrana.
6.3 FASE DE CAMPO
6.3.1 Visita Previa
Se realizó una visita previa al área para reconocer las zonas de mayor interés, hacer un
reconocimiento preliminar del área, teniendo presente la geomorfología y topografía del
terreno, además de prever los tiempos de desplazamiento, el tiempo efectivo de
recolección, la disponibilidad de personal capacitado para actividades propiamente dichas,
accesibilidad al sitio y régimen climático local gracias a las fuentes más cercanas
(Villarreal et al., 2006).
6.3.2 Muestreo
Con el objeto de reconocer la epifauna presente en la zona y conocer la efectividad de los
métodos de recolección de insectos se realizó un premuestreo, en este se tuvo presente la
evaluación de coberturas realizada con la información cartográfica obtenida y la visita
previa, junto a la estratificación de zonas de muestreo por su alta diferenciación, de acuerdo
con la ubicación geográfica de cada sitio de muestreo en cuanto a sus coordenadas y su
altitud.
Se realizaron tres transectos de 100 m ubicados tratando de seguir las curvas de nivel
presentadas en el sitio, uno por cada estación de muestreo, estas se encontraban separados
entre sí al menos por 100m de distancia; en cada transecto se ubicaron 10 trampas de caída
separadas entre sí por 10m, instaladas como se indica en (Figura 7 y 8).
A B
30
Figura 7. Diseño de la trampa de caída utilizada en este estudio, constituida por un vaso de 12 onzas, con 6
onzas de solución preservante y cubierto con ayuda de un plato de icopor. Fuente: Autores
Figura 8. Localización de los tres primeros transectos utilizados en el premuestreo. Fuente: Autores
6.3.3 Muestreo de vegetación
En este trabajo se empleó el método del transecto para muestreo de la vegetación. Es un
método empleado con frecuencia por la rapidez con la cual se mide y por la heterogeneidad
con que se muestrea la vegetación, el tamaño de los transectos tiende a variar y este está
ligado a las características de las plantas que se requieren medir (BOLFOR, 2000).
Debido a las condiciones del área. Se desarrollaron nueve transectos de 4 x 100 m alrededor
de cada grupo de 10 trampas pitfall con el fin de estimar la diversidad vegetal asociada. Los
parámetros a medir fueron DAP, altura total, diámetro de copa y el hábito o forma de
crecimiento para lo cual se tiene en cuenta los estratos establecidos por Rangel y Lozano
(1986), rasante: 25 m, arbustivo: 1.5 - 5 m, arboles bajos: 5 - 12 m, arbóreo inferior 12 - 25
m y arbóreo superior >25 m.
31
6.3.4 Variables dasométricas de la vegetación
Altura
La altura es uno de los principales parámetros que se miden en la vegetación, esta se midió
empleando flexómetro desde la base hasta la terminación de la rama más apical, en el caso
de arbustos de menor altura, en el caso del arboles de mayor altura se empleó la regla
telescópica siendo uno de los instrumentos exactos (BOLFOR, 2000).
Diámetro
El diámetro del tronco de un árbol es uno de los parámetros de mayor uso para estudios de
ecología vegetal, el diámetro consiste en determinar la longitud de la recta que pasa por el
centro del círculo y termina en los puntos en que toca toda la circunferencia (Roman de la
Vega et al., 1994). A su vez, para medir el área basal y el volumen del tronco de los
árboles. También, mediante el diámetro es posible medir el crecimiento de las plantas,
haciendo medidas repetidas cada determinado tiempo (BOLFOR, 2000).
Diámetro de copa
La medición de las copas se realizó empleando un flexómetro, se toman los extremos de la
copa mayor y los ortogonales, dichos valores se promedian de tal manera que se pueda
calcular el diámetro de copa final (BOLFOR, 2000).
6.3.5 Recolección de Muestras Insectiles
En cada una de las zonas (alta, media y baja) se delimitaron tres transectos de 100 m de
longitud, señalando 10 subestaciones de muestreo separadas entre sí por 10 m, adaptado de
metodología presentada por el Instituto Alexander von Humboldt (2006) y dejando en cada
una de estas una trampa pitfall por subestación.
Las trampas pitfall se instalaron adaptando lo descrito por Chaves, (2010), Villarreal et al.
(2006) y Leather, (2005), estas consistieron en vasos de plástico de 12 onzas de capacidad,
con 8 cm de diámetro y 8 cm de altura, con etanol al 40% como preservante, y además se
utilizaron atrayentes de piña y atún suspendido con ayuda de un alambre dulce. Todas las
trampas fueron cubiertas con un techo compuesto de un plato de icopor y palillos de pincho
incorporados con cierta elevación para evitar la caída de suelo, agua lluvia, hojarasca y
evitar la acción de otros animales vertebrados sobre las mismas (Figura 9). Estas se dejaron
activas por un espacio de 48 horas como mínimo, estas se realizaron con el fin de encontrar
insectos caminadores de la superficie del suelo (Villarreal et al., 2006).
Para el muestreo general se activaron 90 trampas pitfall. En cada zona (alta, media, baja) se
implementaron 30 trampas, en la tercera semana de julio de 2017, dentro del inicio marcado
32
de lluvia en la zona, estas se dejaron por un tiempo mínimo de 48 horas de actividad, tal
como se describió anteriormente (Sandoval y Fagua, 2006).
Figura 9. Trampas pitfall en campo– Parque Ecológico Cantarrana (A. Techo, B. vaso plástico, C. trampa en
campo)
En la Figura 10 se observa el área piloto de investigación Parque Ecológico Cantarrana
(derecha) donde se han desarrollado parcelas de restauración y dentro de las cuales se
desarrollaron los transectos (Izquierda). (Anexo 1 y 2. Ubicación de unidades de muestreo).
A B
C
33
Figura 10. Localización de los nueve transectos utilizados en el muestreo. Fuente: Autores
6.3.6 Colecta Manual
Aun cuando el énfasis del estudio fue en la entomofauna epiedafica, se exploraron otros
métodos para documentar la entomofauna presente en estratos aéreos y en el follaje el área
de estudio. En cada transecto o estación de muestreo se delimitaron dos cuadrantes de 10 x
50 m, separados por una distancia igual o superior a 25 m sobre el gradiente, en cada uno
de estos se practicó la captura manual diurna de los insectos presentes, se realizaron
recorridos en zigzag revisando bajo el follaje, hojarasca, depósitos de detritus, corteza de
árboles y arbustos, se removió la biomasa en el suelo, se inspeccionó entre epifitas,
líquenes, briofitos o troncos caídos (Sandoval y Fagua, 2006).
Esta forma de colección permitió la captura de individuos pertenecientes a especies raras,
las cuales tienen una baja probabilidad de captura a partir de otros métodos, además
permite relacionarlas con los hábitos naturales a través de la recolección de información de
los sitios de muestreo (Villarreal, et al., 2006).
6.3.7 Extracción de insectos de la Hojarasca
Se realizó extracción de insectos con ayuda de embudos tipo Berlesse.
Se tomaron 2 muestras de hojarasca por cada transecto, es decir una por cada uno de 18
cuadrantes y se tomaron distanciadas, de las trampas pitfall evitando la perturbación de las
comunidades a censar: Para tomar la muestra se realizó un cuadrado de 20 cm x 10 cm x 20
cm para obtener la capa más superficial de suelo, esta se llevó al recolector o embudo
Berlesse (Figura 11), durante 2 semanas. La colecta de hojarasca se desarrolló la última
semana de agosto de 2017 y permanecieron en os embudos Berlesse durante las dos
primeras semanas de septiembre de 2017.
34
Los insectos fueron recuperados de la solución preservante mediante filtrado en una gasa
no tejida y preservadas en bolsas herméticas con alcohol al 70 %, y con su debida etiqueta
impresa, se tuvieron en cuenta las observaciones descritas por Villarreal et al.,(2006).
Figura 11 A. B. C. D. Embudos Berlesse con muestras de hojarasca y capa orgánica de suelo
7.4 FASE DE LABORATORIO
7.4.1 Identificación taxonómica vegetal
Los individuos inventariados se registraron con el nombre común, para su posterior
identificación, cada uno de los nombres científicos de las especies vegetales fueron
actualizados homologando los nombres científicos y las abreviaturas de los autores con la
ayuda de bases de datos académicas: Trópicos, The Internacional Plant Names Index y The
Plant List (Aguilar-Garavito, 2015).
7.4.2 Identificación taxonómica insectil
Las muestras de campo fueron limpiadas, separadas y conservadas en alcohol al 70 % hasta
realizar la identificación en el laboratorio de Sanidad Forestal de la Universidad Distrital
Francisco José de Caldas. En el laboratorio se realizó la determinación taxonómica al nivel
de familia con ayuda de un estéreo microscopio y siguiendo claves taxonómicas apropiadas
como: la clave taxonómica de Borror, Triplehorn, y Johnson (2005) de Booth et al, (1990),
y de Fernandez y Sharkey, (2006). Mediante comparaciòn morfologica dentro de cada
familia, se separaron los especimenes al nivel de morfoespecie y se mantienen preservadas
en soluciòn preservante (Figura 12).
A B
D C
35
Figura 12. Muestras separadas al nivel de orden previo al proceso de determinación taxonómica y
preservación.
7.5 FASE DE ANÁLISIS
7.5.1 Análisis de composición vegetal
Con las especies encontradas por transecto, se determinó la abundancia, frecuencia y
dominancia para la determinación del índice de valor de importancia de dichas familias tal
como describe Acosta et al., (2006), resaltando los índices de mayor valor para determinar
las coberturas dominantes que pueden influenciar la alta o la baja diversidad o riqueza
insectil en el sitio de estudio. Para ello no se debe olvidar que para la dominancia se tomó
en cuenta el cubrimiento de la copa sobre la subestación de trabajo.
7.5.2 Validación diseño del muestreo de insectos
Con ayuda de una curva de acumulación de especies o familias, fue posible observar la
incorporación de estas dentro del inventario y relacionarlo con el esfuerzo de muestreo. Es
necesario tener presente que la distribución de las especies insectiles no es estable a lo largo
del espacio mostrando diferentes grados de distribución espacial (Avila y Jaramillo, 2009).
Se recomienda el modelo de Clench para áreas extensas y sobre todo para protocolos de
recolección en los cuales la mayor experiencia obtenida en campo aumenta la probabilidad
de añadir nuevas especies al inventario, es el más utilizado para demostrar un alto ajuste a
la realidad en situaciones como esta y para alta variedad de taxones (Avila y Jaramillo,
2009).
Como lo describen Avila y Jaramillo (2009):
Donde,
a, es la tasa de incremento de familias o especies al comienzo del inventario.
b, es la pendiente o incremento de las familias o especies a lo largo del tiempo
n, es el número de muestras o unidades de esfuerzo de muestreo.
36
7.5.3 Diversidad Alfa y Beta
La diversidad alfa se estimó mediante la valoración de la estructura a través de los índices
de Simpson y Shannon-Wiener, para medir la dominancia y la equidad, respectivamente
(Avila y Jaramillo, 2009; Sandoval y Fagua, 2006).
Para la estimar diversidad la diversidad Beta se desarrolló el índice Bray Curtis e Índice de
Jaccard; los cuales se estudiaron por medio de un análisis de grupos o clúster, de esta
manera es posible clasificar todos los grupos que fueron similares según la distancia u otras
medidas, con fin de comparar las poblaciones de distintos ecosistemas o de un mismo
ecosistema en diferente ubicación espacial como lo describen (Avila y Jaramillo, 2009;
Sandoval y Fagua, 2006).
La cuantificación fue posible a través de los métodos descritos por Villarreal et al. (2006)
gracias al uso del programa R y Past.
7.5.4 Índices Empleados para el Cálculo de Diversidad Alfa
Índice de Simpson
Donde:
pi = abundancia proporcional de la especie i
Manifiesta la probabilidad de que dos individuos tomados al azar de una muestra sean de la
misma especie. Está fuertemente influido por la importancia de las especies más
dominantes (Magurran, 1988; Peet, 1974).
Índice de Shannon-Wiener
Expresa la uniformidad de los valores de importancia a través de todas las especies de la
muestra. Mide el grado promedio de incertidumbre en predecir a que especie pertenecerá un
individuo escogido al azar de una colección (Magurran, 1988; Peet, 1974; Baev. Penev,
1995).
7.5.5 Diversidad Alfa Verdadera
Diversidad equivalente del orden 0 (q=0)
Para la estimación de la riqueza de especies se emplea el estimador no paramétrico ACE
(Estimador de Cobertura basado en la Abundancia) propuesto por Chao y Lee (1992); Chao
y Yang (1993). Donde las especies observadas se separan como grupos raros y abundantes,
utilizando el grupo raro para estimar el número de especies faltantes (Chao y Chun, 2015).
