Corso di Laurea in Biotecnologie Offerte di Tirocinio · Omeostasi del ferro intraellulare:...

25 settembre 2017 – Giornata dell’ accoglienza

Università degli Studi dell’Insubria

Corso di Laurea in Biotecnologie

Offerte di Tirocinio

Dipartimento di Biotecnologie e Scienze della Vita

21 dicembre 2017

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Presentazione Offerte di Tirocinio del DBSV

21 dicembre 20172

I Laboratori di Ricerca del DBSV

1. piano blu

2. piano verde

3. piano giallo

4. piano rosso


21 dicembre 20173

1. piano bluLaboratorio di biologia degli invertebratiAttività: Processi di morte cellulare nello sviluppo di insetti olometaboli; strategie peril controllo di specie dannose; bioconversione di masse di scarto mediante l'impiego diinsetti.Tecniche utilizzate: microscopia ottica ed elettronica, immunoistochimica, tecniche dibiologia cellulare e molecolare (estrazione di RNA, qPCR, western blot, test diproliferazione e di apoptosi), dosaggi enzimatici.Contatti: Prof. Gianluca Tettamanti


21 dicembre 20174

1. piano blu

Laboratorio di biologia degli invertebrati

Attività: Studio della risposta immunitaria innata utilizzando come modello animale la sanguisuga Hirudo medicinalis. Identificazione e la caratterizzazione di fattori infiammatori che regolano il reclutamento ed il differenziamento dei macrofagi.Tecniche utilizzate: microscopia ottica, elettronica a trasmissione e a scansione, immunoistochimica, istochimica enzimatica, Western blot, utilizzo di biopolimeri per allestimento di colture cellulari.Contatti: Prof.ssa Annalisa Grimaldi

Attività: L’amiloidogenesi come risposta fisiologica all’aumento di specie reattive dell’ossigeno in differenti tipi cellulari (studi in vivo e in vitro) Tecniche utilizzate: analisi TEM,SEM, Confocale, biologia cellulare e molecolare.Contatti: Prof.ssa Magda de Eguileor


21 dicembre 20175

1. piano blu

Laboratorio di genetica molecolare

Attività:

1. Regolazione dell’espressione dell’enzima mitocondriale Prolina Deidrogenasi

(PRODH) e caratterizzazione del suo ruolo nei tumori del polmone non a piccole

cellule (NSCLC);

2. Dosaggio di microRNA circolanti come marcatori per la diagnosi precoce del

cancro al polmone;

3. Studio dell’espressione di recettori TRP e NMDA nel dolore lombare cronico.

Tecniche utilizzate: tecniche di immunoistochimica, biologia cellulare e molecolare

(estrazione di DNA ed RNA, qPCR, digital PCR, saggi di luciferasi, Western blot, ELISA);

Clonaggi; Colture di cellule umane, trasfezioni stabili e transienti, saggi fenotipici su

cellule (proliferazione, apoptosi, invasione, ecc.).

Contatti: Dott.ssa Paola Campomenosi


21 dicembre 20176

Laboratorio di fisiologia cellulare e molecolare

Attività:

Trasportatori di aminoacidi e peptidi: struttura, funzione e regolazione, ruolo

nell’uptake di nutrienti essenziali e negli stati infiammatori. Ruolo delle diverse

isoforme dei trasportatori di nutrienti

Trasporto di D-aminoacidi negli insetti: ruolo e significato

Omeostasi del ferro intracellulare: costruzione di proteine chimeriche per l’analisi

di domini funzionali

Nanoparticelle e membrane – vie di permeazione di membrana

Tecniche utilizzate: Biologia molecolare (estrazioni di DNA/RNA Trascrizione in Vitro,

PCR Mutagenesi, clonaggi, costruzione di vettori di espressione), immunochimica

(immunoistochimica, immunocitochimica, western-blot), elettrofisiologia, microscopia

in fluorescenza, utilizzo di sonde fluorescenti, colture cellulari,

trasfezioni, microiniezione.

