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Máster Universitario en Biotecnología Sanitaria

Curso 2016/2017

Curso 2016/2017

Módulo Asignatura

ECTS

Cará

cter

Organización temporal

Especialidad asociada Semestre

1 Semestre

2

BASES MOLECULARES DE LA ENFERMEDAD

Bases genéticas de la enfermedad 2,5 OBL 1er curso

Bases moleculares y celulares del cáncer

2,5 OBL 1er curso

Bases moleculares del envejecimiento y enfermedades degenerativas

2,5 OBL 1er curso

Bases moleculares y celulares de las enfermedades autoinmune

2,5 OBL 1er curso

Enfermedades metabólicas y riesgos cardiovasculares

2,5 OBL 1er curso

Enfermedades raras 2,5 OBL 1er curso

Métodos prácticos en el estudio y análisis de las patologías

5 OBL 1er curso

Patogenicidad y diagnóstico de la enfermedad infecciosa

5 OPT 1er curso Nuevos Fármacos

TECNOLOGÍA DE DIAGNOSTICO E INVESTIGACIÓN EN BIOMEDICINA

Genómica aplicada 5 OBL 1er curso

Técnicas de fluorescencia para aplicación de biomoléculas

5 OBL 1er curso

Curso 2016/2017

Nanotecnología 5 OPT 1er curso Terapia Celular Nuevos

Fármacos Ómicas aplicadas a la biomedicina 5 OPT 1er curso Nuevos

Fármacos

APLICACIÓN DE LOS ORGANISMOS MODELO EN BIOTECNOLOGÍA SANITARIA

Modelos animales en biotecnología 5 OBL 1er curso 1er curso

Mecanismo de diferenciación tisular y morfogénesis

5 OPT 1er curso Terapia Celular

Regeneración tisular 5 OPT 1er curso Terapia

Celular

ESTRATEGIA DE GENERACIÓN DE NUEVOS FÁRMACOS

Bioingeniería de tejidos 5 OPT 1er curso Terapia

Celular

Terapia celular 5 OPT 1er curso Terapia Celular

Estrategias para la generación de nuevos fármacos

5 OPT 1er curso Nuevos Fármacos

FORMACIÓN PROFESIONAL Y EMPRESARIAL EN BIOTECNOLOGÍA

Iniciativa empresarial y transferencia de tecnología

5 OPT 1er curso Terapia Celular Nuevos

Fármacos

Prácticas en empresas 12 OPT 2º curso

FORMACIÓN INVESTIGADORA EN BIOTECNOLOGÍA

Iniciación a la investigación 12 OPT 2º curso

TRABAJO FIN DE MÁSTER

Trabajo fin de máster 18 TFM 2º curso

Curso 2016/2017

MÁSTER DE BIOTECNOLOGÍA SANITARIA

MATERIA/ASIGNATURA

Bases genéticas de la enfermedad

GUÍA DIDÁCTICA DEL ESTUDIANTE

Curso 2016/2017

FICHA POR ASIGNATURA

1.‐ DEFINICIÓN DE LA ASIGNATURA

Denominación: Bases genéticas de la enfermedad Código: 2103000 Módulo: 1 ‐ Bases moleculares de la enfermedad Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: José Antonio Horcajadas Almansa

Actividades Docentes Nº de Horas1 Créditos Totales:

Clases teórico‐prácticas 18

2,5

Actividad por aula virtual 18

Seminarios ‐

Tutorías 2

Horas de estudio 20

Actividades dirigidas 2

Actividades de evaluación 2.5

TOTAL 62.5

Descriptores: Genética, enfermedad, diagnóstico, terapia

1 Valorar entre 25-30 horas/crédito Curso 2016/2017

2.‐ PROFESORES DE LA ASIGNATURA

Señalar nombre, apellidos, título académico, universidad o centro de procedencia, modo de contacto (un teléfono, correo electrónico, o indicar ‘Aula virtual’), y número de créditos que imparte.

Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos José Antonio

Horcajadas Almansa

Doctor UPO / Genética Aula virtual 2.5

/ créditos

/ créditos

/ créditos

3.‐ PROGRAMA DE LA ASIGNATURA

DATOS ESPECÍFICOS DE LA ASIGNATURA

1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Sepuede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga.

Una parte importante de la biotecnología sanitaria reside en el diagnótico genético y en el desarrollo de nuevas terapias que se pueden desarrollar para paliar las consecuencias de las enfermedades de origen genético.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará losconocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios).

Los alumnos deben tener conocimientos basicos de genetica para lo que deben tener superada la asignatura Biologia. Ademas, es conveniente que hayan superado la asignatura de Bioquimica.

Curso 2016/2017

3. COMPETENCIAS3.1 GENÉRICAS O TRANSVERSALES. Conjuntamente con otras materias contribuyen a desarrollar en el alumnado el perfil profesional concreto. Se trabajarán en todas las asignaturas que componen el programa de estudio. Están relacionadas con actitudes y valores (saber ser y saber estar) y con los procedimientos (saber hacer). Se han de indicar, como máximo 6 competencias genéricas. Se seleccionarán aquéllas más relacionadas con los objetivos de nuestra materia.

Competencias relacionadas con el máster:

Demostrar una buena capacidad de comprender y criticar la literatura científica relacionadacon la Biotecnología sanitaria

Demostrar una buena capacidad de acceder por búsquedas electrónicas en bases de datos a laliteratura científico‐técnica

Conocer las bases moleculares de procesos biológicos básicos y su aplicación en Biotecnologíasanitaria

Elija un elemento. Elija un elemento.

Otras competencias genéricas:

Capacidad para diseñar, gestionar y ejecutar una tarea de forma personal

Poseer y comprender los conocimientos impartidos en el programa

Integrarse y colaborar de forma activa en la consecución de objetivos comunes con otraspersonas, áreas y organizaciones, en contextos tanto nacionales como internacionales

3.2 ESPECÍFICAS: están relacionadas con los conocimientos, actitudes, y habilidades propios de la asignatura. Se definirán a partir de la formulación de los objetivos que se pretenden conseguir en la materia. (por favor, consultar el documento de competencias de cada módulo del máster) Se han de indicar, como máximo 3 competencias específicas en cada uno de los ámbitos.

o Cognitivas (Saber):o Procedimentales/Instrumentales (Saber hacer):o Actitudinales (Saber ser y estar):

Diseñar estrategias para la identificación de mutaciones causantes de enfermedad en humanos

Identificar y describir los cambios genéticos y celulares que se producen en la progresión delcáncer

Identificar los recursos moleculares y bioquímicos para la evaluación, diagnóstico, seguimiento,pronóstico y tratamiento de los pacientes y familiares afectados por enfermedades raras

Diseñar estrategias de investigación en las enfermedades descritas, utilizando las técnicas y losorganismos modelos más apropiados

Identificar los modelos animales y celulares adecuados para el estudio de las enfermedadesdescritas en el módulo

Identificar las técnicas moleculares o bioquímicas adecuadas para el diagnóstico y seguimientode las distintas enfermedades descritas en el módulo

Curso 2016/2017

3.3. RESULTADOS DE APRENDIZAJE Se incluirán un máximo de diez, enumerándose sin ningún tipo de clasificación. Se deben relacionar con las competencias específicas. (por favor, consultar ‘resultados de aprendizaje’ de cada módulo en el documento de competencias del máster)

Conocer la base de la enfermedad hereditaria

Conocer las estrategias para la identificación de las mutaciones

Conocer los fundamentos básicos moleculares y celulares de las diferentes enfermedadesestudiadas en el módulo

Conocer e identificar las causas, el origen y la progresión de las diferentes enfermedadesestudiadas en el módulo

Conocer las más actuales técnicas utilizadas para el diagnóstico de estas enfermedades

Conocer y utilizar las más actuales fuentes de información científico‐técnicas sobre el tema

Expresarse de forma escrita y oral adecuadamente utilizando términos científicos relacionadoscon la asignatura

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA

4.1. NÚMERO DE HORAS DE TRABAJO DEL ESTUDIANTE: Se consignarán las horas (número aproximado) de trabajo del alumnado en cada uno de los grandes apartados.