El anterior estimador fue calculado utilizando el programa SPADE (Moreno et al., 2011).
37
Diversidad equivalente del orden 1(q1)
Equivale al cálculo del exponencial del índice Shannon. Para su cuantificación se empleó
el estimador (Bias–corrected Shannon diversity estimator), propuesto por Chao y Shen,
(2003) el cual es propuesto para casos donde no se tiene un conocimiento completo de la
comunidad siendo calculado mediante el programa SPADE (Moreno et al., 2011).
Diversidad equivalente del orden 2 (q2)
Equivale al cálculo del inverso de Simpson, se emplea el estimador MVUE (Minimum
variance unbiased estimator) de Magurran (1988) el cual otorga mayor importancia a las
especies dominantes y es calculado mediante el programa SPADE (Moreno et al., 2011).
7.5.6 Índices Empleados para Medir la Diversidad Beta
Coeficiente de similitud de Jaccard
Donde
a = número de especies presentes en el sitio A
b = número de especies presentes en el sitio B
c = número de especies presentes en ambos sitios A y B
El intervalo de valores para este índice va de 0 cuando no hay especies compartidas entre
ambos sitios, hasta 1 cuando los dos sitios tienen la misma composición de especies
(Moreno, 2001).
Índice de Bray-Curtis
Tiene en cuenta la abundancia de las especies para comparar la composición de la
macrofauna edáfica de acuerdo a los tratamientos implementados, además es empleado para
observar la incidencia de la estandarización y las transformaciones en el análisis de
clasificación (Ramirez, 1999).
7.7.7 Análisis de Variación Espacial
Se realizó un análisis de abundancia, con conteos absolutos de los individuos obtenidos en
cada familia en cada método de recolección utilizado (Troya et al., 2016).
Se efectuó un análisis de componentes principales y un análisis de redundancia o RDA para
poder examinar como variables ambientales y espaciales podían explicar la variación de la
composición entre los sitios, para esto se utilizaron los datos de abundancia de insectos por
familia para cada uno de los transectos. Asimismo, se tuvieron en cuenta las variables de
riqueza florística, con el fin de determinar si la variación de composición insectil es
38
altamente influenciada por la variación estructural y composicional de la flora (Axmacher
et al., 2008; Heino et al., 2015).
Para el análisis de redundancia los datos de insectos se sometieron a la transformación
Helllinger, usualmente trabajada para datos de ausencia y abundancia como estos, logrando
que los datos puedan trabajarse por métodos de ordenación lineal, además fueron excluidos
todas aquellas familias con una presencia individuos inferior a cinco, luego es posible
visualizar el modelo RDA global haciendo uso de todos los predictores espaciales y
ambientales, con lo cual se determina la significancia del mismo. En el caso de que fuera
significativo se realizaría una selección directa de variables de tal forma que solo se tenga
en cuenta las más relevantes, en caso contrario el análisis debe finalizar asumiendo que la
influencia de factores ambientales y espaciales corresponden a cero (Heino et al., 2015)
La abundancia, riqueza y diversidad de cada zona se tuvo presente de forma independiente
junto a variables como la altitud y abióticas relacionadas con el suelo las cuales fueron
proporcionadas por el Jardín Botánico como el pH, el contenido de Humus y la presencia
de cloruros, todas estas variables organizadas en el modelo de RDA global serán de utilidad
al aplicar un análisis de varianza o ANOVA multivariado, para revisar cuál de ellas o
cuales de estas genera mayor significancia dentro de la abundancia faunística insectil
(Sandoval y Fagua, 2006), todos estos análisis pudieron realizarse con ayuda del programa
R.
8. RESULTADOS
8.1 CARACTERIZACIÓN DE LA COBERTURA VEGETAL
En los 9 transectos muestreados se registraron 13 familias, 25 especies en un total de 326
individuos muestreados(Tabla1). Las especies más abundantes fueron Acacia decurrens
con un valor de abundancia total de 93, Dodonaea viscosa con 61 y Baccharis bogotensis
con una abundancia de 45.
Tabla 1. Abundancia de cobertura vegetal. Caracterización de especies por zona de estudio (alta, media, baja)
ABUNDANCIA ZONA ALTA MEDIA BAJA TOTAL
INDIVIDUOS
FAMILIA ESPECIES A
I
A
II
A
III
M
I
M
II
M
III
B
I
B
II
B
III
LEGUMINOSAE
Acacia decurrens 6 7 5 8 4 7 0 0 1 38
Caesalpinia spinosa 0 0 0 4 4 4 0 2 0 14
Acacia melanoxylon 2 1 0 0 0 1 0 0 0 4
Dalea coerulea 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1
Inga spp. 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1
39
ABUNDANCIA ZONA ALTA MEDIA BAJA TOTAL
INDIVIDUOS
FAMILIA ESPECIES A
I
A
II
A
III
M
I
M
II
M
III
B
I
B
II
B
III
ROSACEAE
Hesperomeles goudotiana 1 0 0 0 3 2 0 5 1 12
Pyracrantha coccinea 2 0 0 0 1 0 0 0 1 4
Vaccinium meridionale 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1
MYRTACEAE
Myrcianthes leucoxyla 0 0 0 3 2 3 0 2 1 11
Myrsine guianensis 0 0 0 3 2 3 5 2 1 16
Eucalyptus spp. 0 0 0 0 0 0 5 0 0 5
COMPOSITAE
Baccharis bogotensis 3 2 6 1 5 4 0 5 4 30
Baccharis latifolia 0 1 1 2 1 0 0 0 0 5
SOLANACEAE Lycianthes lycioides 1 3 1 1 3 0 0 0 0 9
Cestrum mutissi 0 0 0 0 0 5 0 0 0 5
VERBENACEAE Duranta mutisiii 1 0 0 4 0 1 0 2 1 9
Cytharexylum subflavescens 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1
SAPINDACEAE Dodonaea viscosa 5 2 5 1 4 0 0 6 3 26
MORACEAE Ficus americanus 0 0 0 0 0 0 2 0 0 2
CUPRESSACEAE Cupressus lusitánica 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1
MYRICACEAE Morella parvifolia 0 1 0 1 0 0 0 0 0 2
HAMAMELIDACEAE Liquidambar styraciflua 0 0 0 0 0 0 2 0 0 2
FAGACEAE Quercus humboldtii 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2
BETULACEAE Alnus acuminata 0 0 0 0 0 0 0 0 2 2
TOTAL ZONA 2
2
1
7 18
2
8 29 30
1
6 26 17 203
Caracterización de la cobertura vegetal zona alta
Esta zona se caracteriza por presentar vegetación tanto arbustiva como arbórea siendo esta
ultima la más dominante representada por las especies Acacia decurrens con un 80,4 % y
Acacia melanoxylon con 6,9 %.
De acuerdo con el IVI las especies que presentaron valores altos corresponden a Acacia
decurrens, (120,8), Dodonaea viscosa (52,9), y Baccharis bogotensis (36,3), (Figura 13).
40
Figura 13. IVI índice de valor de importancia para las especies vegetales de la zona alta de muestreo
A continuación, se presenta el perfil de vegetación característico para Zona Alta (Figura
14).
Figura 14 Perfil de vegetación en unos de los transectos desarrollados en la zona alta.
Caracterización de la cobertura vegetal zona media
Se caracteriza por presentar vegetación tanto arbustiva como arbórea, siendo las especies
más dominante Acacia decurrens con un 91,1 % y Acacia melanoxylon con 2,1 %.
De acuerdo con el IVI las especies de mayor importancia son: Acacia decurrens con
(147,9), Caesalpinia spinosa (25,1), y Baccharis bogotensis (22,6), (Figura 15).
41
Figura 15. IVI índice de valor de importancia para las especies vegetales de la zona media de muestreo
A continuación, se presenta el perfil de vegetación característico para Zona Media (Figura
16).
Figura 16 perfil de vegetación en unos de los transectos desarrollados en la zona media.
Caracterización de cobertura vegetal zona baja
En esta Zona se establece alta dominancia de la cobertura arbustiva, la especies cuya
dominancia fue mayor corresponden a Hesperomeles goudotiana con 22,5 % y Dodonaea
viscosa con 15,5 %.
Respecto al IVI las especies que representa mayor importancia son Hesperomeles
goudotiana, Dodonaea viscosa y Baccharis bogotensis con 48,5 48,2 y 29,9
respectivamente, (Figura 17).
42
Figura 17. IVI índice de valor de importancia para las especies vegetales de la zona Baja de muestreo
A continuación, se presenta el perfil de vegetación característico para Zona Bjaa (Figura
18).
Figura 18 Perfil de vegetación en unos de los transectos desarrollados en la zona Baja.
8.2 ENTOMOFAUNA EPIEDÁFICA
8.2.1 Composición General de la Entomofauna en el Parque
Se recolectaron 1775 individuos pertenecientes a 8 ordenes, 42 familias y 52
morfoespecies, los individuos recolectados representan el 80,84 % de la riqueza total
epiedáfica de la época húmeda para el Parque Ecológico Cantarrana.
Los órdenes más representativos fueron Coleoptera, seguido por Diptera, Hymenoptera y
Hemiptera, en una proporción menor al 10% se reportó la presencia de individuos de
ordenes como Dermaptera, Orthoptera, Blattodea y Archaeognatha, con individuos
distribuidos dentro de una familia o dos familias diferentes, como se observa en la Figura
19.
43
Figura 19. Abundancia relativa de ordenes encontrados en el Parque Ecológico Cantarrana durante la época
húmeda.
La tabla 2, discrimina la distribución de los insectos encontrados en cada una de las
familias y ordenes de clasificación organizados en orden descendente según la abundancia.
Tabla 2. Abundancia absoluta de insectos encontrados en las zonas (Alta, Media, Baja) en cada uno de los
transectos(I-III).
ABUNDANCIA ZONA
TOTAL
POR
FAMILIA
ALTA MEDIA BAJA
Orden Familia A I A II A III M I M II M III B I B II B III
COLEOPTERA Staphylinidae 10 40 4 13 4 1 5 3 5 85
Curculionidae 2 0 7 8 11 25 14 1 2 70
Archeocrypticidae 0 0 0 2 0 31 1 1 0 35
Cryptophagidae 0 0 0 0 0 22 3 0 0 25
Scarabaeidae 2 0 0 0 10 0 0 0 0 12
Tenebrionidae 1 3 0 0 0 6 0 0 1 11
Coccinellidae 2 6 0 1 0 0 1 0 0 10
Carabidae 3 0 1 1 1 4 0 0 0 10
Scirtidae 1 3 2 0 2 0 2 0 0 10
Elateridae 3 0 0 1 0 2 0 2 0 8
Dryophthoridae 0 0 0 1 0 3 0 4 0 8
Latridiidae 0 1 0 0 0 0 0 4 0 5
Silphidae 0 0 0 0 2 0 0 1 0 3
Chrysomelidae 0 0 0 2 0 0 0 0 1 3
Cerambycidae 1 0 0 0 0 1 1 0 0 3
DIPTERA Drosophylidae 41 177 29 115 42 86 26 35 22 573
Simuliidae 8 30 34 6 30 15 8 19 9 159
Sciaridae 19 7 9 5 0 5 4 7 8 64
Phoridae 4 0 3 4 3 3 0 15 9 41
44
ABUNDANCIA ZONA
TOTAL
POR
FAMILIA
ALTA MEDIA BAJA
Orden Familia A I A II A III M I M II M III B I B II B III
Scatopsidae 4 1 0 0 0 9 0 8 2 24
Culicidae 3 3 0 1 0 3 0 9 0 19
Chironomidae 1 3 0 4 2 2 1 2 0 15
Calliphoridae 0 0 0 0 0 0 0 1 6 7
Cecidomyiidae 0 5 1 0 1 0 0 0 0 7
Chaoboridae 0 0 0 0 0 3 0 0 0 3
HYMENOPTERA Formicidae 2 13 36 7 41 6 46 59 6 216
Ceraphronidae 0 1 0 0 0 0 4 5 4 14
Braconidae 2 1 1 0 1 0 0 0 2 7
Megaspilidae 0 2 1 0 0 0 1 1 1 6
Ichneumonidae 0 1 1 1 1 0 1 0 0 5
Pteromalidae 2 1 0 1 0 0 1 0 0 5
Diapriidae 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1
HEMIPTERA Aphididae 0 4 3 12 0 3 6 8 7 43
Cecropidae 0 1 4 7 3 2 4 8 7 36
Lygaeidae 1 0 2 0 0 2 9 7 3 24
Reduviidae 1 0 0 1 0 0 0 0 0 2
DERMAPTERA Forficulidae 1 1 8 32 23 16 3 10 7 101
Anisolabididae 3 4 9 8 13 9 0 13 1 60
ORTHOPTERA Gryllidae 1 0 0 2 2 1 7 1 1 15
Acrididae 4 0 0 1 3 0 0 0 0 8
BLATTODEA Blattidae 0 0 0 4 2 4 2 3 3 18
ARCHAEOGNATHA Meinertellidae 0 1 1 1 0 0 0 1 0 4
TOTAL POR TRANSECTO 122 309 157 241 197 264 150 228 107 1775
Se puede observar que la mayor cantidad de individuos muestreados se hallaron en la zona
media, con 39,55 % de la población muestreada, representando a siete de los ocho ordenes
encontrados en la zona con cerca de 20 familias por cada transecto y con cerca de 25
morfoespecies por transecto; la cantidad de individuos muestreados se halló en la zona baja
representando cerca del 27,32% de los individuos muestreados.
