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V. REGULACIÓN DEL METABOLISMO PARTE I. REGULACIÓN GENÉTICA EN EL OPERÓN lac Dra. Lilian González Segura

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V. REGULACIÓN DEL

METABOLISMO

PARTE I. REGULACIÓN

GENÉTICA EN EL OPERÓN lac

Dra. Lilian González Segura

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- Comprender la importancia de la regulación

genética como mecanismo para controlar los

niveles de enzimas en la célula.

- Conocer los elementos que integran el operón

de la lactosa.

- Entender el funcionamiento del operón de la

lactosa en presencia y ausencia de este

carbohidrato.

- Conocer el concepto de represión catabólica y

cómo se lleva a cabo.

Objetivos

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Regulación de la expresión génica

De los 4,000 genes presentes en el genoma bacteriano, o de los

100,000 estimados para el genoma humano, únicamente se expresa

una fracción en un momento dado.

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Existen al menos seis puntos potenciales en los que la cantidad de

proteína puede ser regulada:

1) Síntesis del transcrito primario de RNA

2) Procesamiento post-transcripcional del mRNA

3) Degradación del mRNA

4) Síntesis proteica (traducción)

5) Modificación postraduccional de proteínas

6) Degradación proteica.

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Regulación a nivel del inicio de la

transcripción

La regulación a nivel del inicio de la transcripción es la mejor

conocida y parece ser la más común.

Como en todas las rutas biosintéticas, el lugar más eficiente para la

regulación es la primera reacción de la vía. De esta manera, se puede

evitar una biosíntesis innecesaria antes de que se haya invertido

energía.

El inicio de la transcripción también es un punto excelente para

coordinar la regulación de múltiples genes cuyos productos

muestran actividades interdependientes.

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Genes constitutivos (housekeeping)

Son productos génicos que son necesarios siempre y sus genes se

expresan a nivel más o menos constante en prácticamente todas las

células de una especie u organismo.

La expresión constante de un gen, aparentemente no regulada, es

conocida como expresión génica constitutiva.

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Los productos génicos que incrementan su concentración bajo

determinadas circunstancias moleculares. El proceso que da

lugar al incremento de la expresión del gen se denomina

inducción.

Genes inducibles

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Los producto génicos que disminuyen su concentración en

respuesta a una señal molecular.

La disminución en la expresión génica se denomina represión.

Genes reprimibles

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Promotor (P)

Región del DNA, precedente a los genes estructurales, que reconoce

la RNA polimerasa para llevar a cabo la transcripción.

Operador (O)

Región del DNA localizada entre el promotor y el comienzo de los

genes estructurales, que es reconocida por la proteína represora.

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La transcripción está mediada y regulada mediante interacciones

proteína-DNA. El componente central es la RNA polimerasa.

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Existen al menos tres tipos de proteínas que regulan el inicio de la

transcripción por la RNA polimerasa:

1) Factores de especificidad, modifican la especificidad de la

RNA polimerasa para un promotor determinado o grupo de

promotores.

2) Represores que, unidos a un promotor, bloquean el acceso de la

RNA polimerasa, y

3) Activadores, que se unen a zonas cercanas al promotor y

aumentan la interacción RNA polimerasa-promotor.

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Represores

Los represores se unen a sitios específicos del DNA. En procariotas

los sitios de unión para represores se denominan operadores.

La regulación mediante una proteína represora que se une al DNA

bloqueando la transcripción se denomina regulación negativa.

La unión del represor está regulada mediante una señal molecular,

generalmente una molécula pequeña y específica que se une al

represor, induciéndole un cambio conformacional.

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Activadores

La regulación mediada por un activador se denomina regulación

positiva. Los activadores se unen a sitios adyacentes al promotor

reforzando tanto la unión como la actividad de la RNA polimerasa

en ese promotor.

Los sitios de unión para los activadores se encuentran a menudo

adyacentes a promotores que normalmente se unen débilmente, o no

se unen en absoluto a la RNA polimerasa.

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Operón

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Operón

Un conjunto de genes que pueden regular su propia expresión

dependiendo de la presencia o ausencia de un sustrato.

Son comunes los operones que contienen de 2 a 6 genes y que se

transcriben como una unidad; algunos operones contienen 20 o más

genes.

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Muchos de los principios que rigen la regulación de la expresión

génica en bacterias se dedujeron a partir de los estudios sobre la

regulación del metabolismo de la lactosa en E. coli.

El disacárido lactosa puede usarse como única fuente de carbono

para el crecimiento de E. coli.

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En 1960, Francois Jacob y Jacques Monod publicaron un artículo corto en

Proceedings of the French Academy of Sciences demostrando que dos genes

implicados en el metabolismo de la lactosa estaban regulados coordinadamente

mediante un elemento génico adyacente a ellos.