Nº de Horas:

Clases Teóricas*: 18

Clases Prácticas*:

Exposiciones y Seminarios*: 2

Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 2A) Colectivas*:B) Individuales:

Realización de Actividades Académicas Dirigidas: 2A) Con presencia del profesor*:B) Sin presencia del profesor:

Otro Trabajo Personal Autónomo:A) Horas de estudio: 20B) Preparación de Trabajo Personal:C) ......:

Realización de Exámenes: 2,5A) Examen escrito:B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal):

4.2. TÉCNICAS DOCENTES (señale con una X las técnicas que va a utilizar en el desarrollo de su asignatura. Puede señalar más de una. También puede sustituirlas por otras):

Sesiones académicas teóricas: Exposición y debate: Tutorías especializadas:

Sesiones académicas prácticas: Visitas y excursiones: Controles de lecturas obligatorias:

Otros (especificar):

DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…)

Curso 2016/2017

5.‐ BLOQUES TEMÁTICOS

Se presentarán los contenidos temáticos que se trabajarán en la asignatura para lograr las competencias específicas formuladas.

6.‐ HORARIO DE CLASE. TEORÍA, PRÁCTICA Y TUTORIAS Se recomienda usar el calendario del Aula Virtual de la asignatura, o el calendario general del máster. Incluir aquí las horas de las clases teóricas, prácticas, tutorias y/o seminarios en general. Sólo indicar las horas, y no las fechas, a no ser que estas últimas cambien de semana en semana.

Calendario del máster:

http://bit.ly/ITYfKs

Introducción Citogenética Genética Mendeliana Genómica Bases Moleculares de las enfermedades genéticas Prevención de enfermedades genéticas

Curso 2016/2017

7.‐ BIBLIOGRAFÍA Y OTROS RECURSOS DOCENTES

Recogerá sólo las obras más significativas de la materia correspondiente, indicando un máximo de 15 reseñas, y tratando de integrar obras clásicas con las últimas aportaciones. Las citas se unificarán siguiendo el estilo de la APA: Ej: Pérez Gómez, A. (1998). La cultura escolar en la sociedad neoliberal. Madrid: Morata.

7.1. BIBLIOGRAFÍA OBLIGATORIA:

Genéticamédica. Jorde,L.B./Bamshad,M.J./White,R.L./Carey, J.C.3ªed.©2004.Editadopor:ELSEVIER

EMERY.Elementosdegenéticamédica.Turnpenny,P.D./Ellard, S.13 ªed.©2009 .Editadopor:ELSEVIER

THOMPSON & THOMPSON. Genética en medicina Nussbaum, R.L. 7 ª ed. © 2008 Editado por:ELSEVIER‐MASSON

Anatomíapatológica.PardoMindán,F.J.1ªed.©1996.Editadopor:ELSEVIER

7.2. BIBLIOGRAFÍA RECOMENDADA:

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN

Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes.

La evaluación de la asignatura que forman la materia se hará de forma continua y se valorarán todas las actividades formativas realizadas durante el periodo de impartición de la materia, es decir, conceptos y procedimientos transmitidos por el profesor a través de clases magistrales, realización de ejercicios individuales o en equipo, realización de trabajos, presentación oral y defensa de trabajos y proyectos. La valoración de cada tipo de actividad se hará en función de la dedicación definida para cada una de ellas, todo ello dentro del período que comprende la materia.

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Bases moleculares y celulares del cáncer


Curso 2016/2017



Denominación: Bases moleculares y celulares del cáncer Código: 2103001 Módulo: 1‐Bases moleculares de la enfermedad Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Rafael Rodríguez Daga



2.5

Actividad por aula virtual 8.75

Seminarios

Tutorías 2,5

Horas de estudio 38.75

Actividades dirigidas

Actividades de evaluación 2,5

TOTAL 62,5

Descriptores: Control de la proliferación celular (control del ciclo celular). Mecanismos de supervivencia o "check‐points".Señales mitogénicas en células animales. Mutaciones que conducen al cáncer: (Oncogenes y genes supresores de tumores. Inestabilidad genética y cáncer. Activación de p53, daño en DNA y apoptosis). Telómeros y la inestabilidad estructural de los cromosomas. Cambios metabólicos, efecto Warburg. Inducción de los sistemas de protección. Sistemas antiapoptóticos, sistemas antioxidantes, sistemas detoxificantes y resistencias a drogas. Evolucion de un tumor desde una célula sana hasta la metástasis. Mecanismos celulares de la metástasis. Angiogénesis. Estrategias antitumorales. Susceptibilidad genética y resistencia a drogas anticancerígenas. Diagnóstico y tratamiento personalizado del cáncer. El ambiente y el cáncer (prevención).




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Rafael Rodríguez Daga Profesor Titular Universidad Pablo de Olavide

/ Genética

[email protected]

954 977551

1.5

José Antonio Sánchez

Alcazar

Profesor Titular Universidad Pablo de Olavide

/ Biología celular

[email protected] 1

/ créditos

/ créditos



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Sepuede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga.

La asignatura "Bases moleculares y celulares del Cáncer" aporta al estudiante una visión de las causas genéticas y ambientales que dan lugar a la formación de un tumor, además de una visión exahustiva de los mecanismos moleculares que poseen las células para controlar su tasa de proliferación y la fidelidad y robustez del propio proceso de división celular. Se mostraran los principales factores cuya mutación confiere una mayor susceptibilidad a sufrir un tumor, asi como, algunas de las estrategias terapeuticas en lucha contra contra el cáncer y de su tratamiento personalizado. En esta asignatura se pretende formar al estudiante: primero, en los mecanismos de control de la división celular, segundo, en las causas que provovan una desregulación de la división celular y que resulta en la formación de un cáncer, tercero, en los factores de los que depende el grado de malignidad de los tumores como su capacidad metastasica, cuarto, el uso de agentes aniproliferativos y la respuesta celular a los mismos como son la activación de la apoptosis o muerte celular controlada y la activación de mecanismos de detoxificación celular.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará losconocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios).

Los estudiantes deben tener conocimientos de Genética molecular y Biología Celular

Curso 2016/2017

3. COMPETENCIAS 3.1 GENÉRICAS O TRANSVERSALES. Conjuntamente con otras materias contribuyen a desarrollar en el alumnado el perfil profesional concreto. Se trabajarán en todas las asignaturas que componen el programa de estudio. Están relacionadas con actitudes y valores (saber ser y saber estar) y con los procedimientos (saber hacer). Se han de indicar, como máximo 6 competencias genéricas. Se seleccionarán aquéllas más relacionadas con los objetivos de nuestra materia. Competencias relacionadas con el máster:

Poseer y comprender conocimientos

Capacidad para aprender a trabajar de forma autónoma

Capacidad para resolver problemas

Aplicación de conocimientos


Demostrar una buena capacidad de acceder por búsquedas electrónicas en bases de datos a la literatura científico‐técnica

Identificar los mecanismos de control del ciclo celular

Identificar y describir los cambios genéticos y celulares que se producen en la progresión del cáncer desde una célula sana hasta los procesos de angiogénesis y cáncer, así como los mecanismos de defensa que utiliza el organismo contra este tipo de procesos


o Cognitivas (Saber): o Procedimentales/Instrumentales (Saber hacer): o Actitudinales (Saber ser y estar):

Diseñar estrategias para la identificación de mutaciones causantes de enfermedad en humanos




Conocer los fundamentos básicos moleculares y celulares del cáncer

Conocer e identificar las causas, el origen y la progresión del cáncer

Conocer y utilizar las más actuales fuentes de información científico‐técnicas sobre el cáncer

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA

4.1. NÚMERO DE HORAS DE TRABAJO DEL ESTUDIANTE: Se consignarán las horas (número aproximado) de trabajo del alumnado en cada uno de los grandes apartados.