45
Tabla 3. Abundancia absoluta y relativa de insectos por transecto y zona muestreada.
Zona Transecto No. Individuos % No. Morfo especies % No. Familias % Ordenes %
ALTA
A I 122 6.87 28 53.85 25 59.52 6 75.0
A II 309 17.41 24 46.15 23 54.76 6 75.0
A III 157 8.85 23 44.23 20 47.62 6 75.0
SUBTOTAL 588 33.13 23 44.23 20 47.62 6 75.0
MEDIA
M I 241 13.58 30 57.69 26 61.90 8 100.0
M II 197 11.10 24 46.15 20 47.62 7 87.5
M III 264 14.87 29 55.77 25 59.52 7 87.5
SUBTOTAL 702 39.55 24 46.15 20 47.62 7 87.5
BAJA
B I 150 8.45 27 51.92 22 52.38 7 87.5
B II 228 12.85 30 57.69 26 61.90 8 100.0
B III 107 6.03 24 46.15 21 50.00 7 87.5
SUBTOTAL 485 27.32 24 46.15 21 50 7 87.5
La gran mayoría de familias encontradas estuvieron representadas por una morfoespecie,
con una variación en el número de individuos encontrados. El orden Coleoptera se halla
altamente representado por la familia Staphylinidae, Curculionidae y Archeocrypticidae,
con la morfoespecie 1,6 y 41 respectivamente. Mientras el orden Diptera se halla mejor
representado por la familia Drosophylidae con más de 500 individuos correspondientes a la
morfoespecie 4, la más abundante de toda el área de estudio. En el orden Hymenoptera se
observó alta representación de la familia Formicidae con 3 morfoespecies (Tabla 4).
Tabla 4. Abundancia absoluta de morfoespecies por familia, (Ver Anexo 3.).
Orden Familia Morfo especie Cantidad
COLEOPTERA
Staphylinidae Morfo especie 1 85
Curculionidae Morfo especie 6 39
Morfo especie 39 25
Morfo especie 31 6
Archeocrypticidae Morfo especie 41 35
Cryptophagidae Morfo especie 38 25
Scarabaeidae Morfo especie 44 2
Morfo especie 66 10
Tenebrionidae Morfo especie 5 11
Coccinellidae Morfo especie 15 9
Morfo especie 48 1
Carabidae Morfo especie 12 10
46
Orden Familia Morfo especie Cantidad
Elateridae Morfo especie 9 8
Dryophthoridae Morfo especie 36 8
Scirtidae Morfo especie 16 10
Latridiidae Morfo especie 13 5
Silphidae Morfo especie 30 3
Chrysomelidae Morfo especie 45 3
Cerambycidae Morfo especie 43 3
DIPTERA
Drosophylidae Morfo especie 4 573
Simuliidae Morfo especie 3 159
Sciaridae Morfo especie 10 64
Phoridae Morfo especie 29 41
Scatopsidae Morfo especie 24 24
Culicidae Morfo especie 2 19
Chironomidae Morfo especie
10.2 15
Calliphoridae Morfo especie 47 7
Cecidomyiidae Morfo especie 2.3 7
Chaoboridae Morfo especie
10.4 3
HYMENOPTERA
Formicidae Morfo especie 21 162
Morfo especie 17 48
Morfo especie 14 6
Ceraphronidae Morfo especie 28 14
Braconidae Morfo especie 27 7
Megaspilidae Morfo especie 25 6
Ichneumonidae Morfo especie 26 4
Morfo especie 32 1
Pteromalidae Morfo especie 11 5
Diapriidae Morfo especie
25.1 1
HEMIPTERA
Cresopidae Morfo especie 20 36
Aphididae Morfo especie 23 34
Morfo especie 42 9
Lygaeidae Morfo especie 22 17
Morfo especie 46 7
Reduviidae Morfo especie 34 2
DERMAPTERA Forficulidae Morfo especie 19 101
Anisolabididae Morfo especie 8 60
ORTHOPTERA
Gryllidae Morfo especie 40 15
Acrididae Morfo especie 35 6
Acrididae Morfo especie 49 2
47
Orden Familia Morfo especie Cantidad
BLATTODEA Blattidae Morfo especie 33 12
Morfo especie 37 6
ARCHAEOGNATHA Meinertellidae Morfo especie 7 4
Las morfoespecies más abundantes se encontraron en la familia Drosophylidae (Diptera), la
familia Formicidae (Hymenoptera), la familia Simuliidae (Diptera), la familia Forficulidae
(Dermaptera), la familia Staphylinidae (Coleoptera), entre otras (Tabla 4.). El mayor
número de insectos se obtuvo con las trampas pitfall teniendo el 95,73 % de los individuos
recolectados, mientras el 3,2% se obtuvo a partir de muestras de Hojarasca (Embudo de
Berlesse) como se muestra en la tabla 5, y el 1,07 % con la captura manual (Tabla 6).
Tabla 5. Abundancia absoluta de insectos obtenidos en Embudo de Berlesse.
ABUNDANCIA
ZONAS TOTAL
POR
FAMILIA
ALTA MEDIA BAJA
Orden Familia A I A II A III M I M II M III B I B II B III
COLEOPTERA
Staphylinidae 1 0 1 5 0 0 0 2 4 13
Curculionidae 1 0 5 0 2 3 6 0 0 17
Latridiidae 0 0 0 0 0 0 0 4 0 4
Scirtidae 0 0 1 0 0 0 2 0 0 3
Carabidae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1
Chrysomelidae 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1
HYMENOPTERA Ceraphronidae 0 0 0 0 0 0 1 0 1 2
Formicidae 0 0 0 0 0 0 1 2 0 3
DIPTERA Phoridae 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1
HEMIPTERA Lygaeidae 0 0 1 0 0 0 9 2 0 12
TOTAL 3 0 8 7 2 3 19 10 5 57
Tabla 6. Individuos recolectados por captura directa
ABUNDANCIA ZONA TOTAL
POR
FAMILIA ALTA MEDIA BAJA
Orden Familia A I A
II
A
III
M I M
II
M III B I B
II
B
III
COLEOPTERA
Scarabaeidae 1 0 0 0 10 0 0 0 0 11
Scirtidae 1 0 0 0 2 0 0 0 0 3
Cerambycidae 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1
ORTHOPTERA Acrididae 3 0 0 0 1 0 0 0 0 4
TOTAL 6 0 0 0 13 0 0 0 0 19
48
8.2.2 Caracterización de Entomofauna para la Zona Alta
De las 52 morfoespecies encontradas en el estudio, en la zona Alta se hallan 42
morfoespecies, la mejor representada con 247 individuos es la morfoespecie 4 de la familia
Drosophylidae, seguida de la Morfoespecie 3 de la familia Simuliidae con 72 individuos, le
sigue la morfoespecie 1 de la familia Staphylinidae con 54 individuos y la morfoespecie 10
de la familia Sciaridae con 35 individuos (Figura 20).
Figura 20. Abundancia absoluta de morfoespecies insectiles presentes en la zona Alta
En esta área se observa la mayoría de las familias representadas por una sola morfoespecie,
tal como se muestra en la Figura 21, el orden con mayor número de familias fue
Coleoptera, está representado por la familia Staphylinidae, las demás familias se hallan con
menos de 10 individuos; seguido del orden Diptera en el que predomina la familia
Drosophylidae con la Morfoespecie 4 donde se encontró alta abundancia de individuos.
49
Figura 21. Zona Alta: Abundancia absoluta por familia.
En este sentido, es posible relacionar los órdenes y sus familias, en la zona Alta se pueden
encontrar 9 órdenes de los cuales por su número de familias y abundancia de individuos se
destacan con mayor relevancia Coleoptera, Diptera e Hymenoptera, con 11, 8 y 6 familias
respectivamente, las más destacadas por su abundancia son Drosophylidae: Diptera,
Staphylinidae: Coleoptera y Formicidae: Hymenoptera, (Figura 22).
Figura 22. Zona Alta. Abundancia absoluta por orden.
50
8.2.3 Caracterización de Entomofauna para la Zona Media
En la zona Media se encontró un total de 702 individuos representados en 44
morfoespecies, como se presenta en la Figura 23, donde se observa la dominancia de la
morfoespecie 4 de la familia Drosophylidae, seguida de la morfoespecie 19 de la familia
Forficulidae, la morfoespecie 3 de la familia Simuliidae, la morfoespecie 21 de la familia
Formicidae.
Figura 23. Abundancia absoluta de las morfoespecies insectiles reconocidas en la zona Media.
La mayoría de las familias de esta zona están representados por una única morfoespecie, la
mejor representada por su abundancia de individuos es la familia Drosophylidae (Diptera),
Forficulidae (Dermaptera), la familia Formicidae (Hymenoptera) con 2 morfoespecies y la
familia Simuliidae (Diptera) (Figura 24).
51
Figura 24. Zona Media. Abundancia de individuos insectiles en las morfoespecies y familias de clasificación
Con respecto a ordenes en la zona Media fue posible separar los 702 individuos en 8
órdenes y estos a su vez en familias, el de mayor número de familias fue el orden
Coleoptera con 14 familias, seguido de Diptera con 9 familias diferentes, luego el orden
Hemiptera con 5 familias e Hymenoptera con 3 familias, se observa la mejor representación
de Diptera y Coleoptera debido a la abundancia de individuos recolectados (Figura 25).
Figura 25. Zona Media. Representatividad de individuos insectiles en las familias y ordenes de clasificación.
52
8.2.4 Caracterización de Entomofauna para la Zona Baja
Para la Zona Baja se recolectaron 485 individuos, distribuidos en 42 morfoespecies, siendo
las más representativas la morfoespecie 21 de la familia Formicidae con 96 individuos,
seguido de la morfoespecie 4 de la familia Drosophylidae con 84 individuos, la
morfoespecie 3 – Simuliidae con 36 individuos, la morfoespecie 29 – Phoridae con 24
individuos, y la morfoespecie 20 – Cercopidae con 19 individuos (Figura 26).
Figura 26. Morfoespecies insectiles presentes en la zona Baja.
Con relación a las familias en la zona Baja se observa mayor representatividad en la familia
Formicidae del orden Hymenoptera: distribuidas en 3 morfoespecies, seguida de la familia
Drosophylidae, Simuliidae, Phoridae del orden Diptera como las mejor representadas
debido al número de individuos (Figura 27).
53
Figura 27. Zona Baja. Abundancia de individuos insectiles en las morfoespecies y familias de clasificación.
De acuerdo a los órdenes predomino el orden Coleoptera con 13 familias y 52 individuos,
pero el mejor representado fue el orden Diptera con 8 familias y cerca de 200 individuos,
seguido del orden Hymenoptera con 5 familias y 127 individuos, gran parte de ellos de la
familia Formicidae, y el orden Hemiptera con 4 familias y 60 individuos (Figura 28).
Figura 28. Zona Baja. Representatividad de individuos insectiles en las familias y órdenes de clasificación.
54
8.2.5 Composición trófica de la Entomofauna
La entomofauna encontrada en el Parque Ecológico Cantarrana estuvo compuesta por
individuos de variados hábitos alimenticios (Tabla 7.), aun cuando la categoría taxonómica
de familia es demasiado amplia para poder definir con precisión, con excepción de
Auchenorryncha (Hemíptera) que son de hábitos fitófagos exclusivamente, en otras
familias pueden encontrarse diferentes hábitos alimenticios. En la entomofauna encontrada
se reportan los hábitos alimenticios que según la literatura consultada comprenden:
micetófagos, fitófagos, saprófagos, hematófagos, omnívoros y parasitoides (Figura 29).
Figura 29. Hábitos tróficos más frecuentes de cada una de las familias a las cuales pertenecen las
morfoespecies encontradas en el área de estudio.
55
Tabla 7. Composición trófica de los individuos encontrados en el Parque Ecológico Cantarrana. XX Muy frecuente, X Frecuente, xx algunas veces, x rara vez.
(Anexo 4.)