Contatti: Prof.ssa Elena Bossi

1. piano blu


21 dicembre 20177

Laboratorio di immunologia e patologia generale

Attività:

1. Ruolo delle cellule Natural Killer nel processo angiogenetico del tumore prostatico

umano.

2. Caratterizzazione fenotipica e funzionale di cellule innate linfoidi periferiche e

tissutali nel carcinoma colon-retto e identificazione di fattori pro-tumorali e pro-

angiogenetici.

3. Risposta di cellule Natural Killer in vitro a liquidi pleurici infiammatori e tumorali.

4. Ruolo in vitro della citolisi anticorpo dipendente delle cellule Natural Killer nella

terapia di tumori.

Tecniche utilizzate: colture primarie di linfociti umani, test funzionali di citotosscità

verso cellule tumorali, test in vitro di morfogenesi, invasione e migrazione di cellule

endoteliali umane, test di proliferaizone cellulare, citofluorimetria a flusso e cell

sorting, RT-PCR e digital PCR.

Contatti: Prof. Douglas Noonan - Dott. Lorenzo Mortara

1. piano blu


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2. piano verde

Laboratorio di biologia cellulare

Attività:

1. Studi sulla tossicità di nanoparticelle (nanotossicologia) usando come modello

sperimentale cellule staminali umane.

2. Preparazione di nanosistemi (nanoparticelle@enzimi; nanoparticelle@antibiotici),

caratterizzazione e saggi di attività

3. Studi sul differenziamento delle cellule staminali da tessuto adiposo ed effetto

paracrino delle stesse.

Tecniche utilizzate: estrazione di DNA e RNA, retrotrascrizione. PCR qualitativa, semiquantitativa e real time, trasformazioni, colture cellulari. Metodi di sintesi e coniugazione delle nanoparticelle, saggi enzimatici.Contatti: Prof. Giovanni Bernardini - Prof.ssa Rosalba Gornati


Laboratorio di biotecnologie vegetali

Attività:

1. Risposta delle piante ai cambiamenti climatici. Studi funzionali in piante

transgeniche. Analisi dei cambiamenti proteomici.

2. Caratterizzazione della risposta molecolare e fisiologica del frumento alla

colonizzazione di funghi micorrizici e batteri simbionti benefici

Tecniche utilizzate: tecniche varie di biologia molecolare (estrazione e manipolazione

di DNA, PCR, trasformazione), colture microbiche e di espianti vegetali; estrazione di

proteine e separazione mediante elettroforesi bidimensionale o gel-free,

identificazione mediante spettrometro di massa ed elaborazione bioinformatica dei

dati

Contatti: Prof.ssa Marcella Bracale - Prof.ssa Candida Vannini

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2. piano verde


Laboratorio di microbiologia ambientale e molecolare (DBSV)

Attività- Terapia fotodinamica antimicrobica: risposta di microrganismi modello allo stress

foto-ossidativo.- Studio di biofilm batterici e di modalità per eradicarli.Tecniche utilizzate: tecniche di base della batteriologia (preparazione terreni, coltivazione batteri, valutazione della concentrazione cellulare e della biomassa, allestimento curve di crescita). Allestimento biofilm batterici e loro visualizzazione mediante microscopia confocale. Tecniche di biologia molecolare (estrazione DNA genomico e plasmidico, clonaggi, PCR, elettroforesi su gel per analisi DNA e proteine, allestimento banche mutanti).Contatti: Prof.ssa Paola Barbieri - Dott.ssa Viviana Orlandi

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2. piano verde


Laboratorio biotecnologie animali

Attività:

Caratterizzazione del microbioma intestinale in modelli animali aquatici mediante la

tecnologia Next-Generation Sequencing del gene 16S rRNA: influenza di fattori

ambientali e nutrizionali sull’abbondanza di taxa batterici in specie ittiche marine e di

acqua dolce.

Influenza della dieta a base di farina di insetto sulla composizione del microbioma

intestinale e sull’espressione di geni coinvolti nel trasporto intestinale di aminoacidi ed

oligopeptidi, in specie ittiche d’acqua dolce.