Nº de Horas:


Clases Prácticas*:

Exposiciones y Seminarios*:

Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales):A) Colectivas*:B) Individuales:

Realización de Actividades Académicas Dirigidas:A) Con presencia del profesor*:B) Sin presencia del profesor:

Otro Trabajo Personal Autónomo:A) Horas de estudio: 20B) Preparación de Trabajo Personal: 18,75C) docencia virtual : 8,75

Realización de Exámenes:A) Examen escrito: 2.5B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal):


Sesiones académicas teóricas: Exposición y debate: Tutorías especializadas:

Sesiones académicas prácticas: Visitas y excursiones: Controles de lecturas obligatorias:



4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) La asignatura se impartira en español en su totalidad. Las lecturas serán en Inglés.

Curso 2016/2017

5.‐ BLOQUES TEMÁTICOS

Se presentarán los contenidos temáticos que se trabajarán en la asignatura para lograr las competencias específicas formuladas.

Bloque I (Prof. Resp.: Rafael Rodríguez Daga)

Mecanismos de control del ciclo celular. El huso mitotico. Mecanismos de supervivencia o "check-points". Oncogenes y genes supresores de tumores. Inestabilidad genética y cáncer. Activación de p53. Telómeros y la inestabilidad estructural de los cromosomas.

Bloque II (Prof. Resp.: José Antonio Sánchez Alcazar)

Cambios metabólicos, efecto Warburg. Inducción de los sistemas de protección. Apoptosis y cancér. Sistemas antiapoptóticos, sistemas antioxidantes, sistemas de dotoxificantes y resistencias a drogas. Autofagia y cáncer Evolucion de un tumor desde una célula sana hasta la metástasis. Mecanismos celulares de la metástasis. Angiogénesis. Estrategias antitumorales. Susceptibilidad genética y resistencia a drogas anticancerígenas. Diagnóstico y tratamiento personalizado del cáncer. El ambiente y el cáncer (prevención).

Curso 2016/2017


Calendario del máster:

http://bit.ly/ITYfKs

Curso 2016/2017

7.‐ BIBLIOGRAFÍA Y OTROS RECURSOS DOCENTES Recogerá sólo las obras más significativas de la materia correspondiente, indicando un máximo de 15 reseñas, y tratando de integrar obras clásicas con las últimas aportaciones. Las citas se unificarán siguiendo el estilo de la APA: Ej: Pérez Gómez, A. (1998). La cultura escolar en la sociedad neoliberal. Madrid: Morata.


David O. Morgan. “The cell cycle control. Principles of control”. Oxford University Press 2007

Apoptosis and cancer : methods and protocols / edited by Gil Mor and Thomas J. Rutherford

Totowa (New Jersey) : Humana Press, 2007

Weinberg, Robert A. (Robert Allan), Título The biology of cancer / Robert A. Weinberg

Publicación New York : Garland Science, cop. 2007


1. The first 30 years of p53: growing ever more complex. Arnold J. Levine & Moshe Oren. Nature Reviews Cancer 9, 749‐758 (October 2009).

2. Boveri revisited: chromosomal instability, aneuploidy and tumorigenesis. Holland AJ, Cleveland DW. Nat Rev Mol Cell Biol. 2009 Jul;10(7):478‐87.

3. G2 checkpoint abrogators as anticancer drugs. Kawabe T. Mol Cancer Ther. 2004 Apr;3(4):513‐9. Nat Clin Pract Oncol. 2006 Jul;3(7):388‐98.

4. Drug insight: cancer therapy strategies based on restoration of endogenous cell death mechanisms. Reed JC. NATURE CLINICAL PRACTICE ONCOLOGY 2006 VOL 3.

5. Chfr acts with the p38 stress kinases to block entry to mitosis in mammalian cells.Matsusaka T, Pines J. J Cell Biol. 2004 Aug 16;166(4):507‐16.

6. Defining 'chromosomal instability'. Geigl JB, Obenauf AC, Schwarzbraun T, Speicher MR. Trends Genet. 2008 Feb;24(2):64‐9.

7. Whole chromosome instability and cancer: a complex relationship. Ricke RM, van Ree JH, van Deursen JM. Trends Genet. 2008 Sep;24(9):457‐66.

8. The G2 p38‐mediated stress‐activated checkpoint pathway becomes attenuated in transformed cells. Mikhailov A, Patel D, McCance DJ, Rieder CL. Curr Biol. 2007 Dec 18;17(24):2162‐8.

9. p53 and E2f: partners in life and death. Polager S, Ginsberg D. Nat Rev Cancer. 2009 Oct;9(10):738‐48.

10. The spindle assembly checkpoint. Varetti G, Musacchio A. Curr Biol. 2008 Jul 22;18(14):R591‐5.

11.The spindle‐assembly checkpoint in space and time. Musacchio A, Salmon ED. Nat Rev Mol Cell Biol. 2007 May;8(5):379‐93.

12. The common biology of cancer and ageing. Finkel T, Serrano M, Blasco MA. Nature. 2007 Aug 16;448(7155):767‐74.

13. Evolving views of telomerase and cancer. Blasco MA, Hahn WC.

Trends Cell Biol. 2003 Jun;13(6):289‐94.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. La evaluación de todas las asignaturas que forman la materia se hará de forma continua y se valorarán todas las actividades formativas realizadas durante el periodo de impartición de la materia, es decir, conceptos y procedimientos transmitidos por el profesor a través de clases magistrales, realización de ejercicios individuales o en equipo, realización de prácticas de laboratorio, realización de proyecto semestral POPBL*, presentación oral y defensa de trabajos, exámenes y proyectos POPBL*. La valoración de cada tipo de actividad se hará en función de la dedicación definida para cada una de ellas, todo ello dentro del período que comprende la materia.

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Bases moleculares del envejecimiento y enfermedades degenerativas


Curso 2016/2017



Denominación: Bases moleculares del envejecimiento y enfermedades degenerativas Código: 2103002 Módulo: 1 ‐ Bases moleculares de la enfermedad Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Guillermo López Lluch



2,5


Seminarios 6

Tutorías 2.5

Horas de estudio 30


Actividades de evaluación 4

TOTAL 62.5

Descriptores: Teorías del envejecimiento: Estrés oxidativo. Resistencia a estrés. Concepto de hormesis. Longevidad: restricción calórica. Envejecimiento en levaduras: longevidad cronológica, longevidad replicativa. Senescencia replicativa en células de mamíferos: telómeros y telomerasas. Estudio del envejecimiento en organismos pluricelulares: C. elegans, Drosophila y mamíferos. Envejecimiento y longevidad en humanos. Progeria. Genes ligados a longevidad. Estrategias antienvejecimiento: ejercicio físico y mental, restricción calórica y sus miméticos. Enfermedad degenerativa: Causas y progresión. de las enfermedades degenerativas. Parkinson, Alzheimer, Huntington, Ataxias. Enfermedades neuromusculares.