ORDEN FAMILIA Morfoespecie
GRUPO TRÓFICO
Dep
red
ad
or
Om
nív
oro
Fit
ófa
go
Sa
pró
fag
o
Co
pró
fag
o
Xil
ófa
go
Mic
etó
fag
o
Ca
rpó
fag
o
Nec
rófa
go
Hem
ató
fag
o
Pa
rasi
toid
e
Otr
os
COLEOPTERA
Staphylinidae Morfo especie 1 X
XX
xx
x
Curculionidae Morfo especie 6 XX
XX X x X
Archeocrypticidae Morfo especie 41
XX
Curculionidae Morfo especie 39 XX
XX X x X
Curculionidae Morfo especie 31 XX
XX X x X
Cryptophagidae Morfo especie 38
X(Flores)
XX
Scarabaeidae Morfo especie 44
XX
X
Scarabaeidae Morfo especie 66 Xx
X XX
x
X
X
(Carroñero)
Tenebrionidae Morfo especie 5 X XX
XX xx
X
(Carroñero)
Coccinellidae Morfo especie 15 XX
Coccinellidae Morfo especie 48 XX
Carabidae Morfo especie 12 XX X xx X
X
x Ecto
Elateridae Morfo especie 9 X
XX
Dryophthoridae Morfo especie 36
XX
Scirtidae Morfo especie 16
XX
Latridiidae Morfo especie 13
XX X
Silphidae Morfo especie 30
XX
Chrysomelidae Morfo especie 45
XX
Cerambycidae Morfo especie 43
XX X
XX
xx
56
ORDEN FAMILIA Morfoespecie
GRUPO TRÓFICO
Dep
red
ad
or
Om
nív
oro
Fit
ófa
go
Sa
pró
fag
o
Co
pró
fag
o
Xil
ófa
go
Mic
etó
fag
o
Ca
rpó
fag
o
Nec
rófa
go
Hem
ató
fag
o
Pa
rasi
toid
e
Otr
os
DIPTERA
Drosophylidae Morfo especie 4 X
X
XX
X Ecto
Simuliidae Morfo especie 3
XX
Sciaridae Morfo especie 10
X
X
Phoridae Morfo especie 29
XX
X
Scatopsidae Morfo especie 24
X X
Culicidae Morfo especie 2
X
XX
Chironomidae
Morfo especie
10.2 X
XX XX
Calliphoridae Morfo especie 47
XX X
X x
Cecidomyiidae
Morfo especie
2.3 XX x XX X X
x
Chaoboridae
Morfo especie
10.4 XX
HYMENOPTERA
Formicidae Morfo especie 21 Xx x XX
x
X
Formicidae Morfo especie 17 Xx x XX
x
X
Formicidae Morfo especie 14 Xx x XX
x
X
Ceraphronidae Morfo especie 28 XX
x
XX
Ecto
Braconidae Morfo especie 27
XX
Megaspilidae Morfo especie 25 XX
XX
Ecto
Ichneumonidae Morfo especie 26 Xx
XX
Ichneumonidae Morfo especie 32 Xx
XX
Diapriidae
Morfo especie
25.1 x
XX
Endo
57
ORDEN FAMILIA Morfoespecie
GRUPO TRÓFICO
Dep
red
ad
or
Om
nív
oro
Fit
ófa
go
Sa
pró
fag
o
Co
pró
fag
o
Xil
ófa
go
Mic
etó
fag
o
Ca
rpó
fag
o
Nec
rófa
go
Hem
ató
fag
o
Pa
rasi
toid
e
Otr
os
Pteromalidae Morfo especie 11
XX
HEMIPTERA
Cercopidae Morfo especie 20
XX
Aphididae Morfo especie 23
XX
Aphididae Morfo especie 42
XX
Lygaeidae Morfo especie 22 xx(Huevos)
XX
X
X
X(Oligofago)
Lygaeidae Morfo especie 46 xx(Huevos)
XX
X
X
X(Oligofago)
Reduviidae Morfo especie 34 XX
X
x
DERMAPTERA Forficulidae Morfo especie 19
XX Xx
Anisolabididae Morfo especie 8 x
XX
ORTHOPTERA
Acrididae Morfo especie 35
XX x
Acrididae Morfo especie 39
XX x
Gryllidae Morfo especie 40
XX X X
BLATTODEA Blattidae Morfo especie 33
XX
Blattidae Morfo especie 37
XX
ARCHAEOGNATHA Meinertellidae Morfo especie 7
XX
XX
NEUROPTERA Chrysopidae Morfo especie 50 XX X
58
Las morfoespecies fitófagas pueden encontrarse en diferentes nichos desde los estratos
arbustivos, herbáceos y subterráneos ocupando desde el follaje, las flores, los frutos hasta
incluso las raíces de las plantas. Estos microhábitats son compartidos por otros organismos,
tales como los parasitoides quienes en estos espacios encuentran también oportunidad para
poder sobrevivir a partir de dichos individuos o encuentran nichos para sobrevivir. También
se hallan algunos insectos sobre el horizonte más superficial del suelo o en la hojarasca,
encargados de la descomposición de hojas, frutos y troncos de tipo saprofito, al igual que
otras morfoespecies insectiles micetofagas capaces de recolectar y/o alimentarse a partir de
hongos, hasta incluso algunas morfoespecies depredadoras capaces de alimentarse de otros
insectos o carroñeras. Hay pocos organismos xilófagos, carpófagos, oligófagos o
coprófagos.
8.2.6 Caracterización de Collembola
La caracterización de collembolos se desarrolló de forma general (hasta nivel de orden,
Tabla 8.), ya que no fue posible realizar los debidos montajes para discriminar hasta
familia.
Se encontró un total de 4.899 individuos (tabla 7), siendo Poduromorpha el orden más
representativo (56 %), seguido de Entomobryomorpha (37 %) y Symphypleona (7 %).
Tabla 8. Abundancia absoluta de Collembola en las tres zonas de estudio.
Orden/ Zona Zona Alta Zona
Media Zona Baja Total
Entomobryomorpha 22 1774 23 1819
Poduromorpha 639 1289 798 2726
Symphypleona 29 220 105 354
Total 690 3283 926 4899
8.3 REPRESENTATIVIDAD DEL MUESTREO DE INSECTOS
Las 108 subunidades de muestreo realizadas se hallan representadas por tres tipos de
trampeo con trampas Pitfall, embudos tipo Berlesse y de captura directa sobre los 9
transectos de trabajo. La curva de acumulación de especies utilizando el número de
muestras, se observan en la Figura 30.
59
Figura 30. Curvas de acumulación de especies por Zonas de estudio y del área general de muestreo
Siguiendo la metodología descrita a partir del número de muestras y el número de
morfoespecies en el modelo de Clench se realizó una estimación no lineal el cual se ajustó
con métodos iterativos y se obtuvieron los siguientes resultados (Tabla 9).
Tabla 9. Parámetros de la curva obtenida por el modelo de ajuste de Clench
Coeficiente de
determinación
Parámetros de la curva Pendiente de
la curva
Proporción
de Fauna
muestreada
Esfuerzo de
muestreo
para el 99%
A B
80,8% 32,4 0,50 0,15 84,9 % 197,9
Coeficiente de determinación: el resultado superior al 70% indica que la estimación de
riqueza es estable con relación a los datos iniciales, además del alto grado de ajuste de la
ecuación de Clench al muestreo realizado.
Parámetros de la curva: los valores obtenidos del modelo de Clench representan la tasa de
incremento de nuevas morfoespecies cuando se empezó el muestreo o como resultado del
premuestreo realizado representado por la letra A, y B corresponde a la tasa de incremento
o disminución del número de morfoespecies o el número probable de morfoespecies que
puede aumentar en cuanto aumente el número de muestras realizadas.
60
Proporción de la fauna encontrada: significa que cerca del 85% de las morfoespecies fueron
muestreadas en el área de estudio, demuestra el alto esfuerzo de muestreo y la efectividad
de la metodología de recolección que podría ser aplicado en otros sitios con bosque andino,
aun así, no se descarta que entre mayor sea el esfuerzo de muestreo aumenten las
probabilidades de encontrar nuevas morfoespecies.
Esfuerzo de muestreo al 99%: A partir de este modelo fue posible estimar que se
requerirían 90 unidades adicionales de muestreo para poder lograr representar el 99% de la
fauna esperada en el área. Este alto número de muestras se presenta debido a que a medida
que se realiza un esfuerzo mayor, es menos frecuente el registro de una nueva
morfoespecie, por lo que la pendiente va disminuyendo, pero mientras la curva vaya
estabilizando y disminuyendo la pendiente es necesario un muestreo mayor para añadir
morfoespecies significativas.
Figura 31. Curvas de acumulación de especies por Zonas y del área en general ajustadas a partir del modelo
de Clench.
61
Representatividad del muestreo por Zonas
En la tabla 10 se presentan los parámetros obtenidos al estimar la eficiencia de muestreo
por zonas. Tabla 10. Parámetros obtenidos al estimar la eficiencia de muestreo por zonas
Zona Coeficiente de
Determinación
Parámetros de la
curva Pendiente
de la curva
Proporción
de Fauna
Muestreada
Esfuerzo de
Muestreo
para el
99% A B
Alta 80,8% 60,9 0,9 0,0 55,2 % 100,0
Media 80,8 % 23,0 0,3 0,2 52,3 % 279,3
Baja 80,8 % 19,0 0,3 0,1 62,0 % 301,8
8.4 ESTIMACIÓN DE LA DIVERSIDAD ALFA EN INSECTOS
El índice de Simpson (Figura 32), la zona baja representa el porcentaje más alto con el 91
% de encontrar dos individuos de la misma especie, en comparación con la Zona Alta (78
%) y la Zona Media (84 %). Indicando que tanto en cobertura arbórea como arbustiva hay
ausencia de diversidad por la dominancia de una especie.
Figura 32 Valores índice de Simpson para insectos
Mediante el índice de Shannon (Figura 33), en la zona Baja se establece el valor más alto
correspondiente a 2,9, lo cual indica que representa un valor cercano para catalogarse como
diverso, en la Zona Media y Alta se obtuvieron valores de 2,6 y 2,3 respectivamente,
indicando que la diversidad es baja
62
Figura 33. Diversidad estimada con el índice Shannon para cada zona del área estudiada.
8.5 DIVERSIDAD VERDADERA DE INSECTOS
Mediante el número equivalente de especies, estimado con el orden de diversidad q0 es
posible evidenciar que no hay diferencias significativas en cuanto a la diversidad entre las
áreas comparadas. Se muestran los órdenes de riqueza determinados para cada una de las
zonas muestreadas, a nivel de entomofauna general (Figura 34).
Figura 34. Ordenes de diversidad (q0, q1,q2) en las zonas muestradas
Respecto a la diversidad de orden 1, la zona baja alcanza los valores más altos siendo el
más rico en comparación con la zona Media y Alta. Se debe tener presente que q1 está
influenciado por la abundancia, además se establece que estadísticamente hay diferencia
significativa entre sitios muestreados.
63
Se puede establecer que la zona baja tendría una diversidad teórica correspondiente a 19
morfo especies donde cada una tendría igual abundancia. Le sigue la zona media con 14
especies efectivas y por último la zona alta con 10 especies efectivas.
Para el presente muestreo se pudo establecer que según la diversidad de orden 1 la zona
media tiene solo el 72,5 % de la diversidad que tiene la zona baja o dicho de otro modo la
zona baja tiene 1,4 veces más diversidad que la que tiene la zona media.
De igual forma la zona alta tiene solo el 73 % de la diversidad que tiene la zona media o
dicho de otra forma la zona media tiene 1,4 veces más diversidad que la que tiene la Zona
Alta.
Con respecto a la diversidad verdadera del orden q2 la zona baja alcanzo la mayor riqueza
lo cual indica que en esta zona las morfoespecies comunes tienen mayor equidad que en la
zona media y alta los cuales obtuvieron menores valores.
Por otra parte, la diversidad es significativamente diferente por lo cual se establece que
existen diferencias entre las zonas muestreadas
Se establecen equivalencias entre las diferentes zonas: donde la Zona Media tiene solo el
57 % de la diversidad que tiene la Zona Baja o dicho de otro modo la Zona Baja tiene 1,7
veces más diversidad que la que tiene la Zona Media.
De igual forma la Zona Alta tiene solo el 72,9 % de la diversidad que tiene la Zona Media o
dicho de otra forma la Zona Media tiene 1,4 veces más diversidad que la que tiene la Zona
Alta.
A continuación, se presentan los Ordenes de diversidad (q0, q1, q2) para los órdenes más
característicos de la entomofauna epiedafica encontrada en el parque ecológico cantarrana a
su vez se realiza un análisis junto con el grupo de collembola (Figura 35).