Se trataba de los genes de la β-galactosidasa, que hidroliza la lactosa en glucosa y

galactosa, y la galactósido permeasa, que transporta la lactosa al interior de la

célula. En este artículo se introdujeron por primera vez los términos operón y

operador.

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Operón lac funciona para la utilización de

lactosa como fuente de carbono

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Operón de la lactosa

(Operón lac)

El operón lac incluye los genes de la β-galactosidasa (Z), de la

galactósido permeasa (Y), de la tiogalactósido transacetilasa (A).

Cada uno de los genes está precedido por señales de traducción que

dirigen la unión del ribosoma y la síntesis proteica.

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En ausencia del sustrato lactosa, los genes del operón lac están

reprimidos, y sólo hay unas pocas copias de β-galactosidasa por

célula.

Cuando las células reciben una carga de lactosa, el operón lac se

induce. Una molécula inductora se une a un sitio específico del

represor, originándole un cambio conformacional que provoca su

disociación del operador. El inductor de este sistema no es la lactosa

propiamente dicha sino un isómero de la misma llamado alolactosa.

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Análogos de la lactosa

La mayoría de estos compuestos son galactósidos derivados de la

lactosa, donde la glucosa ha sido sustituida por algún radical o

grupo químico.

IPTG (isopropil-β-D-tio-galactósido)

Fenil-Gal (fenil-β-D-galactosa)

ONPG (orto-nitrofenil-β-D-galactopiranósido)

X-gal (5-bromo-4-cloro-3-indolil-β-D-galactósido)

Alolactosa

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Un inductor del operón lac efectivo y no metabolizable que se usa a

menudo experimentalmente es el isopropiltiogalactósido (IPTG).

Estos inductores no metabolizables permiten la separación de la

función fisiológica de la lactosa como fuente de carbono para el

crecimiento de su función en la regulación de la expresión génica.

IPTG

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El IPTG suele utilizarse como inductor artificial del operón lac, ya

que es capaz de unirse al represor LacI, pero no es un sustrato para

la β-galactosidasa y no puede ser metabolizado por la bacteria.

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Fenil-Gal (fenil-β-D-galactosa)

Es un sustrato de la β-galactosidasa, pero no es un inductor del

operón, ya que es incapaz de unirse al represor LacI. Esto hace

que las cepas bacterianas silvestres sean incapaces de crecer

cuando su única fuente de carbono es fenil-gal. Sólo aquellos

mutantes donde se encuentre ausente el represor LacI podrán

crecer en esta fuente de carbono.

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X-gal (5-bromo-4-cloro-3-indolil-β-D-

galactósido)

Es otro sustrato de la β-galactosidasa que, al ser hidrolizado,

produce un compuesto (indoxil) que en contacto con el aire se

transforma en índigo insoluble, el cual presenta un intenso color

azul.

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Es utilizado como indicador de expresión de la β-galactosidasa en

colonias bacterianas creciendo en placa.

Aquellas colonias que estén expresando la enzima se tornarán de

un color azul más o menos intenso en función de la cantidad de

enzima que estén expresando.

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Alolactosa

Es un isómero de la lactosa y es el verdadero inductor del operón

lac. Mientras que la lactosa es galactosa-(β1-4)-glucosa, la

alolactosa es galactosa-(β1-6)-glucosa.

La lactosa, una vez en el citoplasma bacteriano, es transformada en

alolactosa por la β-galactosidasa.

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ONPG (orto-nitrofenil-β-D-galactopiranósido)

Es un sustrato de la β-galactosidasa que, al ser hidrolizado,

produce un compuesto (ortonitrofenol) que presenta un

intenso color amarillo. El ONPG es muy utilizado en los

ensayos in vitro de β-galactosidasa, en los que se puede

obtener la concentración de β-galactosidasa en función de la

intensidad del color amarillo, medida por absorbancia a una

longitud de onda de 420 nm.

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Permeasa

LacY

lacZlacOlacP

Promotor Genes estructurales

lacY lacAlacI

-Galactosidasa

LacZ

Transacetilasa

LacAProteína reguladora

(represor)

LacI

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Un mecanismo regulador, es el llamado represión por catabolito, ha

evolucionado para mantener reprimidos los genes implicados en el

catabolismo de la lactosa, arabinosa y otros azúcares en presencia de

glucosa incluso cuando estos azúcares secundarios también están

presentes.

El efecto represor de la glucosa está mediado por el cAMP y una

proteína llamada proteína activadora del catabolito, abreviada

CAP.

Modelo de represión catabólica

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Estructura tridimensional del

homodímero CAP

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La CAP y el cAMP están implicados en la regulación coordinada de

muchos operones, principalmente de aquellos que codifican para

enzimas del metabolismo de otros azúcares secundarios como la

galactosa y la arabinosa. Esta red de operones con un regulador

común se denomina regulón.

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