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Guillermo López Lluch Titular de

Universidad

Universidad Pablo de Olavide

/ Biología Celular

[email protected] 1.5

Manuel Jesús Muñoz

Ruiz

Titular de

Universidad


/ Genética

[email protected] 1

/ créditos

/ créditos



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga.

El envejecimiento y las enfermedades degenerativas que se le asocian es uno de los campos de investigación más novedosos y con mayor repercusión en la actualidad. La problemática del envejecimiento de la población y el incremento de la dependencia de las personas a edades avanzadas con el consiguiente empeoramiento de la capacidad física suponen uno de los grandes retos de la medicina preventiva y de las políticas sociales. La biotecnología y el desarrollo de nuevas terápias y fármacos específicos para disminuir el desgaste celular que acompaña al envejecimiento supondrán en el futuro cercano uno de los más importantes focos de investigación.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Es conveniente tener conocimientos previos en Biología celular, Bioquímica y Genética. Se recomienda igualmente tener capacidades básicas en navegación por internet y consulta de bases de datos de información científica y plataformas de editoriales.

Curso 2016/2017


Describir, cuantificar, analizar y evaluar de forma crítica los resultados experimentales obtenidos de forma autónoma, proponer hipótesis y ponerlas a prueba


Demostrar una buena capacidad de comprender y criticar la literatura científica relacionada con la Biotecnología sanitaria

Conocer y saber emplear correctamente la metodología científico‐técnica básica de uso común en Biotecnología Sanitaria

Conocer las bases moleculares de procesos biológicos básicos y su aplicación en Biotecnología sanitaria



Ser capaz de utilizar las Técnicas de Información y Comunicación (TICs) como una herramienta para la expresión y la comunicación, para el acceso a fuentes de información, como medio de archivo de datos y documentos, para tareas de presentación, para el apr

Ser capaces de integrar conocimientos y enfrentarse a la complejidad de formular juicios a partir de una información que, siendo incompleta o limitada, incluya reflexiones sobre las responsabilidades sociales y éticas vinculadas a la aplicación de sus cono



Conocer las diferentes teorías relacionadas con el envejecimiento.

Conocer y entender el fundamento de los diferentes procedimientos utilizados para el estudio de la longevidad en diferentes especies.

Saber exponer en público ideas y comentarios de una forma técnicamente aceptable.

Conocer las diferentes terapias más actuales antienvejecimiento y su fundamento científico.

Curso 2016/2017


Conocer los fundamentos básicos moleculares y celulares del envejecimiento y las enfermedades degenerativas.

Conocer e identificar las causas, el origen y la progresión del envejecimiento y de las enfermedades asociadas a éste.

Conocer e identificar las causas, el origen y la progresión de las enfermedades degenerativas.

Conocer las técnicas y modelos utilizados en los estudios de longevidad.

Conocer y utilizar las fuentes de información sobre envejecimiento.

Expresarse de forma escrita y oral adecuadamente utilizando los términos científico‐técnicos relacionados con esta asignatura.

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA

4.1. NÚMERO DE HORAS DE TRABAJO DEL ESTUDIANTE: Se consignarán las horas (número aproximado) de trabajo del alumnado en cada uno de los grandes apartados. Nº de Horas:


Clases Prácticas*:


Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 2.5 A) Colectivas*: B) Individuales: 2.5

Realización de Actividades Académicas Dirigidas: A) Con presencia del profesor*: B) Sin presencia del profesor:

Otro Trabajo Personal Autónomo: A) Horas de estudio: 15 B) Preparación de Trabajo Personal: 15 C) ......:

Realización de Exámenes: 4 A) Examen escrito: 0 B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal):


Sesiones académicas teóricas: Exposición y debate:

Tutorías especializadas:

Sesiones académicas prácticas:

Visitas y excursiones:

Controles de lecturas obligatorias:


DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias Mediante la sugerencia de una serie de artículos de índole científica relacionados con la asignatura los estudiantes realizarán seminarios en grupos de tres para mostrar al docente y a sus compañeros su trabajo específico sobre el tema propuesto. La evaluación de estos seminarios será realizada tanto por el docente como por los compañeros de los estudiantes.

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Inglés (Bibliografía).

Curso 2016/2017

5.‐ BLOQUES TEMÁTICOS Se presentarán los contenidos temáticos que se trabajarán en la asignatura para lograr las competencias específicas formuladas.

6.‐ HORARIO DE CLASE. TEORÍA, PRÁCTICA Y TUTORIAS Se recomienda usar el calendario del Aula Virtual de la asignatura, o el calendario general del máster. Incluir aquí las horas de las clases teóricas, prácticas, tutorias y/o seminarios en general. Sólo indicar las horas, y no las fechas, a no ser que estas últimas cambien de semana en semana. Calendario del máster: http://bit.ly/ITYfKs

• 1.- Teorías del envejecimiento. • 2.- Envejecimiento y estrés: concepto de hormesis. • 3.- Envejecimiento en organismos modelo: Levaduras: longevidad cronológica, longevidad replicativa. Senescencia replicativa en células de mamíferos: telómeros y telomerasas. Estudio del envejecimiento en organismos pluricelulares: C. elegans, Drosophila y mamíferos. • 4.- Envejecimiento y longevidad en humanos. Progeria. Genes ligados a longevidad. Estrategias antienvejecimiento: ejercicio físico y mental, restricción calórica y sus miméticos. • 5.- Enfermedad degenerativa: Causas y progresión. de las enfermedades degenerativas. Parkinson, Alzheimer, Huntington, Ataxias. Enfermedades neuromusculares.

Curso 2016/2017




HeinzD.Osiewacz.Agingoforganisms.KluwerAcademicPublishers, 2003. RichardAspinall.Agingoftheorgansandsystems.KluwerAcademicPublishers.2003. YvonneABarnett,ChristopherR.Barnett.Agingmethodsandprotocols.HumanaPress,2000. Sunil C. Kaul, Renu Wadwa. Aging of cells in and outside the body. Kluwer Academic Publishers, 2003.

Trygve O. Tollefsbol. Biological aging: methods and protocols. Humana Press, 2007.

Leonard Guarente, Linda Partridge y Douhlas Wallace. Molecular Biology of aging. Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2007.

Helaine M. Alessio, Ann E. Hagerman. Oxidative stress, exercise and aging.World Scientific Publ. 2006. Libro electrónico.

Suresh I. S. rattan. Modulating aging and longevity. Kluwer Acaedemic Publishers, 2003.

Thomas von Zglinicki. Aging at the molecular level. Kluwer, 2003.

Revistas de acceso electrónico desde la Universidad Pablo de Olavide: Aging cell, Experimental Gerontology, AGE, Journal of Gerontology, etc.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. Participación presencial y virtual (10%). Tests y pruebas virtuales parciales (40%). Seminarios (50%).

