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- Origine autonoma di replicazione (ORI)
- Geni per la selezione: resistenza ad uno o due antibiotici
- Altri geni per la selezione del plasmide ricombinante
- Siti multiplo di clonaggio
CARATTERISTICHE VETTORE PLASMIDICO DI CLONAGGIO
T. A. Brown, BIOTECNOLOGIE MOLECOLARI, Zanichelli editore S.p.A Copyright © 2007
oppure elettroporazione
T. A. Brown, BIOTECNOLOGIE MOLECOLARI, Zanichelli editore S.p.A Copyright © 2007
Piastramentosu terreno con antibiotico
T. A. Brown, BIOTECNOLOGIE MOLECOLARI, Zanichelli editore S.p.A Copyright © 2007
Selezione per la presenza del vettore: resistenza ad
antibiotico
Batteriofago lambda 25 20-25 Infezione
VETTORI DI CLONAGGIO PER E. coli
Tipo Dimensioni (kb)
Dimensioni inserto (kb)
Sistemaselezione
Metodointroduzione
Plasmidi
pBR322 4,3 6 2 Antibiotici Trasformazione
pUC 2,1 8 Amp + Lac Z Trasformazione
Fago filamentoso M13 6,4 3 Lac Z Trasfezione
Cosmidi 5-6 35-50 Antibiotico Infezione
Cromosomi artificiali 7 fino a 300 Amp (CM) + Lac Z ElettroporazioneBAC
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
Plasmide pBR322
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
pBR322: screening dellecolonie ricombinanti
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
Vettori plasmidici (pUC18)
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
Il gene LacZ codifica per il polipeptide
β-galattosidasi (1021 a.a.)
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
•Ceppo di E.coli: gene Lac Z mutante: peptide parziale
•Vettore pUC: gene LacZ mutante: peptide parziale
Complementanoβ-galattosidasi
ATTIVA
•Ceppo di E.coli Lac Z mutante
•Vettore LacZ interrotto dal clonaggio
Non c’è complementazion
e
β-galattosidasiINATTIVA
Terreno + X-Gal
β-galattosidasi
ATTIVA
β-galattosidasi
INATTIVA
Metabolizzato
Non metabolizzato
Colonie Blu
Colonie bianche
X-Gal: 5-Bromo-4-Cloroindolil-β-galattoside (incolore)
(induttore)
Metodi di inserimento dei vettori ricombinanti nelle cellule batteriche
Trasformazione: plasmidi (DNA) trasformano cellule procariotiche rese competenti
Infezione: fagi (DNA con capsidi) che lisano il batterio
Trasduzione: cosmidi (DNA con capsidi) che nel batterio si comportano come plasmidi
Trasfezione: come una trasformazione ma con DNA fagico senza capsidiper es: per introdurre la forma replicativa di M13 a doppio filamento
BATTERIOFAGO LAMBDA COME VETTORE DI CLONAGGIO
Lambda w.t. = 50 KbEstremità “cos” di 12 nt per circolarizzazione
Infezione di E. coli
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
Batteriofago lambda
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
Batteriofago lambda
Lambda w.t. = 50 Kb
Lambda di sostituzione: eliminati geni ciclo lisogenico, inserti fino a 23 Kb
Clonaggio di frammenti DNA esogeno e packaging in vitro
Infezione
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Formazione di catenani
Creati siti unici per clonaggio
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Fago difettivo (siti cos alterati)non può replicarsi ma produce proteine per i capsidi che possonoessere purificate
Fagi difettivi che da soli non producono capsidi.Le singole proteine possono essere purificate
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CLONAGGIO IN BATTERIOFAGI
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Screening placche di lisiInfezione fagica
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Fago filamentoso
La cellula batterica non viene lisata!
Fago filamentoso
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
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Clonaggio in cosmidi
Formazione di catenani
Formazione di colonie
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CROMOSOMI ARTIFICIALI DI BATTERIO (BAC)
Fattore di fertilità F di E. coli ha 3 geni (parA, parB, repE) per la replicazione e per mantenere basso il numero di copie del fattore (1- 2 per cellula)
Gene per la resistenza al cloramfenicolo (per selezione trasformanti)
Siti di clonaggio nel gene LacZ (identificazione ricombinanti per complementazione)
Inserto tra 150 e 350 Kb
Integrazione batterica per elettroporazione
Promotori per la trascrizione (T7 e SP6)
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VETTORI DI CLONAGGIO IN LIEVITO:YAC (YEAST ARTIFICIAL CHROMOSOME)
Saccharomyces cerevisiae: 16 cromosomi da 250 kb a 2 Mb
Griffiths et al., GENETICA 6/E, Zanichelli Editore S.p.A. Copyright © 2006
Inserto: 300 kb – 1 MbSferoplasting: liticasi
SUP 4
CEN = CentromeroARS = sequenze autonome di replicazioneTRP1 e URA3 per selezione di molecole con entrambi i bracciURA 3 = gene per un enzima della sintesi dei nucleotidi pirimidiniciTRP1 = gene per un enzima della sintesi del triptofano
SUP 4 = gene per il tRNA per la tirosina che sopprime la mutazione non senso “ochre” nel gene ADE2 del ceppo di lievitoADE2 = gene per la sintesi di adenina: un precursore (fosforibosil amminoimidazolo) che sta a monte nella via biosintetica si accumula e dà colonie rosse
S. cerevisiae (w.t): URA (-), TRP (-), ADE2 (-) per mutazione “ochre”.Nel codone UAU (tyr) nel gene ADE2 si verifica la mutazione “ochre” UAA “non senso” e diventa ADE2(-): l’adenina non viene sintetizzata e si accumula come premetabolita rosso
S. cerevisiae (w.t): crescono se nel in terreno c’è uracile e triptofano S. cerevisiae (w.t): URA (-), TRP (-), ADE2 (-) per mutazione “ochre” accumulo di premetabolita dell’adenina colonie rosse
YAC con gene SUP 4 = gene per il tRNA con UAA Tyr*SUP 4 integro sopprime la mutazione non senso “ochre” nel gene ADE2 del ceppo di lievito: viene sintetizzata adenina, non c’è accumulo di premetabolita rosso colonie bianche
S. cerevisiae (terreno minimo) + YAC senza inserto (SUP attivo) colonie bianche colonie biancheS. cerevisiae (terreno minimo) + YAC con inserto (SUP inattivo)
colonie rosse
VANTAGGI E SVANTAGGI DEL CLONAGGIO IN YAC:
- Chimerismo (co-saldatura di più regioni nello stesso YAC)- Instabilità (soprattutto a livello di regioni ripetute)- Co-trasformazione (più di uno YAC per cellula di lievito)
Distribuzione dei cloni in griglieProduzione di filtri con i singoli cloni da utilizzare in screeningAllineamento dei cloni in contigui
ALLINEAMENTO DI YAC PER CONTENUTO DI STS