Figura 35 Ordenes de diversidad (q0, q1,q2) en las zonas muestreadas A. (COLEOPTERA, DERMAPTERA,
HYMENOPTERA) y B. (COLEOPTERA, DERMAPTERA, HYMENOPTERA Y COLLEMBOLA)
64
En la imagen A. la diversidad a nivel de q0 y q1 no mostro diferencias significativas en la
diversidad entre los sitios muestreados, por parte del q2, fue posible establecer que la zona
media alcanza la mayor diversidad reportando 7 especies efectivas, en comparación con la
zona con 7 y la zona baja con 3 especies efectivas, en la imagen B. en la cual se adiciono el
grupo collembola, ninguno de los sitios presenta diversidad significativamente diferente,
sin embargo a nivel de q0 la zona alta presenta un valor de 28,6, y q1 y q2 presentan
valores de 3,5 y 2,6 especies efectivas respectivamente.
8.6 ESTIMACIÓN DE LA DIVERSIDAD ALFA EN FLORA
Se calculó el índice de Simpson para flora, la Zona Baja alcanzo los valores mayores con el
87 % de probabilidad, los valores menores se encontraron en la Zona Media con el 75 %
por su parte la Zona Alta alcanzo valores de 78 % (Figura 36). Indicando que en cobertura
arbórea y arbustiva existe dominancia de una especie.
Figura 36 Índice de Simpson para vegetación
En la Zona Alta se obtuvo un valor bajo de 1,76. La Zona Baja corresponde a los valores
más altos con 2,40 lo cual implica mayor equidad y heterogeneidad. Por último, en la Zona
Media se obtuvo un valor de 1,89, (Figura 37). De acuerdo a los valores índice de Shannon
es posible establecer que a nivel de cobertura la diversidad es baja ya que se encuentran
valores por debajo de 3.
Figura 37. índice de Shannon para vegetación
65
8.7 ESTIMACIÓN DE LA DIVERSIDAD BETA
Con la finalidad de comparar y determinar el grado de similitud, se utilizaron los
coeficientes de similitud de Jaccard y de Bray-Curtis, entre los nueve transectos
muestreados a continuación se muestran los cluster obtenidos a nivel de insectos y de
vegetación circundante en cada transecto (Figura 38).
Figura 38. Dendrogramas de similitud para insectos tomando los transectos muestreados en cada Zona (A=
Alta, M= Media, B=Baja) A. Clúster de similaridad índice de Bray Curtis, B. Clúster de similaridad índice de
Jaccard
Respecto al índice de Bray Curtis es posible establecer las zonas que presentan mayor
similitud teniendo en cuenta las abundancias de insectos encontrados. Los transectos M II y
A III muestran un 68% de semejanza, a su vez el M II junto con el transecto B II presentan
un 63% de similaridad, por su parte el transecto A III y el B II se relacionan en un 61 %. En
base a lo anterior se establecen que estos transectos se encuentran fuertemente
relacionados, presentando los porcentajes de similitud más altos.
Como se muestra en la ilustración B de la Figura 39, se establece la clara relación en tres
grupos. Sin embargo, las más altas semejanzas se presentaron entre los transectos M III
respecto a B II con un 61%, y B II con B III, así como M II con M I obtuvieron valores del
56 %.
Figura 39. Dendrogramas de similitud para vegetación tomando los transectos muestreados en cada Zona (A=
Alta, M= Media, B=Baja) A. Clúster de similaridad índice de Bray Curtis, B. Clúster de similaridad índice de
Jaccard.
A B
A B
66
A nivel de vegetación respecto al índice de Bray – Curtis se establecen dos grupos, siendo
los transectos A I en relación con A III y M I con M III los que presentan mayor similitud
equivalente al 62 % y 59 % respectivamente, indicando que la diversidad es baja.
Por medio del Índice de Jaccard ilustración B, se contrasta la composición de
morfoespecies, transectos con mayor porcentaje de similitud son el A II con A III
representando el 71% y el M I con M II equivalente al 64 % de afinidad (Figura 39)
8.8 ENTOMOFAUNA ASOCIADA Y VARIABLES AMBIENTALES
Se trabajó con características del suelo y la vegetación para determinar si estás permitían
dar respuesta a la variación de la entomofauna en cada una de las zonas de trabajo. Las
características del suelo tomadas en cuenta fueron el pH, la presencia de Humus y la
concentración de cloruros, obtenidas a partir de muestras recolectadas y analizadas durante
el mismo período de muestreo por parte del Jardín Botánico de Bogotá (Tabla 11). Luego
con la vegetación se tomaron en cuenta las variables de abundancia, dominancia, frecuencia
y cobertura de la vegetación.
Tabla 11. Características químicas de suelos de cada transecto muestreado, (JBJCM, 2017). Se destaca que el
humus se tomó como presencia (1) y ausencia (0), mientras que las demás variables son continuas
Transecto Altitud pH Humus
Cloruros
(mg/Kg de
suelo)
A I 2692 6,8 1 0
A II 2681 6,8 1 0
A III 2695 7,8 1 0
M I 2664 6,6 1 356
M II 2662 5,6 1 356
M III 2651 5,6 1 356
B I 2642 6 0 890
B II 2646 6 0 890
B III 2652 6 0 890
8.8.1 Análisis de Redundancia (RDA) - Entomofauna
La composición de la entomofauna en función de variables de suelo y de la vegetación es
explicada por varios modelos (Tabla 12) según las variables de influencia, para escoger el
mejor se tuvo en cuenta el R2 y el R adjunto.
67
Tabla 12. Variables vegetales y de suelos organizadas en modelos para encontrar aquellas que generaran
mayor aporte a la variación en el ensamblaje de insectos en el Parque Ecológico Cantarrana
N
o Modelos R2
R
Ajustado
1 AbundanciaV + FrecuenciaV + DominanciaV + CoberturaV 0,622 0,244
2 Altitud + CoberturaV + AbundanciaV + DominanciaV + FrecuenciaV 0,747 0,326
3 Cloruros + Altitud + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0,846 0,384
4 Cloruros + Altitud + AbundanciaV + DominanciaV + FrecuenciaV 0,765 0,373
5 Cloruros + Humus + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV + DominanciaV
1 0,861 0,445
6 Cloruros + Humus + Altitud + AbundanciaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0,860 0,440
7 Humus + Cloruros + Altitud + AbundanciaV + DominanciaV + FrecuenciaV +
CoberturaV 0,901 0,205
8 pH + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0,712 0,231
9 pH + Altitud + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0,833 0,333
10 pH + Cloruros + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0,848 0,392
11 pH + Cloruros + Altitud + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 0,897 0,175
12 pH + Cloruros + Altitud + Humus + AbundanciaV + CoberturaV 0,802 0,207
13 pH + Cloruros + Altitud + Humus + AbundanciaV + CoberturaV + DominanciaV 0,898 0,186
14 pH + Cloruros + Altitud + Humus + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV 0,899 0,192
15 pH + Cloruros + Altitud + Humus + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 1,000 NA
16 pH + Cloruros + Altitud + Humus + CoberturaV + DominanciaV 0,789 0,157
17 pH + Cloruros + Altitud + Humus + CoberturaV + FrecuenciaV 0,796 0,183
18 pH + Cloruros + Humus + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 0,900 0,200
19 pH + Cloruros + Humus + Altitud + AbundanciaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0,900 0,198
20 pH + Humus + Altitud + Cloruros 0,620 0,240
21 pH + Humus + Cloruros + Altitud + AbundanciaV 0,745 0,319
22 pH + Humus + Cloruros + Altitud + AbundanciaV + DominanciaV 0,802 0,207
El modelo escogido fue el número 5, que relacionaba siete variables de las ocho iniciales,
como la presencia de humus, la concentración de cloruros, la abundancia vegetal, la
frecuencia vegetal, la dominancia vegetal y la cobertura vegetal; además por poseer un R2
de 0,861 y un R ajustado de 0,445 (el más alto).
Ecuación 1. Modelo de RDA ajustado y trabajado.
68
Sabiendo el modelo de trabajo para el análisis de redundancia se determinaron los valores
Eigen por cada eje del RDA y la variación representada, así como se presenta a
continuación, se observó que el primer eje representa el 30,84% de la variación del
ensamblaje de insectos y las variables de riqueza vegetal y las caracterizadas en el suelo, el
segundo representa el 21,88% y juntos el 52,72% del total (Tabla 13).
Tabla 13. Valores Eigen y porcentajes de variación total del Análisis de Redundancia.
RDA1 RDA2 RDA3 RDA4 RDA5 RDA6 PC1 PC2
Eigenvalue 0,053 0,038 0,022 0,016 0,011 0,009 0,017 0,007
Proportion Explained 0,308 0,219 0,126 0,093 0,064 0,051 0,100 0,039
Cumulative Proportion 0,308 0,527 0,653 0,747 0,811 0,861 0,961 1,000
Figura 40 Composición de la entomofauna del PEC explicada por las variables edáficas y variables de
riqueza vegetal generado a partir del modelo No.5.
Al evaluar las variables para el primer eje la concentración cloruros aporta más en la
variación de familias como Aphididae y Ceraphronidae y la frecuencia vegetal aporta más a
las familias Scarabaeidae y Anisolabididae, mientras para el segundo eje las variables que
más aportan son el contenido de humus y la cobertura de la vegetación en las familias
69
Staphylinidae y Sciaridae junto a la Frecuencia Vegetal en las familias Blattidae y
Curculionidae (Figura 42) (Tabla 14 y 15).
Tabla 14. Aporte de la variación al ensamblaje de la entomofauna por parte de las familias mejor
representadas en el área de estudio (Familias obtenidas después de la transformación de Hellinger).
Familia RDA1 RDA2
Staphylinidae -0,031 0,196
Curculionidae -0,088 -0,196
Cryptophagidae 0,081 -0,069
Scarabaeidae -0,256 0,037
Drosophylidae -0,057 0,108
Simuliidae 0,019 0,114
Sciaridae 0,137 0,119
Phoridae -0,115 -0,117
Culicidae -0,062 0,035
Formicidae 0,134 -0,004
Ceraphronidae 0,246 -0,006
Aphididae 0,277 -0,048
Cecropidae 0,066 -0,169
Lygaeidae 0,171 -0,017
Forficulidae -0,068 -0,161
Anisolabididae -0,218 -0,022
Blattidae 0,024 -0,250
Tabla 15. Aporte a la variación de variables de riqueza en la vegetación y características del suelo en el
ensamblaje de la entomofauna.
Variables RDA1 RDA2
Humus -0,713 0,289
Cloruros 0,546 -0,623
Cobertura_V -0,232 0,286
Abundancia_V -0,332 -0,059
Dominancia_V -0,091 -0,111
Frecuencia_V -0,664 -0,577
70
Figura 41. Matriz de correlaciones entre variables ambientales y la abundancia de las familias insectiles
pertenecientes a la entomofauna general, aplicando método de Spearman: las correlaciones entre 0,7 y 1 son
correlaciones positivas aceptables de la misma forma que las correlaciones de -1 y -0,7, las correlaciones cuyo
resultado es 0 indican la ausencia de correlación lineal entre las variables
Se resaltan las correlaciones aceptables como se muestra en la Figura 41, entre las familias
de la entomofauna general y las variables ambientales como: Frecuencia_V y Anisolabidae
(0,87), Staphylinidae y pH (0,81), Abundancia vegetal con Carabidae y Elateridae (0,74),
Humus y Carabidae (0,73), Cloruros y Cecropidae (0,71), Cloruros y Blattidae (0,70).
Y en las correlaciones negativas se resaltan las generadas entre Ceraphronidae y Humus (-
0,90), Megaspilidae y Frecuencia_V (-0,77), Lygaeidae y Humus (-0,76), Humus y
Calliphoridae (-0,75), Aphididae y Humus (-0,75), Ceraphronidae y Frecuencia_V (- 0,70),
indicando una correlación inversa donde mientras la primera variable aumenta la otra
disminuye.
71
8.8.2. Análisis de Redundancia (RDA) – Entomofauna Epiédafica
Por otra parte, al enfocar el análisis para las familias de los órdenes Dermapthera,
Coleoptera, Hymenoptera junto a los órdenes de Collembola en función de variables de
suelo y de la vegetación se presentan varios modelos (Tabla 16) según las variables de
influencia, para escoger el mejor se tuvo en cuenta el R2 y el R adjunto.