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MATERIA/ASIGNATURA

Bases moleculares y celulares de las enfermedades autoinmunes


Curso 2016/2017



Denominación: Bases moleculares y celulares de las enfermedades autoinmunes Código: 2103003 Módulo: 1 ‐ Bases moleculares de la enfermedad Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Guillermo López Lluch



2,5


Seminarios 6

Tutorías 2.5

Horas de estudio 30



TOTAL 62.5

Descriptores: Fundamentos básicos del funcionamiento del sistema inmune: tipos de inmunidad, diferenciación celular, linajes celulares, funciones específicas de cada linaje, inmunoglobulinas, citoquinas, coordinación del sistema inmune, etc... Orígenes de las enfermedades autoinmunes. Enfermedades autoinmunes sistémicas. Artritis reumatoide. Esclerosis sistémica. Síndrome antifosfolipídico. Lupus eritrematosus. Enfermedades autoinmunes específicas de órganos. Granulomatosis de Wegener. Anemia hemolítica autoinmune. Enfermedad de Crohn. Cirrosis primaria biliar. Autoinmunidad y piel: Pénfigo. Autoinmunidad y sistema nervioso: esclerosis múltiple y encefalomielitis. Autoinmunidad y hormonas: enfermedad de Adison, Diabetes mellitus. Autoinmunidad inducida por infección bacteriana: Fiebre reumática. Marcadores de enfermedades autoinmunes: autoantígenos. Terapias frente a las enfermedades autoinmunes.




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Guillermo López Lluch Titular de

Universidad


/ Biología celular


/ créditos

/ créditos

/ créditos




Las características de las enfermedades autoinmunes hacen de estas enfermedades uno de los principales objetivos de estudio en la medicina moderla. La comprensión y entendimiento de los mecanismos implicados en el funcionamiento anómalo del sistema inmunitario del invididuo permitirá diseñar terapias encaminadas a prevenir y a tratar la progresión de estas enfermedades. Muchas de estas enfermedades acaban afectando a un amplio espectro de la población. Entre ellas encontramos la diabetes o la artrosis enfermedades crónicas que acaban afectando de manera importante al individuo.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Es conveniente tener conocimientos previos en Biología celular, Bioquímica y en Inmunología. Sobretodo, se deben tener conocimientos en interaccion receptor‐ligando, rutas de señalización y mecanismos de señalización intra e intercelular. Se recomienda igualmente tener capacidades básicas en navegación por internet y consulta de bases de datos de información científica y plataformas de editoriales.

Curso 2016/2017






Elija un elemento. Otras competencias genéricas:


Poseer los conocimientos, habilidades y actitudes que posibilitan la comprensión de nuevas teorías, interpretaciones, métodos y técnicas dentro de los diferentes campos disciplinares, conducentes a satisfacer de manera óptima las exigencias profesionales




Conocer los fundamentos básicos moleculares y celulares de las enfermedades autoinmunes.

Conocer e indentificar las causas, el origen y la progresión de las diferentes enfermedades autoinmunes

Conocer las técnicas actuales para el diagnóstico de las enfermedades autoinmunes.

Conocer y utilizar las fuentes de información más actuales sobre inmunología.

Expresarse de forma escrita y oral adecuadamente utilizando términos científicos relacionados con la inmunidad.

Curso 2016/2017


Conocer los fundamentos del funcionamiento del sistema inmunológico.

Conocer y entender los orígenes y fundamentos de las enfermedades autoinmunes.

Conocer los diferentes tipos de enfermedades autoinmunes y su clasificación.

Conocer los últimos avances en la Terapia para el tratamiento de las enfermedades autoinmunes.

Desarrollar habilidades para la consulta de información bibliográfica relacionada con la Inmunidad.

Exponer públicamente las opiniones y c onocimientos adquiridos sobre un determinado tema relacionado con la asignatura.

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4.‐ METODOLOGÍA



Clases Prácticas*:


Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 2.5 A) Colectivas*: B) Individuales:


Otro Trabajo Personal Autónomo: A) Horas de estudio: 20 B) Preparación de Trabajo Personal: 10 C) ......:

Realización de Exámenes: 4 A) Examen escrito: B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal):








DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias Se impartirá una sesión de seminarios con un total de 4,5 horas de duración y una media de unos 15 min por estudiante para completar la asignatura.

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) INGLÉS (BIBLIOGRAFÍA)

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1.- Fundamentos básicos del funcionamiento del sistema inmune: tipos de inmunidad, diferenciación celular, linajes celulares, funciones específicas de cada linaje, inmunoglobulinas, citoquinas, coordinación del sistema inmune, etc... 2.- Orígenes de las enfermedades autoinmunes. Enfermedades autoinmunes sistémicas. Artritis reumatoide. Esclerosis sistémica. Síndrome antifosfolipídico. Lupus eritrematosus. 3.- Enfermedades autoinmunes específicas de órganos. Granulomatosis de Wegener. Anemia hemolítica autoinmune. Enfermedad de Crohn. Cirrosis primaria biliar. Autoinmunidad y piel: Pénfigo. 4.- Autoinmunidad y sistema nervioso: esclerosis múltiple y encefalomielitis. Autoinmunidad y hormonas: enfermedad de Adison, Diabetes mellitus. Autoinmunidad inducida por infección bacteriana: Fiebre reumática. 5.- Marcadores de enfermedades autoinmunes: autoantígenos. Terapias frente a las enfermedades autoinmunes.

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Male,DandBrostoff,J.Inmunología.HarcourtBracedeEspaña,S.A.2007. Kindt,T.J.Inmunología.Mcgraw‐Hill/InteramericanadeMéxico.2007. Regueiro González, J.R. Inmunología: Biología y patología del sistema inmune. Editorial

Panamericana.2004.


Fainboim,Leonardo.Introducciónalainmunologíahumana.Editorialpanamericana,2005. Cruise,J.,Lewis,R.E.AtlasofImmunology 2ndedition .CRCPress,2004. Cruise,J.Immunologyguidebook.ElsevierPress,2004. Revistas electrónicas tales como: Immunuty, European Journal of Immunology, Cellular Immunology,

Clinical Immunology and Immunopathology, Immunology, Annual Review of Immunology, etc… disponibles en la plataforma Science Direct, Biomed Central o Blackwell Science.

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8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. Participación presencial y virtual (10%). Tests virtuales parciales y trabajos en plataforma (40%). Seminarios (50%).

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MATERIA/ASIGNATURA

Enfermedades Metabólicas y Riesgo Cardiovascular


Curso 2016/2017



Denominación: Enfermedades Metabólicas y Riesgo Cardiovascular Código: 2103004 Módulo: 1‐Bases moleculares de la enfermedad Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Francisco J. Bedoya Bergua



2.5

Actividad por aula virtual 5,5

Seminarios 0

Tutorías 2,5

Horas de estudio 20



TOTAL 62,5

Descriptores: Síndrome Metabólico. Diabetes tipo II. Obesidad. Hipercolesterolemia. Hipertrigliceridemia




Nombre y apellidos

Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos

Francisco J.Bedoya

Bergua

Doctor en Medicina

y Cirugía

UPO / Bioquímica y

Biología Molecular

[email protected] 1

Franz Martín

Bermudo

Doctor en Medicina

y Cirugía

UPO / Nutrición y

Bromatología


Antonio L. Cuesta

Muñoz

Doctor en Medicina

y Cirugía

IMABIS/Málaga /

Endocrinología

[email protected] 1

/ créditos



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. El síndrome metabólico es un conjunto de manifestaciones clínicas y de laboratorio de prevalencia elevada en los paises de nuestro entorno y que constituye un factor de riesgo para la diabetes tipo 2 y para la enfermedad cardiovascular. En esta asignatura revisaremos críticamente el estado actual del conocimiento en esta materia, haciendo hincapíé en la interacción de los factores genéticos y ambientales que configuran la obesidad, la dislipidemia, y la hipertensión. También se abordará el estudio de otras enfermedades metabólicas de alta incidencia como la hipercolesterolemia y la hiperuricemia con similares enfoques. El objetivo fundamental de esta asignatura es proporcionar herramientas para desarrollar el espíritu de la investigación traslacional entre los estudiantes de ciencias biológicas en el campo de la biomedicina.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). El estudiante deberá tener un conocimiento fundamental del metabolismo energético en mamíferos. Asimismo, ha de poseer conocimientos de inglés suficientes para manejar con soltura bibliografía científica en este idioma. Por último, el estudiante debe saber buscar información en bases de datos bibliográficas y ser capaz de redactar en correcto español un texto científico.