Influenza di derivati stabili dell’acido butirrico nella dieta di specie ittiche marine sulla

composizione del microbioma intestinale e sull’espressione di geni coinvolti nella

risposta immunitaria e nel metabolismo proteico.

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2. piano verde


Risposta trascrizionale di alcuni geni coinvolti nel metabolismo della metionina in

trote allevate con diete a base di farina di insetto (Tenebrio molitor o Hermetia

illucens).

Influenza di alcune diete sperimentali sull’attività trascrittomica dei geni codificanti

per il trasportatore intestinale di oligopeptidi (PepT1) e di aminoacidi neutri, SLC6A19,

in specie ittiche marine.

Tecniche utilizzate: estrazione automatizzata di DNA genomico e RNA da contenuto e

mucosa intestinale e da vari tessuti animali, clonaggio molecolare, PCR, One Step

Taqman real time, elettroforesi su gel per analisi DNA e proteine, Western blot,

elettroforesi capillare, istologia, microscopia.

Tecniche molecolari innovative: sequenziamento mediante tecnologia Next-

Generation Sequencing del gene 16S rRNA.

Contatti: Prof.ssa Genciana Terova - Dott.ssa Micaela Antonini - Dott.ssa Simona

Rimoldi

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2. piano verde


3. piano giallo

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Laboratorio di post-genomica funzionale e ingegneria proteica

"The Protein Factory"

Attività:

Studio di proteine umane coinvolte nel metabolismo di neuromodulatori e loro

alterazioni in condizioni patologiche (schizofrenia, SLA, patologia di Alzheimer)

• caratterizzazione biochimica delle proteine prodotte in forma ricombinante;

• studi funzionali in linee cellulari – localizzazione subcellulare, modulazione

dell’attività, stabilità (emivita, vie di degradazione), modificazioni II

Studio e ottimizzazione di enzimi di interesse industriale mediante ingegneria proteica

• ottimizzazione dell’espressione ed evoluzione molecolare;

• caratterizzazione biochimica e biocatalisi su substrati di interesse;

• messa a punto di «tool box enzimatici»

Produzione di proteine di interesse terapeutico in linee cellulari di mammifero

• messa a punto delle condizioni di espressione e purificazione;

• studi strutturali e funzionali


3. piano giallo

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Tecniche utilizzate: metodi di biologia molecolare (estrazione e manipolazione di DNA,

PCR, trasformazione, trasfezione), colture microbiche e di cellule animali; purificazione

di proteine, detection (Western blot, immunofluorescenza, immunoprecipitazione);

metodi di biochimica (cromatografie, spettrofotometria, fluorimetria, dicroismo

circolare, dosaggi enzimatici, cinetica allo stato stazionario e prestazionario).

Contatti: Prof. Loredano Pollegioni - Prof. Gianluca Molla - Prof. ssa Silvia Sacchi- Dott.

Luciano Piubelli – Dott.ssa Elena Rosini


3. piano giallo

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Laboratorio di genetica umana

Attività: Caratterizzazione molecolare e funzionale del gene oncosoppressore umano RNASET2.Tecniche utilizzate: clonaggio, PCR standard e real-time, saggi di ibridazione, colture cellulari, trasferimento genico in vitro, test di trasformazione tumorale in vitro, Western blot, saggi di immunofluorescenza su cellule coltivate in vitro.Contatti: Prof. Francesco Acquati


3. piano giallo

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Laboratorio di biologia vegetale

Attività:

1. Studio dei processi di acclimatazione delle piante a livello morfologico-

architetturale, anatomico e molecolare, in risposta a diversi stress di tipo abiotico

(idrico, da alta temperatura e meccanico), soprattutto a livello di sistema radicale.

2. Analisi della produzione di metaboliti secondari in risposta a stress abiotico e

biotico.

Tecniche utilizzate: analisi morfologica 2D e 3D, indagini anatomiche, scambi gassosi

epi- ed ipo-gei, tecniche varie di biologia molecolare, biochimica, elaborazione

statistica dei dati

Contatti: Prof. Antonino Di Iorio


Biotecnologie microbiche e delle fermentazioniAttività: Studi sulla biosintesi (produzione) e sui meccanismi di azione e resistenza di

antibiotici e studio biochimico di alcuni enzimi coinvolti nelle relative vie metaboliche;

sviluppo (ottimizzazione delle condizioni) di fermentazioni per la produzione di

proteine terapeutiche e enzimi industriali da genomica e metagenomica.