Tabla 16. Variables vegetales y de suelos organizadas en modelos para encontrar aquellas que generaran
mayor aporte a la variación en el ensamblaje de insectos en el Parque Ecológico Cantarrana
No. Modelos R2 R Ajustado
1 AbundanciaV + FrecuenciaV + DominanciaV + CoberturaV 0.563 0.126
2 Altitud + CoberturaV + AbundanciaV + DominanciaV + FrecuenciaV 0.674 0.133
3 Cloruros + Altitud + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 0.724 -0.100
4 Cloruros + Altitud + AbundanciaV + DominanciaV + FrecuenciaV 0.618 -0.016
5 Cloruros + Humus + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 0.768 0.073
6 Cloruros + Humus + Altitud + AbundanciaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0.715 -0.139
7 Humus + Cloruros + Altitud + AbundanciaV + DominanciaV + FrecuenciaV
+ CoberturaV 0.826 -0.387
8 pH + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0.713 0.234
9 pH + Altitud + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV + DominanciaV 0.822 0.289
10 pH + Cloruros + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 0.809 0.237
11 pH + Cloruros + Altitud + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 0.841 -0.272
12 pH + Cloruros + Altitud + Humus + AbundanciaV + CoberturaV 0.645 -0.417
13 pH + Cloruros + Altitud + Humus + AbundanciaV + CoberturaV +
DominanciaV 0.840 -0.277
14 pH + Cloruros + Altitud + Humus + AbundanciaV + CoberturaV +
FrecuenciaV 0.836 -0.304
15 pH + Cloruros + Altitud + Humus + AbundanciaV + CoberturaV +
FrecuenciaV + DominanciaV 1 NA
16 pH + Cloruros + Altitud + Humus + CoberturaV + DominanciaV 0.636 -0.455
17 pH + Cloruros + Altitud + Humus + CoberturaV + FrecuenciaV 0.708 -0.167
18 pH + Cloruros + Humus + AbundanciaV + CoberturaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 0.839 -0.283
19 pH + Cloruros + Humus + Altitud + AbundanciaV + FrecuenciaV +
DominanciaV 0.835 -0.315
20 pH + Humus + Altitud + Cloruros 0.494 -0.010
21 pH + Humus + Cloruros + Altitud + AbundanciaV 0.615 -0.025
22 pH + Humus + Cloruros + Altitud + AbundanciaV + DominanciaV 0.712 -0.149
El modelo que mejor describe la variación de la entomofauna epiedáfica con respecto a las
variables ambientales es el número 9, que relacionaba seis variables de las ocho iniciales,
como el pH, la altitud, la abundancia vegetal, la frecuencia vegetal, la dominancia vegetal y
72
la cobertura vegetal; además por poseer un R2 de 0,822 y un R ajustado de 0,289 (el más
alto).
Ecuación 2. Modelo de RDA ajustado para las variables que pueden influenciar en gran medida el comportamiento de la
entomofauna epiedafica.
Con este modelo del RDA para el análisis de redundancia se determinaron los valores
Eigen por cada eje del RDA y la variación representada, así como se presenta a
continuación, se observó que el primer eje representa el 30,84% de la variación del
ensamblaje de insectos y las variables de riqueza vegetal y las caracterizadas en el suelo, el
segundo representa el 21,88% y juntos el 52,72% del total (Tabla 17).
Tabla 17. Valores Eigen y porcentajes de variación total del Análisis de Redundancia para la entomofauna
epiedáfica. Datos obtenidos con ayuda del programa R Project.
RDA1 RDA2 RDA3 RDA4 RDA5 RDA6 PC1 PC2
Eigenvalue 0.113 0.071 0.044 0.020 0.007 0.001 0.049 0.005
Proportion Explained 0.361 0.226 0.140 0.064 0.024 0.004 0.159 0.018
Proportion 0.361 0.588 0.729 0.793 0.818 0.822 0.981 1
Figura 42. Composición de la entomofauna del PEC explicada por las variables edáficas y variables de
riqueza vegetal con la abundancia de los insectos epiedáficos generado a partir del modelo No.9.
Al evaluar las variables para el primer eje el pH aporta más en la variación del orden y la
familia como Entomobryomorpha y Formicidae, mientras para el segundo eje las variables
FrecuenciaV
73
que más aportan son la Frecuencia V y la Abundancia V con relación a las familias
Forficulidae y Anisolabidae, al igual que la variación del pH se relaciona con las familias
Poduromorpha y Symphypleona (Figura 42) (Tabla 18 y 19).
Tabla 18. Aporte de la variación al ensamblaje de la entomofauna epiedáfica por parte de las familias y
ordenes mejor representadas en el área de estudio (Ajuste de Hellinger).
Familia u Orden RDA1 RDA2
Entomobryomorpha 0.112 -0.420
Formicidae 0.170 -0.194
Latridiidae 0.050 -0.045
Symphypleona -0.259 -0.035
Scarabaeidae 0.045 -0.017
Anisolabididae 0.195 -0.011
Forficulidae 0.226 -0.006
Dryophthoridae 0.124 0.016
Coccinellidae -0.050 0.042
Staphylinidae -0.045 0.049
Poduromorpha -0.497 0.060
Carabidae 0.056 0.094
Curculionidae 0.152 0.137
Tenebrionidae 0.055 0.144
Cryptophagidae 0.148 0.203
Archeocrypticidae 0.224 0.205
Tabla 19. Aporte a la variación de variables de riqueza en la vegetación y características del suelo en el
ensamblaje de la entomofauna epiedáfica.
RDA1 RDA2
pH -0.584 -0.230
Altitud -0.399 0.005
Abundancia_V 0.65 0.367
Dominancia_V 0.454 0.443
Frecuencia_V 0.930 -0.116
Cobertura_V 0.078 0.168
Figura 43. Matriz de correlaciones que relaciona la entomofauna epiedáfica con las variables físico químicas
del suelo y la abundancia de los insectos, aplicación del método de Spearman: correlaciones entre 0,7 y 1 son
correlaciones positivas aceptables de la misma forma que las correlaciones de -1 y -0,7, las correlaciones cuyo
resultado es 0 indican la ausencia de correlación lineal entre las variables
Se resaltan las correlaciones aceptables entre las familias de la entomofauna epiedafica y
las variables ambientales en la familia Carabidae con la Abundancia_V(0,87), con la
Dominancia_V(0,74), con la Frecuencia_V(0,76) y con la presencia del Humus(0,75), la
familia Elateridae y las variables Abundancia_V(0,86) y Frecuencia_V(0,70), en la familia
Anisolibidae(0,83) y Forficulidae(0,79) con la Frecuencia V, y del pH sobre las familias
Staphylinidae(0,85) y Coccinellidae(0,82) (Figura 43).
Y en las correlaciones negativas se resaltan las generadas entre la Frecuencia _V y los
órdenes Symphypleona y Poduromorpha, y entre las familias Staphylinidae (0,79) y
Coccinelidae (0,72), indicando una correlación inversa donde mientras las primeras
variables aumentan la segunda disminuye.
75
9. DISCUSIÓN
La entomofauna encontrada en el Parque Ecológico Cantarrana en general estuvo
representada por 52 morfoespecies pertenecientes a 42 familias y 8 ordenes de la clase
insecta y Collembola en donde, se destaca la alta presencia de individuos del orden
Coleoptera, Diptera e Hymenoptera. La entomofauna epiedáfica estuvo compuesta por 30
morfoespecies pertenecientes a 20 familias y 5 ordenes, y 3 ordenes de la Clase
Collembola.
En el estudio se trató de relacionar la entomofauna general y epiedáfica con variables de
vegetaciòn y de suelos, pero es necesario tener en cuenta que se tuvieron en cuenta pocas
variables de suelo, algunas de ellas de manera muy descriptiva y general, ya que el parque
presenta una gran heterogeneidad de sitios, pendientes y micrositios que pueden generar
variabilidad importante entre puntos de muestreo. Por lo anterior, si bien tiende a haber
relación entre la entomofauna general y la cobertura de vegetación estas variables no son
completamente explicativas de la presencia especifica de grupos de insectos.
9.1 CARACTERIZACIÓN DE LA DIVERSIDAD INSECTIL EN EL PARQUE
Entomofauna General
Este estudio es un acercamiento al conocimiento de la diversidad insectil del Parque
Ecológico Cantarrana pues nace a partir de un único muestreo realizado en la época
húmeda del 2017, y es una base ya que en el área no existía un referente de los insectos allí
presentes y así mismo, puede ser un punto de partida para futuras investigaciones en el área
de estudio y constituirse en una herramienta para la evaluación de las actividades o
impactos ambientales existentes. La colección insectil, de Collembola y Coleoptera estará
disponible en la Colección Entomológica Forestal de la Universidad Distrital Francisco
José de Caldas, para futuros estudios.
Se destaca en el muestreo una predominancia de insectos del orden Diptera, posiblemente
influenciada por la atracción generada por el uso de la piña como atrayente en las trampas,
al iniciar su proceso de fermentación, pero a su vez sirvió como atrayente para el
reconocimiento de individuos de mayor variedad de ordenes insectiles. Para una
representación más amplia de la entomofauna del parque se aconseja la implementación de
un muestreo multitaxonomico que incluya otros tipos de trampas incluso con más
repeticiones y que involucre otros tipos de cebo, para permitir el reconocimiento de otros
individuos que no fueron encontrados o que se encontraron en baja frecuencia (Villarreal, et
al. 2006).
En el análisis de redundancia se resalta una relación directa entre Anisolabidae
(Dermaptera) y la Frecuencia Vegetal, posiblemente debido a la preferencia de los
organismos de esta familia, por la materia orgánica muerta, polen y vegetales; lo mismo se
76
ocurre con los individuos la familia Scarabaeidae, que puede alimentarse de residuos
vegetales, excrementos, raíces u hongos (Bautista, 2014). La relación de Scarabaeidae con
la Abundancia y la Frecuencia Vegetal conduce a decir que a mayor número de individuos
vegetales capaces de ayudar a cerrar el dosel del bosque mayor será la existencia de los
miembros de esta familia insectil, también señalado por Smith, et al. (2015).
Por otra parte, las variables preliminares como características del suelo no fueron
suficientemente contrastantes para establecer una posible respuesta de la entomofauna. Para
facilitar un análisis más robusto, se deberían medir otras características del suelo de tipo
continuo, tales como la temperatura, la humedad, el contenido de materia orgánica del suelo
y/o la relación C/N en el suelo de esta manera tener un mejor análisis de dichas
características.
Entomofauna Epiedáfica
Al separar de la entomofauna general encontrada en el muestreo, las familias consideradas
estrictamente epiedáficas, se encontró a las familias Formicidae (Hymenoptera), las
Coleoptera, Dermaptera y Collembola; puesto que son organismos que se relacionan más
directamente con el suelo en parte de su ciclo de vida, sin embargo, es importante resaltar
que muchos de estos pueden desplazarse, cambiar de hábitat y colonizar otras áreas.
Los individuos pertenecientes a la familia Curculionidae frecuentemente son fitófagos o
depredadores, (Booth et al., 1990), su alta presencia en la Zona Media puede responder a la
disponibilidad de recursos arboreos en descomposición, debido a las podas realizadas en el
sitio y la madera que ya iniciado dicho proceso, (Chaves, 2010). Su alta abundancia y
relación epiedáfica demuestra que a pesar de la diferentes fuentes de alimento los
individuos se han adaptado en este ambiente y se espera que continuen encontrandose en el
área en labores como estas y se adapten a los cambios fisionomicos al interior del bosque.
Se destaca la presencia de la familia Formicidae con un 12,2% de la abundancia total y
representada en tres morfoespecies, aunque Chaves (2010) reporta la disminución o poca
frecuencia de individuos de esta familia después de los 2500 msnm. En el area de estudio se
observan ejemplares que demuestran su existencia, Chaves (2010) documenta que a pesar
de las limitantes termofilicas existentes en ecosistemas como este, al interior del bosque
pueden establecerse condiciones microclimaticas que favorezcan la actividad y
sobrevivencia de los individuos de esta familia.
Se observó una fuerte relación entre Entomobryomorpha y Formicidae con la Frecuencia
Vegetal, indicando que a mayor número de individuos vegetales mayor sería la presencia de
estos insectos. Bautista (2014), reconoce la labor de las hormigas como organismos
constructores de suelo, con infinidad de adaptaciones, capaces de cambiar la fisionomía y la
composición florística de los sitios donde habitan posibilitando la aparición de especies
vegetales en sitios con suelos alterados. Pero no siempre se les relaciona con sitios
conservados (Guzmán, 2014).
77
Los colémbolos son organismos asociados a la descomposición de la materia orgánica y el
enriquecimiento de la estructura del suelo y son indicadores de sitios con niveles de
perturbación bajo lo cual puede dar respuesta a su alta presencia en la zona Media (Socarrás
y Rodríguez, 2001 citado por Vélez-Azañero, 2016). Por otro lado, Marín (2013), resalta la
preferencia de los colémbolos por sitios con mayor cantidad de mantillo tal como se
observó en las visitas a campo en la zona Media, puesto que les permite un fácil acceso a
fuentes de alimento del suelo mineral a través de la estructura del sustrato.