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1. Poseer y comprender los conocimientos impartidos en el programa.

2. Poseer los conocimientos, habilidades y actitudes que posibilitan la comprensión de nuevas teorías, interpretaciones, métodos y técnicas dentro de los diferentes campos disciplinares, conducentes a satisfacer de manera óptima las exigencias profesionales.

3. Ser capaz de utilizar las Técnicas de Información y Comunicación (TICs) como una herramienta para la expresión y la comunicación, para el acceso a fuentes de información, como medio de archivo de datos y documentos, para tareas de presentación, para el aprendizaje, la investigación y el trabajo cooperativo

4. Ser capaz de identificar, analizar, y definir los elementos significativos que constituyen un problema para resolverlo con rigor.

5. Que los estudiantes sepan comunicar sus conclusiones –y los conocimientos y razones últimas que las sustentan– a públicos especializados y no especializados de un modo claro y sin ambigüedades.


6. Que los estudiantes sepan evaluar el papel del laboratorio en el diagnóstico, seguimiento y pronóstico de las enfermedades metabólicas

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Cognitivas: 1)Describir la relación entre enfermedad y nutrición. 2 )Identificar los principales factores de riesgo cardiovascular y conocer su base molecular. 3)Describir las bases moleculares y genéticas de las enfermedades metabólicas más comunes: Diabetes tipo 2, hipercolesterolemia e hipertrigliceridemia.

Procedimentales: 1) En función de los conocimientos adquiridos sobre las enfermedades metabólicas más comunes, evaluar el impacto de los estilos de vida y del componente genético sobre el pronóstico de las enfermedades metabólicas discutidas en la asignatura. 2) Diseñar estrategias que posibiliten un diagnóstico precoz de las enfermedades metabólicas. 3)Diseñar estrategias que permitan una monitorización de las enfermedades metabólicas.4) Evaluar posibles técnicas para un cribado de la población general con respecto a determinadas enfermedades metabólicas. 5) Evaluar el grado de susceptibilidad étnica a determinadas enfermedades metabólicas.

Actitudinales: 1)La comunicación de los resultados del laboratorio al profesional: asesoramiento sobre el grado de relevancia de los resultados: rangos de valores normales y patológicos.2) Pronóstico desde el laboratorio. 3) Trabajo en un equipo multidisciplinar.


1. Conocer los fundamentos básicos moleculares y celulares de las diferentes enfermedades metabólicas estudiadas en la asignatura

2. Conocer e identificar las causas, el origen y la progresión de las diferentes enfermedades metabólicas estudiadas en la asignatura

3. Conocer las más actuales técnicas utilizadas para el diagnóstico de estas enfermedades

4. Conocer y utilizar las más actuales fuentes de información científico‐técnicas sobre el tema

5. Expresarse de forma escrita y oral adecuadamente utilizando términos científicos relacionados con la asignatura

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4.‐ METODOLOGÍA



Clases Prácticas*: 0


Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 2,5 A) Colectivas*: B) Individuales: 2,5

Realización de Actividades Académicas Dirigidas: A) Con presencia del profesor*: B) Sin presencia del profesor: 20

Otro Trabajo Personal Autónomo: 28,5 A) Horas de estudio: 19,75 B) Preparación de Trabajo Personal: C) Aula Virtual: 8,75

Realización de Exámenes: 1,5 A) Examen escrito: 1,5 B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal):







Otros (especificar): Sesiones Virtuales

DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias La primera parte de la asignatura se desarrollará de modo virtual e implicará la realización por parte de los estudiante de 3 tareas relacionadas con la asignatura. El seguimiento de las tareas y su discusión tendrá lugar en 3 sesiones virtuales en el foro de la asignatura

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Inglés, ya que la mayor parte de la bibliografía está en inglés. Las clases serán en español, aunque algunos contenidos que aparecen en diapositivas, vídeos y enlaces de internet están en inglés.

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Calendario del máster: http://bit.ly/ITYfKs

1)Fisiopatología de la obesidad: genes, ambientes y otros factores emergentes 2) Genética de las enfermedades cardiovasculares. 3) Concepto y Etiopatogenia del Síndrome Metabólico 4)Diabetogenes y diabetes tipo 2 5)Dislipidemias: Concepto y tipos. Etiopatogenia.

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The metabolic syndrome and obesity Bray, George A.Totowa (New Jersey) : Humana Press, 2007 Disponible en Biblioteca

Oxidative Stress And Inflammatory Mechanisms in Obesity, Diabetes And the Metabolic Syndrome .Boca Ratón : CRC Press, 2007 Disponible en Biblioteca

Bioquímica : Las bases moleculares de la vida McKee, Trudy México [etc.] : McGraw‐Hill, 2009. Disponible en Biblioteca

Principios de bioquimica Lehninger, Albert L.. Barcelona : Omega, 2009. Disponible en Biblioteca

New transcription factors and their role in diabetes and therapy [Recurso electrónico] / editor, Jacob E. Friedman..Publicación Amsterdam ; Boston : Elsevier, 2006. Disponible a través de la Biblioteca

7.2. BIBLIOGRAFÍA RECOMENDADA: Adipose tissue and adipokines in health and disease / edited by Giamila Fantuzzi, Theodore Mazzone ;Publicación Totowa, N.J. : Humana Press, 2007 Disponible en Biblioteca

Introducción a la bioquímica clínica Perán Mesa, Salvador Málaga : Universidad, D.L. 2007. Disponible en Biblioteca

The biology of human longevity inflammation, nutrition, and aging in the evolution of lifespans

Finch, Caleb Ellicott.. Amsterdam ; Boston : Academic Press, cop. 2007. E‐libro disponible a través de la Biblioteca

New transcription factors and their role in diabetes and therapy [Recurso electrónico] / editor, Jacob E. Friedman..Publicación Amsterdam ; Boston : Elsevier, 2006. Disponible a través de la Biblioteca

Nutritional biochemistry Brody, Tom. San Diego : Academic Press, cop. 1999 [Recurso electrónico]. Disponible a través de la Biblioteca

Resveratrol improves health and survival of mice on a high‐calorie diet [Recurso electrónico] / Baur, J. A. , Pearson, K. J. , Price, N. L. , Jamieson, H. A. , Lerin, C. , Kalra, A. , Prabhu, V. V. , Allard, J. S. , Lopez‐Lluch, G. , Lewis, K. , Pistell, P. J. , Poosala, S. , Becker, K. G. , Boss, O. , Gwinn, D. , Wang, M. , Ramaswamy, S. , Fishbein, K. W. , Spencer, R. G. , Lakatta, E. G. , Le Couteur, D. , Shaw, R. J. , Navas, P. , Puigserver, P. , Ingram, D. K. , De Cabo, R. , Sinclair, D. A. Nature 444: 337‐342 (2006)

Food factors for health promotion [Recurso electrónico] / volume editor, Toshikazu Yoshikawa.. Publicación Basel [Switzerland] ; New York : Karger, c2009. Disponible a través de la Biblioteca

