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- Origine autonoma di replicazione (ORI)

- Geni per la selezione: resistenza ad uno o due antibiotici

- Altri geni per la selezione del plasmide ricombinante

- Siti multiplo di clonaggio

CARATTERISTICHE VETTORE PLASMIDICO DI CLONAGGIO

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oppure elettroporazione

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Piastramentosu terreno con antibiotico

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Selezione per la presenza del vettore: resistenza ad

antibiotico

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Batteriofago lambda 25 20-25 Infezione

VETTORI DI CLONAGGIO PER E. coli

Tipo Dimensioni (kb)

Dimensioni inserto (kb)

Sistemaselezione

Metodointroduzione

Plasmidi

pBR322 4,3 6 2 Antibiotici Trasformazione

pUC 2,1 8 Amp + Lac Z Trasformazione

Fago filamentoso M13 6,4 3 Lac Z Trasfezione

Cosmidi 5-6 35-50 Antibiotico Infezione

Cromosomi artificiali 7 fino a 300 Amp (CM) + Lac Z ElettroporazioneBAC

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Plasmide pBR322

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pBR322: screening dellecolonie ricombinanti

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Vettori plasmidici (pUC18)

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Il gene LacZ codifica per il polipeptide

β-galattosidasi (1021 a.a.)

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•Ceppo di E.coli: gene Lac Z mutante: peptide parziale

•Vettore pUC: gene LacZ mutante: peptide parziale

Complementanoβ-galattosidasi

ATTIVA

•Ceppo di E.coli Lac Z mutante

•Vettore LacZ interrotto dal clonaggio

Non c’è complementazion

e

β-galattosidasiINATTIVA

Terreno + X-Gal

β-galattosidasi

ATTIVA

β-galattosidasi

INATTIVA

Metabolizzato

Non metabolizzato

Colonie Blu

Colonie bianche

X-Gal: 5-Bromo-4-Cloroindolil-β-galattoside (incolore)

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(induttore)

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Metodi di inserimento dei vettori ricombinanti nelle cellule batteriche

Trasformazione: plasmidi (DNA) trasformano cellule procariotiche rese competenti

Infezione: fagi (DNA con capsidi) che lisano il batterio

Trasduzione: cosmidi (DNA con capsidi) che nel batterio si comportano come plasmidi

Trasfezione: come una trasformazione ma con DNA fagico senza capsidiper es: per introdurre la forma replicativa di M13 a doppio filamento

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BATTERIOFAGO LAMBDA COME VETTORE DI CLONAGGIO

Lambda w.t. = 50 KbEstremità “cos” di 12 nt per circolarizzazione

Infezione di E. coli

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Batteriofago lambda

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Batteriofago lambda

Lambda w.t. = 50 Kb

Lambda di sostituzione: eliminati geni ciclo lisogenico, inserti fino a 23 Kb

Clonaggio di frammenti DNA esogeno e packaging in vitro

Infezione

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Formazione di catenani

Creati siti unici per clonaggio

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Fago difettivo (siti cos alterati)non può replicarsi ma produce proteine per i capsidi che possonoessere purificate

Fagi difettivi che da soli non producono capsidi.Le singole proteine possono essere purificate

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CLONAGGIO IN BATTERIOFAGI

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Screening placche di lisiInfezione fagica

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Fago filamentoso

La cellula batterica non viene lisata!

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Fago filamentoso

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Clonaggio in cosmidi

Formazione di catenani

Formazione di colonie

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CROMOSOMI ARTIFICIALI DI BATTERIO (BAC)

Fattore di fertilità F di E. coli ha 3 geni (parA, parB, repE) per la replicazione e per mantenere basso il numero di copie del fattore (1- 2 per cellula)

Gene per la resistenza al cloramfenicolo (per selezione trasformanti)

Siti di clonaggio nel gene LacZ (identificazione ricombinanti per complementazione)

Inserto tra 150 e 350 Kb

Integrazione batterica per elettroporazione

Promotori per la trascrizione (T7 e SP6)

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VETTORI DI CLONAGGIO IN LIEVITO:YAC (YEAST ARTIFICIAL CHROMOSOME)

Saccharomyces cerevisiae: 16 cromosomi da 250 kb a 2 Mb

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Inserto: 300 kb – 1 MbSferoplasting: liticasi

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SUP 4

CEN = CentromeroARS = sequenze autonome di replicazioneTRP1 e URA3 per selezione di molecole con entrambi i bracciURA 3 = gene per un enzima della sintesi dei nucleotidi pirimidiniciTRP1 = gene per un enzima della sintesi del triptofano

SUP 4 = gene per il tRNA per la tirosina che sopprime la mutazione non senso “ochre” nel gene ADE2 del ceppo di lievitoADE2 = gene per la sintesi di adenina: un precursore (fosforibosil amminoimidazolo) che sta a monte nella via biosintetica si accumula e dà colonie rosse

S. cerevisiae (w.t): URA (-), TRP (-), ADE2 (-) per mutazione “ochre”.Nel codone UAU (tyr) nel gene ADE2 si verifica la mutazione “ochre” UAA “non senso” e diventa ADE2(-): l’adenina non viene sintetizzata e si accumula come premetabolita rosso

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S. cerevisiae (w.t): crescono se nel in terreno c’è uracile e triptofano S. cerevisiae (w.t): URA (-), TRP (-), ADE2 (-) per mutazione “ochre” accumulo di premetabolita dell’adenina colonie rosse

YAC con gene SUP 4 = gene per il tRNA con UAA Tyr*SUP 4 integro sopprime la mutazione non senso “ochre” nel gene ADE2 del ceppo di lievito: viene sintetizzata adenina, non c’è accumulo di premetabolita rosso colonie bianche

S. cerevisiae (terreno minimo) + YAC senza inserto (SUP attivo) colonie bianche colonie biancheS. cerevisiae (terreno minimo) + YAC con inserto (SUP inattivo)

colonie rosse

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VANTAGGI E SVANTAGGI DEL CLONAGGIO IN YAC:

- Chimerismo (co-saldatura di più regioni nello stesso YAC)- Instabilità (soprattutto a livello di regioni ripetute)- Co-trasformazione (più di uno YAC per cellula di lievito)

Distribuzione dei cloni in griglieProduzione di filtri con i singoli cloni da utilizzare in screeningAllineamento dei cloni in contigui

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ALLINEAMENTO DI YAC PER CONTENUTO DI STS