Los dermápteros relacionados con las variables de Frecuencia Vegetal y la Abundancia
Vegetal representan el 5,7% de la abundancia total, son de hábitos saprófagos, y por ende
importantes en descomposición de desechos orgánicos y madera en descomposición, lo cual
sugiere que los procesos de reciclaje de nutrientes y reincorporación de materia orgánica al
suelo dentro del bosque se encuentran activos, lo que enriquece el flujo energético del
ecosistema y acelera los procesos de regeneración (Norman, et al. 2005).
9.2 GRUPOS PREDOMINANTES
En el estudio predominaron los órdenes Coleoptera, Diptera e Hymenoptera como los más
frecuentes y diversos, en el caso de Coleoptera en la zona media se observa mayor
frecuencia de las familias Staphylinidae, Curculionidae, Archeocrypticidae,
Cryptophagidae.
Contrario a lo encontrado en Cantarrana, Álvarez (2005), en su estudio de la entomofauna
bajo diferentes zonas de cobertura en la Cantera de Soratama, enfocado en la
caracterización del orden Coleoptera, encontró mayor abundancia en zonas adyacentes de
bosque con alta cobertura arbórea, que en áreas de relicto de bosque alto andino o
descapotados poco intervenidos. Esto puede ser indicio de que la intervención con
vegetación de bosque andino en la zona baja (antes sin vegetación), pudo generar mayor
diversidad que en áreas con mayor cobertura arbórea como la zona alta y media, pero para
verificar esto se debería considerar la realización de un muestreo con la misma metodología
en la misma época de humedad para tener un referente de comparación en la misma zona.
Staphylinidae estuvo representada por 85 individuos (4,8 %) de la abundancia, siendo una
de las familias de Coleoptera con el mayor número de morfo especies en Colombia. Esta
familia se desarrolla en un amplio rango de hábitats como hojarasca, los troncos en
descomposición, hongos, carroña y el excremento de origen animal además se pueden
encontrar asociados a cuerpos de agua (Navarrete et al., 2002) y algunas especies son
depredadores de artrópodos del suelo (Bohac, 1999). Cumpliendo un importante papel en
las cadenas tróficas de las comunidades de artrópodos, otras especies del grupo son
saprófagas, emplean como alimento la materia orgánica en descomposición animal, vegetal
u hongos (Marinoni et al., 2003). En la zona Alta del parque Cantarrana se encontrò mayor
abundancia de individuos de la familia Staphylinidae con un total de 54 individuos los
78
cuales se asocian con la alta cantidad de hojarasca que presenta la zona, seguido por la zona
media con 18 individuos.
Incluso a pesar de los contrastantes espaciamientos entre las zonas de muestreo la familia
Staphylinidae pueden aprovechar las velocidades del viento para desplazarse y recorrer
grandes distancias a pesar del tamaño de sus alas y su tamaño (Alvarez y Barrera, 2005).
La familia Staphylinidae es representativa en toda el área de estudio del parque Cantarrana,
a su vez ha sido reportada sobre ecosistemas de montaña en la Cordillera Central y
Occidental del país. Según Méndez-Rojas, et al., (2012), en la Reserva Natural La
Sonadora en Calarcá, Quindío, ubicado sobre los 3000 msnm, se ha encontrado bajo
coberturas de bosque alto andino, plantaciones forestales, pastizales, plantaciones forestales
en regeneración, bosque secundario y bosque maduro, siendo más abundante en
plantaciones forestales o en sitios con regeneración y en áreas de bosque, con una mayor
riqueza y diversidad en el bosque secundario gracias a la alta heterogeneidad vegetal en
aquel sitio.
La alta variedad de familias pertenecientes al orden Coleoptera en las zonas Alta y Media
puede explicarse gracias a la presencia de una capa de hojarasca gruesa como se presenta
en estas zonas de estudio, la cual les proporciona un incremento en la disponibilidad de
recursos, y así mismo se convierte en el refugio más adecuado de estos individuos que
prefieren sitios húmedos para reproducirse (Alvarez y Barrera, 2005).
Alvarez y Barrera, (2005) y Smith et al. (2015), describen que los suelos ácidos en
condiciones naturales pueden ser hospederos de gran diversidad de familias y comunidades
de invertebrados, aunque en esta zona el pH no es fuertemente acido, con seguridad este pH
de ácido a neutro ha favorecido la alta diversidad de familias del orden Coleoptera.
El orden Diptera fue otro de los órdenes más abundantes con 912 individuos (51,8 %) ; la
abundancia y riqueza de este orden responde a ambientes húmedos y con abundancia de
detritus, además presenta una relación directa con la cercanía de rellenos sanitarios y la
introducción de materia orgánica a través de basuras y desechos, a su vez la existencia de
fuentes de agua en el área de estudio favorece a la propagación de larvas de estos insectos,
lo cual promueve su crecimiento y densidad poblacional (Amat y Quitiaquez, 1998;
Morales y Amat, 2012).
Lo anterior concuerda con lo obtenido en lugares con cuerpos de agua como el Humedal
Juan Amarillo donde el 45% de todas las especies pertenecen a Diptera (Amat y
Quitiaquez, 1998) asi como en once humedales de la Sabana de Bogotá donde se registró
que el 57% de las especies totales son de Diptera (Amat y Blanco, 2003). En dichos lugares
se observó la presencia de familias como Calliphoridae y Phoridae las cuales se suelen
encontrar en heces de animales, en áreas contaminadas con diferentes tipos de residuos
(agua estancada, alimentos en descomposición) (Subia, 2014).
79
El Parque Ecológico Cantarrana se encuentra cerca del relleno sanitario Doña Juana lo cual
puede haber influido en la abundancia de dípteros encontrados, a su vez a los alrededores
del parque y cercanos a la zona baja se encuentran grandes cuerpos de agua, lo cual explica
que los insectos más abundantes para esta zona corresponden a este orden.
9.3 FAMILIAS POCO REPRESENTADAS EN EL MUESTREO
En el Parque Cantarrana, se encontró poca presencia de individuos del orden Orthoptera,
Sandoval y Fagua (2006) explican que las familias Acrididae y Gryllidae son poco
frecuentes en rangos altitudinales de 2700 a 3000 msnm, pero su ausencia también pudo
estar influenciada con el tipo e intensidad de muestreo realizado.
De acuerdo a Booth, Cox, Madgen (1990) y Cultid, et al. (2012), dentro de las familias
Scarabaeidae, Sciaridae, Curculionidae y Carabidae del orden Coleoptera, existen
individuos de estas familias de hábito trófico coprófago o saprófago u omnívoro siendo
importantes descomponedores de materia orgánica con una permanente actividad al interior
del suelo, que a pesar de encontrarlos en baja densidad en este muestreo con otro tipo de
cebos podría demostrarse su verdadera presencia y papel.
Smith, et al. (2015) en su estudio para examinar indicadores para la evaluación de la
restauración realizada en suelos degradados por la extracción de arcilla, resaltan la alta
abundancia de coleópteros peloteros o coprófagos pertenecientes a la familia Scarabaeidae
de la subfamilia Scarabaeinae, polillas de la familia Crambidae y de la familia
Pheterophoridae, y ortópteros carroñeros de la familia Rhaphydopphoridae; la existencia de
estos individuos en gran cantidad fue un indicador de que las labores de restauración
realizadas hasta el momento eran efectivas. De estos en el Parque Ecológico Cantarrana
solo se reportaron algunos individuos de la familia Scarabaeidae en las zonas Alta y Media,
en dos de los seis transectos, esto puede ser un indicio de que las labores aplicadas en
dichas zonas han sido efectivas, no obstante, se debería realizar un monitoreo a través de
muestreos sucesivos para determinar su abundancia y dinámica en el ecosistema.
9.4 DIVERSIDAD DE INSECTOS Y FLORA
En la literatura disponible para bosque andino en Colombia, aún no hay estudios que
utilicen los órdenes de riqueza q0, q1, q2, por tal motivo nos referimos a los siguientes
estudios, en los cuales se reportan resultados con los valores clásicos de los índices de
diversidad alfa.
Así mismo el esfuerzo, área y técnica de muestreo determinan el nivel de riqueza y
diversidad que se observa en un área específica. Dado que no se cuenta con estudios
similares en el área, se realizan comparaciones con trabajos realizados en áreas
ecológicamente similares y solo como medida de comparación (Tabla 20).
80
Tabla 20. Valores comparativos índices (Simpson, Shannon, Margalef)
FLORA Ín
dic
e
Sim
pso
n
Índ
ice
de
Sh
an
no
n
Índ
ice
Ma
rga
lef
Zona Área estudio Cita
0,78 1,76 2,108 Alta (dominancia de acacia,
presencia de vegetación arbustiva de
bosque andino)
Parque Ecológico Cantarrana Autor
0,75 1,89 2,439 Media (dominancia de acacia,
presencia de vegetación arbustiva de
bosque andino)
0,87 2,40 3,95 Baja (dominancia de vegetación
arbustiva de bosque andino)
0,21 0,98 Pastizal bosque andino del municipio de
Suesca Cundinamarca
(Moreno y
Barrera
2006) 1,85 arbusto abierto con pastos
0,07 2,85 relictos de bosques
0.89 2,87 6.83 bosque primario La Reserva Biológica de
Encenillo, ubicada en Guasca
Cundinamarca,
(Restrepo,
2016) 0.83 2,27 4.57 bosque secundario tardío
INSECTOS
Sim
pso
n
Índ
ice
de
Sh
an
no
n
Índ
ice
Ma
rga
lef
Zona Área estudio Cita
0,78 2,3 6,0 Alta (dominancia de acacia,
presencia de vegetación arbustiva de
bosque andino)
Parque Ecológico Cantarrana Autor
0,84 2,6 6,5 Media (dominancia de acacia,
presencia de vegetación arbustiva de
bosque andino)
0,91 2,9 6,3 Baja (dominancia de vegetación
arbustiva de bosque andino)
3,29 Estratos arbustivos Microcuenca Santa Helena (Rondón,
2007) 3,08 Praderas arbustivas
1,34 Rastrojos
Los valores en el índice de Shannon obtenidos en la zona baja del Parque Ecológico
Cantarrana a nivel de vegetación, puede ser comparable al relicto de bosque alto andino
mencionado por Moreno y Barrera (2006), ya que presentan valores cercanos. Asimismo,
ocurre con lo encontrado con Rondón, (2007) en los índices de Shannon y Simpson para
bosque secundario tardío y bosque primario, donde los valores son cercanos a los obtenidos
en áreas con cobertura arbustiva.
81
A nivel de insectos según lo reporta Rondón, (2007) los valores obtenidos en el índice de
Shannon para praderas arbustivas son cercanos al mismo índice medido en el Parque
Cantarrana en la zona de cobertura arbustiva.
El índice de Shannon-Wienner normalmente toma valores entre 1 y 4.5, donde valores
encima de 3 son típicamente interpretados como diversos (Magurran, 1988), deacuerdo a lo
anterior los valores encontrados en la cobertura arbustiva tanto para insectos como para
flora son los mayores en el area, sin embargo no es posible considerarse como diversos.
El índice de dominancia de Simpson, maneja valores entre 0 y 1, su valor mínimo es 1, el
cual indica que hay ausencia de diversidad por la dominancia de una especie; (Magurran,
1988). El Parque Cantarrana presenta en su cobertura arborea y arbustiva valores bajos en
diversidad y dominancia equitativa entre las especies según el indice de simpson.
En torno a la diversidad verdadera medida para la totalidad del insecto fauna la zona baja
presenta los valores mayores en riqueza presentando 19 y 11 números efectivos de especies
de acuerdo a q1 y q2 respetivamente.
9.5 COMPARACION CON ECOSISTEMAS MAS CONSERVADOS
La entomofauna general encontrada en este estudio mediante trampas pitfall y extracción
con embudos tipo Berlesse, reporta 55,3 % de órdenes y familias insectiles reportadas para
la localidad de Usme en colecciones entomológicas (SDA et al. 2009). Es de anotar que el
esfuerzo de muestreo en este estudio es pequeño, ya que se hizo en una sola ocasión y por
espacio de 8 días, y ese factor se debe considerar al comparar con estudios realizados en
lugares más conservados y con mayores intensidades de muestreo.
En estudios previos en la Localidad de Usme se reconoce a través de colecciones
entomológicas la presencia de familias como Braconidae e Ichneumonidae (Hymenoptera),
Simuliidae (Diptera) y Scarabaeidae (Coleoptera) (SDA et al. 2009). Al comparar con el
muestreo realizado en la Vereda Olarte, se encuentran familias en común como Carabidae,
Latridiidae y Staphylinidae (Coleoptera), pero de esta última se registran 6 morfoespecies
diferentes mientras que en este estudio solo se observó la presencia de una. El orden
Diptera se presentan familias comunes como Chironomidae, Scatopsidae, Sciaridae,
Simuliidae, Drosophylidae y Phoridae, pero su abundancia es baja para la Vereda Olarte.