Artículos científicos

1. Abdul‐Ghani MA, DeFronzo RA: Pathophysiology of prediabetes. Curr Diab Rep 9:193‐199, 2009

2. Bastard JP, Maachi M, Lagathu C, Kim MJ, Caron M, Vidal H, Capeau J, Feve B: Recent advances in the relationship between obesity, inflammation, and insulin resistance. Eur Cytokine Netw 17:4‐12, 2006

3. Blackburn P, Lemieux I, Lamarche B, Bergeron J, Perron P, Tremblay G, Gaudet D, Despres JP: Type 2 diabetes without the atherogenic metabolic triad does not predict angiographically assessed coronary artery disease in women. Diabetes Care 31:170‐172, 2008

Curso 2016/2017

4. Coletta DK, Sriwijitkamol A, Wajcberg E, Tantiwong P, Li M, Prentki M, Madiraju M, Jenkinson CP, Cersosimo E, Musi N, Defronzo RA: Pioglitazone stimulates AMP‐activated protein kinase signalling and increases the expression of genes involved in adiponectin signalling, mitochondrial function and fat oxidation in human skeletal muscle in vivo: a randomised trial. Diabetologia 52:723‐732, 2009

5. Defronzo RA: Banting Lecture. From the triumvirate to the ominous octet: a new paradigm for the treatment of type 2 diabetes mellitus. Diabetes 58:773‐795, 2009

6. Despres JP, Lemieux I, Bergeron J, Pibarot P, Mathieu P, Larose E, Rodes‐Cabau J, Bertrand OF, Poirier P: Abdominal obesity and the metabolic syndrome: contribution to global cardiometabolic risk. Arterioscler Thromb Vasc Biol 28:1039‐1049, 2008

7. Fernandez‐Veledo S, Nieto‐Vazquez I, de Castro J, Ramos MP, Bruderlein S, Moller P, Lorenzo M: Hyperinsulinemia induces insulin resistance on glucose and lipid metabolism in a human adipocytic cell line: paracrine interaction with myocytes. J Clin Endocrinol Metab 93:2866‐2876, 2008

8. Fernandez‐Veledo S, Nieto‐Vazquez I, Rondinone CM, Lorenzo M: Liver X receptor agonists ameliorate TNFalpha‐induced insulin resistance in murine brown adipocytes by downregulating protein tyrosine phosphatase‐1B gene expression. Diabetologia 49:3038‐3048, 2006

9. Fernandez‐Veledo S, Nieto‐Vazquez I, Vila‐Bedmar R, Garcia‐Guerra L, Alonso‐Chamorro M, Lorenzo M: Molecular mechanisms involved in obesity‐associated insulin resistance: therapeutical approach. Arch Physiol Biochem 115:227‐239, 2009

10. Miyazaki Y, DeFronzo RA: Visceral fat dominant distribution in male type 2 diabetic patients is closely related to hepatic insulin resistance, irrespective of body type. Cardiovasc Diabetol 8:44, 2009

11. Nieto‐Vazquez I, Fernandez‐Veledo S, de Alvaro C, Lorenzo M: Dual role of interleukin‐6 in regulating insulin sensitivity in murine skeletal muscle. Diabetes 57:3211‐3221, 2008

12. Nieto‐Vazquez I, Fernandez‐Veledo S, Kramer DK, Vila‐Bedmar R, Garcia‐Guerra L, Lorenzo M: Insulin resistance associated to obesity: the link TNF‐alpha. Arch Physiol Biochem 114:183‐194, 2008

13. Stefan N, Kantartzis K, Haring HU: Causes and metabolic consequences of Fatty liver. Endocr Rev 29:939‐960, 2008

14. Stefan N, Kantartzis K, Haring HU: Cardiorespiratory fitness, adiposity, and mortality. Jama 299:1013‐1014; author reply 1014, 2008

15. Viljanen AP, Iozzo P, Borra R, Kankaanpaa M, Karmi A, Lautamaki R, Jarvisalo M, Parkkola R, Ronnemaa T, Guiducci L, Lehtimaki T, Raitakari OT, Mari A, Nuutila P: Effect of weight loss on liver free fatty acid uptake and hepatic insulin resistance. J Clin Endocrinol Metab 94:50‐55, 2009

16. Zhuang XF, Zhao MM, Weng CL, Sun NL: Adipocytokines: a bridge connecting obesity and insulin resistance. Med Hypotheses 73:981‐985, 2009

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. La evaluación la asignatura Enfermedades Metabólicas y Riesgo Cardiovascular se hará de forma continua y se valorarán todas las actividades formativas realizadas durante el periodo de impartición de la materia, es decir, conceptos y procedimientos transmitidos por los profesores a través de clases magistrales, realización de trabajo individual. La valoración de cada tipo de actividad se hará en función de la dedicación definida para cada una de ellas, todo ello dentro del período que comprende la materia. Participación en clase: 10% Examen escrito sobre los contenidos teóricos del programa ( el examen consistirá en responder a 6 cuestiones relacionadas los tópicos desarrollados por los profesores en las clases de teoría). El examen será presencial. 30% . Trabajo personal ( implica la entrega de cada una de las 3 tareas a través de la aplicación correspondiente de la asignatura en plazo). Todas las taréas seran calificadas por igual: 60% del total

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Enfermedades raras


Curso 2016/2017



Denominación: Enfermedades raras Código: 2103005 Módulo: 1‐Bases moleculares de la enfermedad Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: José A. Sánchez Alcázar



2.5


Seminarios

Tutorías 2,5

Horas de estudio 37,5



TOTAL 62,5

Descriptores: Generalidades de las enfermedades raras. Patología Mitocondrial. Enfermedades Metabólicas Hereditarias. Enfermedades Neuromusculares. Enfermedades Endocrinas. Enfermedades hematológicas. Enfermedades renales. Enfermedades pulmonares. Enfermedades del aparato digestivo. Defectos Congénitos y Trastornos del Desarrollo.