Tecniche utilizzate: metodi di biologia molecolare su microrganismi (trasformazioni,

estrazione e manipolazione di DNA, PCR…), crescite di colture microbiche

(fermentazioni). Purificazione, detection (western blot) e caratterizzazione di proteine

(cromatografie, spettrofotometria…). Analisi di metaboliti secondari da brodi di

fermentazione mediante HPLC.

Contatti: Prof.ssa Flavia Marinelli - Dott.ssa Letizia Marcone

3. piano giallo

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Laboratorio di chimica organica - Unità di fotobiologia

Attività: Sintesi di nuovi fotosensibilizzanti appartenenti alla famiglia delle porfirine e dei BODIPY e loro applicazione in vitro nella terapia fotodinamica antitumorale (collaborazione con il laboratorio di Farmacologia antineoplastica di Busto Arsizio –Prof.ssa Monti) e antibatterica (collaborazione con il laboratorio di Microbiologia –Prof.ssa Barbieri)Tecniche utilizzate: sintesi chimica, estrazione con solvente, cromatografia su colonna, HPLC, spettroscopia Uv-vis e di fluorescenza, colture cellulari, microscopia fluorescenza e confocale, colture battericheContatti: Prof. Stefano Banfi - Dott. Enrico Caruso

4. piano rosso

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Laboratorio di farmacologia antineoplastica

Attività:

1. Ruolo del fattore inducibile dall'ipossia nella risposta di cellule tumorali al

trattamento farmacologico

2. Specie reattive dell’ossigeno e transizione epitelio-mesenchimale in cellule

tumorali

3. Modulazione dell’attività delle cellule Natural Killer nella risposta ad anticorpi

terapeutici utilizzati nella terapia dei tumori

4. Ruolo dell'autofagia nella resistenza ai farmaci antitumorali

Tecniche utilizzate: colture in vitro di cellule tumorali, immunofluorescenza, RT-PCR,

metodiche di biochimica e biologia molecolare, citofluorimetria a flusso

Contatti: Prof.ssa Elena Monti - Prof.ssa Marzia Gariboldi

Sede di Busto Arsizio

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Laboratorio di Archeobiologia e biotecnologie forensi

Attività:

1. Indagini di antropologia fisica su resti ossei antichi

2. Sviluppo di metodiche di antropologia identificativa forense (identificazione

generica sui singoli scheletri) direttamente sui siti di rinvenimento: aree di

necropoli e cimiteriali

3. Indagini di archeobotanica, archeozoologia e metodi di datazione relativa in

ambito di contesti archeologici

4. Indagini antropologiche identificative su reperti ossei provenienti da ossari

comuni: ricognizione di ossa frammentarie e ricostruzione del numero minimo di

individui

Tecniche utilizzate: indagini macroscopiche, morfologiche e morfometriche, sui singoli

reperti ossei, lettura analisi tomografiche

Contatti: Prof. Ilaria Gorini, dott.sa Marta Licata

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Laboratorio di Biotecnologie Medico-chirurgiche applicate all’ortopedia e

traumatologia

Attività: studio dei canali TRVP e NRMA nel dolore cronico, neurogenico

Tecniche utilizzate: microscopia ottica ed elettronica, immunoistochimica, tecniche dibiologia cellulare e molecolare (estrazione di RNA, qPCR, western blot).

Contatti: Prof. Michele F. Surace

Attività: studio delle necrosi avascolari della testa del femore

Tecniche utilizzate: microscopia ottica, elettronica a trasmissione e a scansione, immunoistochimica.

Contatti: Prof. Michele F. Surace

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Dove trovare le informazioni:

https://www.uninsubria.it/offertaformativa/biotecnologie

https://www.uninsubria.it/offertaformativa/biotecnologie

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