Del orden Hymenoptera son comunes las familias Braconidae e Ichneumonidae, se
presentan otras familias en la vereda como Aphelinidae, Mymaridae, Platygastridae y
Proctotrupidae. En el orden Hemíptera se presentan las familias Berytidae, Myridae,
Cicadellidae, Cercopidae y Membracidae, de las cuales solo Cercopidae se presentó en el
área de muestreo (SDA et al. 2009), (Ver evaluación en detalle en la tabla 20).
82
Tabla 21. Comparación de la fauna encontrada en el Parque Cantarrana con ecosistemas más conservados.
% d
e
Co
inci
den
cia
Ind
ivid
uo
s
Mo
rfo
esp
ecie
s
/Esp
ecie
s
Fa
mil
ias
Ord
enes
Tra
mp
as
Rep
rese
nta
tiv
ida
d
del
mu
est
reo
Eco
sist
ema
de
Ref
eren
cia
Lu
ga
r
Au
tor
1775 52 42 8
90 80.84%
Bosque
Alto
Andino
Parque
Ecológico
Cantarrana
Autores
912 10 10 Diptera
298 15 19 Coleoptera
85 1 Staphylinidae
70 3 Curculionidae
150 53 12 BOGOTÁ (Andrade y
Amat, 2000)
33,8% 387
61 12
50 94% Areas de
Paramo
Parada del
Viento,
Cordillera
Oriental de
Colombia
(Morales y
Amat 2012)
27,8% 33 5 5 Diptera
65,2% 65 15 4 Coleoptera
0,8% 41 13 Carabidae
2,1% 8 1 Curculionidae
8,3% 32 1 Staphylinidae
31,8%
842 88 50 12
Bosque
Alto
Andino
Cerro Juaica (Chavés, 2010)
6 4 Diptera
13 5 Coleoptera
27,6%
123 64 15
20
Bosque
Alto
Andino
Parque
Entrenubes
(Corporación
Suna Hisca,
2002)
63,1%
10 3 Hymenoptera
64,9%
24 7 Coleoptera
3 Staphylinidae
3 Curculionidae
55,3% 255 97 40 4
Area
Rural
Localidad
Usme
Vereda
Olarte,
Usme
(SDA,2009)
26,1% 35 17 6 Diptera
17,4%
15 12 5 Coleoptera
60 6 Staphylinidae
18 1 Latrididae
63,1% 10 5 2 Hymenoptera
3 2 Braconidae
En áreas del páramo, la Parada del Viento ubicado en la cordillera Oriental de Colombia, se
identificó la diversidad local de la artropofauna epigea de cinco tipos de vegetación
representativos, en contraste con el Parque Cantarrana se observó 33,8% con la diversidad
encontrada allí, aunque se trabajó con 50 trampas de caída en este estudio hallaron más
83
individuos insectiles que en Cantarrana. Morales y Amat, (2012) determinó que el grado de
riqueza de insectos se asociaba a la heterogeneidad florística, los mecanismos de
regeneración y a las fenofases, al igual que en el Parque Cantarrana en la zona baja donde
se observó valores mayores de diversidad de especies vegetales.
Se comparó también en áreas del Parque Entrenubes ubicado dentro de las localidades de
San Cristóbal, Usme y Rafael Uribe (Corporación Suna Hisca, 2002), donde se emplearon
los insectos como herramientas para diagnósticos ecológicos y ambientales, y se instalaron
trampas de caída, trampas Malaisse, golpeteo, jameos sucesivos, revisión de tronco,
necromasa y colecta manual. Entre lo encontrado en este estudio y Cantarrana se observa
27,6 % de coincidencia lo cual debió ser producto a las diferentes estrategias de recolección
mencionadas para encontrar un mayor número de morfoespecies de insectos agrupadas en
64 familias y 15 órdenes.
9.6 INTERRELACIÓN VEGETACIÓN - ENTOMOFAUNA
Las posibles relaciones entre la presencia de fitófagos y las especies vegetales no se
establecieron mediante observación en campo o laboratorio y por ello lo reportado
corresponde a descripciones generales en la literatura ya que para su observación directa es
necesario el uso de otras metodologías y de uso periódico.
De acuerdo con los reportes las especies Acacia melanoxylon, Acacia decurrens,
Caesalpinia spinosa, Dodonaea viscosa y en plantas pertenecientes al género Baccharis y
Myrcianthes podrían tener problemas relacionados con fitófagos si estos alcanzan niveles
poblaciones incontrolados y además favorecer la presencia de especies hematófagas en
vertebrados.
Las plantas pertenecientes al género Baccharis a pesar de su alto poder insecticida, son
capaces de albergar la fauna que más mortalidad ha producido en los neotrópicos, pudiendo
ser hospederas de cerca de 121 especies insectiles portadoras del virus de la gripe y manejar
otras interacciones con insectos (Fernandez et al., 2014). Estas pueden tener agallas en las
hojas, en el tronco, en las flores o en sus yemas apicales por parte de diferentes individuos
pertenecientes de la familia Cecidomyiidae (Diptera), Psyllidae (Hemíptera), Tephritidae
(Diptera), Triozidae (Diptera) o Curculionidae (Coleoptera), entre otros pertenecientes a la
familia Gelechiidae (Lepidoptera) (Fernandez et al., 1996; Fernandez et al., 2014; Vargas,
Pollo et al., 2015).
Se observó la presencia de Cecidomyiidae y Curculionidae dentro de las familias insectiles
encontradas dentro del área de estudio; según Boland, (2016), Euwallacea sp. (Col:
Curculionidae) escarabajo de ambrosia puede atacar especies de plantas pertenecientes a
géneros de Baccharis y Salix causándoles la muerte, por tanto, en caso de encontrar ataque
de estos debe realizarse un manejo oportuno. Houston, et al., (2016) expresa que tantas
especies del género Baccharis y Alnus son vulnerables frente a miembros de la familia
84
Cicadidae. El Hayuelo (Dodonaea viscosa) también es una especie vulnerable a individuos
de la familia Cecidomyiidae ya que estos dañan sus hojas y ramas (Kolesik, 1995).
Aunque no se encontraron abejas en la entomofauna muestreada, se detectó la presencia de
individuos de la familia Pteromalidae, Cecidomyiidae, Curculionidae, Aphididae que
pueden encontrarse relacionados con el canelo (Myrcianthes leucoxyla); de acuerdo a lo
investigado por Caicedo y Pujade-Villar (2017), M. leucoxyla y M. rhopaloides son
especies vulnerables a agallas en sus flores y frutos por la relación que existe entre estas
especies e individuos himenópteros.
M. leucoxyla y M. rhopaloides tienen polinización melitofilica lo cual hace necesaria la
presencia de himenópteros de los géneros Aphis, Bombus y Thygater de la familia
Aphididae y el género Andrena de la familia Andrenidae. En el agallamiento de frutos se
ven involucrados individuos de la familia Eurytomidae, familia Pteromalidae,
Tetrastichinae, Eulophidae, moscas de la familia Cecidomyiidae; algunos organismos
relacionadas al ser fitófagos son: lepidópteros de la familia Tortricidae, especies del género
Conotrachelus (Col: Curculionidae), de Pseudococcus (Hem: Pseudococcidae), entre otros
individuos de las familias Aphididae, Aleyrodidae, Psyllidae y Coccoidae (Caicedo y
Pujade-Villar, 2017).
Con respecto al Dividivi (Caesalpinia spinosa) se describen insectos plaga pertenecientes a
los órdenes Lepidoptera, Diptera, Hemiptera y Orthoptera, entre ellos se destacan los
pulgones de la familia Aphidiidae capaces de alimentarse de hojas, flores, vainas verdes
hasta el tallo; las polillas pertenecientes a la familia Noctuidae se reconocen por sus ataques
sobre la medula del tallo ya que son barrenadoras, las larvas pueden devorar las hojas y los
nuevos brotes (Polo, 2016).
En la familia Leguminosae a la que pertenecen Acacia melanoxylon y Acacia decurrens e
Inga spp. son probablemente plantas hospederas de la familia Cerambycidae, debido a que
las fuertes mandíbulas de estos individuos son capaces de comer cualquier tejido vivo de
estas plantas; estos pueden hacer galerías al interior de los troncos ya sea alrededor de la
base o a lo largo del mismo, las galerías pueden hallarse en forma retorcida al encontrarse
diferentes salidas a lo largo del tronco o recto cuando solo se halla al extremo basal
(Lanuza-Garay et al., 2016). Según Lemes et al., (2013), los escarabajos de la familia
Cerambycidae son capaces de unir ramas y troncos cuando las especies vegetales están
vivas y realizan estas galerías con sus mandíbulas para depositar sus huevos. Además de
esta familia en Acacia decurrens se han encontrado galerías de insectos barrenadores
pertenecientes a las familias Bostrychidae y Scolytidae (Zahid et al, 2013).
McLeish et al, (2013), describe a los thrips (Thysanoptera) del suborden Tubulifera, como
otros organismos parasitadores de especies pertenecientes del género Acacia, con los cuales
se ha demostrado su desarrollo coevolutivo a través de su historia y su desarrollo
filogenético.
85
10. CONCLUSIONES
La diversidad de la entomofauna del Parque Ecológico Cantarrana se considera diversa y
estuvo compuesta por 8 órdenes, 42 familias y aproximadamente 52 morfoespecies. La
diversidad general de la entomofauna muestreada dentro del Parque Cantarrana no se
diferenció significativamente entre las zonas muestreadas, sin embargo, se observa una
tendencia a mayor diversidad en las zonas con vegetación de porte arbustivo e influencia en
la abundancia y equidad de familias entre las zonas muestreadas.
En el parque Cantarrana, principalmente en las zonas con cobertura arbórea y arbustiva,
predominaron las familias Staphylinidae, Forficulidae y Formicidae. En estas familias la
literatura reporta organismos principalmente: saprófagos, fitófagos, depredadores y
omnívoros. Estos podrían considerarse como bioindicadores de procesos de restauración
que se adelanta en esta zona.
La frecuencia y abundancia vegetal fueron las variables que mejor explicaron la
composición de la entomofauna epiedáfica encontrada. Particularmente las familias
Forficulidae y Anisolabidae parecen estar más influenciadas por la frecuencia vegetal,
posiblemente al ser dependientes de la capa orgánica desarrollada en esas zonas.
Existen pocos estudios sobre la composición de la entomofauna epiedáficos en áreas en
proceso de restablecimiento de cobertura vegetal previos en el área. De manera general,
dado que este estudio es principalmente al nivel de familia, se pudo establecer que la
entomofauna del parque Cantarrana presenta 27,6 % de las familias reportadas en relictos
secundarios de bosque alto andino como el Parque Ecológico Entre nubes
11. RECOMENDACIONES
Aumentar el esfuerzo de muestreo, incrementando el número de unidades de
muestreadas de tal forma que sea posible obtener registro de nuevas morfoespecies
características de la zona de estudio permitiendo consolidar un marco de referencia
más preciso.
Desarrollar la identificación insectil a nivel de géneros y especies, que permita una
caracterización más precisa del material biológico muestreado y a su vez contribuya
con un mayor conocimiento del ecosistema de referencia.
86
Considerar la implementación de medidas de restauración mediante la utilización de
prácticas que favorezcan el desarrollo insecto fauna benéfica que cumpla un papel
importante dentro de los procesos ecológicos del bosque andino.
Desarrollar muestreos que cuenten con igual esfuerzo y área de muestra con el fin
de establecer comparaciones entre áreas de restauración y ecosistemas conservados
proyectadas en tiempo real.
Implementar el monitoreo de hormigas, escarabajos coprófagos, estafilínidos y
colémbolos y demás especies con potencial indicador, desarrollando metodologías o
protocolos específicos para su estudio, de tal forma que sea posible establecer
pautas en relación con los procesos de restauración ecológica desarrollados en el
Parque Ecológico Cantarrana.
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8. ANEXOS
ID Unid de M Norte Oeste Altitud Descripción General Cobertura
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Anexo 1 Formato Base para la descripción de unidades de muestreo
I
D
Tram
pa
Tipo de
trampa
Zon
a
Orde
n
Famili
a
Estad
o
No.
Inv.
Identificaci
ón
Observaci
ón
Ver anexos en documento pdf adjuntos al CD
Anexo 2 Formato Base para la identificación de insectos, Entomofauna general.
Ver anexos en documento pdf adjuntos al CD
Anexo 3 Morfoespecies encontradas parque ecológico cantarrana
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Anexo 4 Composición trófica de los individuos encontrados en el Parque Ecológico Cantarrana. XX Muy
frecuente, X Frecuente, xx algunas veces, x rara vez