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos José A. Sánchez

Alcázar

Profesor Titular Universidad Pablo de Olavide

/ Biología celular


/ créditos

/ créditos

/ créditos

Curso 2016/2017



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. Las enfermedades raras (ER) son aquellas enfermedades que tiene una baja frecuencia en la población. Para ser considerada como rara, cada enfermedad específica sólo puede afectar a un número limitado de la población total, definido en Europa como menos de 1 cada 2.000 ciudadanos. Desde la perspectiva médica, las ER están caracterizadas por el gran número y amplia diversidad de los desórdenes y síntomas que varían no sólo de enfermedad a enfermedad, sino también dentro de una misma enfermedad. La misma condición puede tener manifestaciones clínicas muy diferentes de un paciente a otro. Se estima que existen entre 5.000 y 7.000 ER distintas, que afectan a los pacientes en sus capacidades físicas, habilidades mentales y en sus cualidades sensoriales y de comportamiento. Los pacientes con ER sufren una serie de problemas derivados de las características especiales de estas enfermedades: • Falta de acceso al diagnóstico correcto. • Falta de información. • Falta de conocimiento científico. • Problemas de integración social, escolar y laboral. • Falta de apropiada calidad del cuidado de la salud. • Alto coste de la asistencia a los pacientes y de los pocos medicamentos disponibles. • Desigualdad en la accesibilidad al tratamiento y el cuidado asistencial. Los tratamientos innovadores están, a menudo, desigualmente disponibles a causa de los retrasos en la determinación del precio, falta de experiencia de los médicos que tratan y la ausencia de recomendaciones sobre tratamientos consensuados. A su vez la baja frecuencia de estas enfermedades provoca que los profesionales sanitarios no dispongan de los casos suficientes para adquirir experiencia y no puedan realizar estudios más profundos sobre estas enfermedades. Objetivos del Máster de Enfermedades Raras: Las enfermedades raras (ER) son aquellas enfermedades que tiene una baja frecuencia en la población. Para ser considerada como rara, cada enfermedad específica sólo puede afectar a un número limitado de la población total, definido en Europa como menos de 1 cada 2.000 ciudadanos. Desde la perspectiva médica, las ER están caracterizadas por el gran número y amplia diversidad de los desórdenes y síntomas que varían no sólo de enfermedad a enfermedad, sino también dentro de una misma enfermedad. La misma condición puede tener manifestaciones clínicas muy diferentes de un paciente a otro. Se estima que existen entre 5.000 y 7.000 ER distintas, que afectan a los pacientes en sus capacidades físicas, habilidades mentales y en sus cualidades sensoriales y de comportamiento. Los pacientes con ER sufren una serie de problemas derivados de las características especiales de estas enfermedades: • Falta de acceso al diagnóstico correcto. • Falta de información. • Falta de conocimiento científico. • Problemas de integración social, escolar y laboral. • Falta de apropiada calidad del cuidado de la salud. • Alto coste de la asistencia a los pacientes y de los pocos medicamentos disponibles. • Desigualdad en la accesibilidad al tratamiento y el cuidado asistencial. Los tratamientos innovadores están, a menudo, desigualmente disponibles a causa de los retrasos en la determinación del precio, falta de experiencia de los médicos que tratan y la ausencia de recomendaciones sobre tratamientos consensuados. A su vez la baja frecuencia de estas enfermedades provoca que los profesionales sanitarios no dispongan de los casos suficientes para adquirir experiencia y no puedan realizar estudios más profundos sobre estas enfermedades.

Curso 2016/2017

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Los estudiantes deben tener conocimientos de Genética molecular y Biología Celular










Identificar los recursos moleculares y bioquímicos para la evaluación, diagnóstico, seguimiento, pronóstico y tratamiento de los pacientes y familiares afectados por enfermedades raras.

Diseñar estrategias de investigación en las enfermedades descritas, utilizando las técnicas y los organismos modelos más apropiados

Curso 2016/2017




Conocer los fundamentos básicos moleculares y celulares de las diferentes enfermedades estudiadas en el módulo

Conocer e identificar las causas, el origen y la progresión de las diferentes enfermedades estudiadas en el módulo

Conocer las más actuales técnicas utilizadas para el diagnóstico de estas enfermedades


Expresarse de forma escrita y oral adecuadamente utilizando términos científicos relacionados con la asignatura

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA



Clases Prácticas*:


Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 2,5 A) Colectivas*: 2,5 B) Individuales:

Realización de Actividades Académicas Dirigidas: A) Con presencia del profesor*: B) Sin presencia del profesor: 10

Otro Trabajo Personal Autónomo: A) Horas de estudio: 37,5 B) Preparación de Trabajo Personal: C) ......:

Realización de Exámenes: 2,5 A) Examen escrito: B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal):









4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Inglés

Curso 2016/2017



Conceptos Generales y Aspectos Sociales Relacionados con las Enfermedades Raras Diagnóstico Molecular de las Enfermedades Raras Enfermedades Mitocondriales Enfermedades Raras Metabólicas Enfermedades Neuromusculares Otras Enfermedades Raras Modelos celulares y animales de las enfermedades Medicamentos Huérfanos

Curso 2016/2017



Título: Molecular diagnostics : a training and study guide / Gregory J. Tsongalis and William B. Coleman. Publicación . Washington : AACC Press, cop. 2002

Título: The metabolic & molecular bases of inherited disease / editors, Charles R. Scriver ... [et al.]. Publicación: New York : McGraw‐Hill, cop. 2001

Título: Molecular diagnosis of infectious diseases / edited by Udo Reischl ; foreword by Hans Wolf. Publicación: Totowa (New Jersey) : Humana Press, cop. 1998

Título: Introduction to molecular medicine / Dennis W. Ross ; illustrations by David Pounds. Publicación: New York : Springer, c2002

Título: Molecular medicine : novel findings of gene diagnosis, regulation of gene expression, and gene therapy: proceedings of the Second Meeting of Hirosaki International Forum of Medical Science, Hirosaki, Japan, 7 July 998 / editors, Isao Hashimoto ... [et al.] Publicación: Amsterdam : Elsevier, 1999


Rare diseases epidemiology. Posada de la Paz, Manuel,,Groft, Stephen C.

Editorial : Springer

Idioma : Inglés

Fecha de Publicación : 01/08/2010

ISBN: 978‐90‐481‐9484‐1

http://www.orpha.net/consor/cgi‐bin/index.php

http://www.eurordis.org/

http://www.enfermedades‐raras.org/

http://www.hon.ch/HONselect/RareDiseases/index_sp.html

http://www.ciberer.es/

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. ASISTENCIA 50% TRABAJO O PRESENTACIÓN EN CLASE 50%

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Métodos prácticos en el estudio y análisis de las patologías


Curso 2016/2017



Denominación: Métodos prácticos en el estudio y análisis de las patologías Código: 2103006 Módulo: 1‐Bases moleculares de la enfermedad Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Carlos Santos Ocaña


Clases teórico‐prácticas 37.5

5

Actividad por aula virtual

Seminarios

Tutorías

Horas de estudio 85.5



TOTAL 125

Descriptores: Métodos prácticos en el estudio y análisis de las patologías: Métodos diagnósticos y de investigación de los enfermedades descritas anteriormente




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Carlos Santos Ocaña Doctor Universidad Pablo de Olavide

/ Biología Celular

[email protected]

954349093

2

Manuel Jesús Muñoz

Ruiz

Doctor Universidad Pablo de Olavide

/ Genética

[email protected]

954349387

1

Francisco Manuel

Martín Bermudo

Doctor Universidad Pablo de Olavide

/ Nutrición y Bromatología

[email protected]

954977944

1

Rafael Rodriguez Daga Doctor Universidad Pablo de Olavide

/ Genética

[email protected]

95434977551

1



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. La asignatura se justifica como una forma de hacer estable la relación tranversal existente entre la investigación biológica básica y la investigación y actividad clínica. Por ello, en una misma asignatura se engloban aspectos puramente experimentales en cuanto al origen de las patologías con modelos de estudio a nivel básico y métodos de diagnóstico. Se constituye como una puerta de acceso al mundo clínico, mucho más apremiante que el mundo de la ciencia básica, para que los biotecnólogos dedicados a aspectos biosanitarios se sitúen cerca y en consonancia de las necesidades y objetivos de la práctica clínica, que no es sino obtener la curación y el bienestar de los pacientes.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Conocimientos básicos de Biología Celular, Biología Molecular, Genética y Bioquímica. Es necesario un nivel medio de lectura y comprensión lectora en inglés escrito.

Curso 2016/2017


La comprensión de nuevas teorías, métodos, y técnicas.

Capacidad de integración de diversas fuentes de datos

Capacidad de formular hipótesis basadas en la integración de datos.

Habilidad para expresar ideas, hipótesis o conocimientos formulados en distintos entornos e idiomas (inglés).

Capacidad de plantear soluciones prácticas a la resolución de problemas

Habilidad para ejecutar técnicas de experimentación en Biotecnología Sanitaria Otras competencias genéricas:

Adquirir y desarrollar capacidades de aprendizaje

Autonomía en el desarrollo del aprendizaje

Tener capacidad de crítica y autocrítica

Tener capacidad de comunicar y aptitud social



Conocer los métodos que permiten analizar una patología como una alteración de procesos biológicos básicos

Conocer la importancia de los modelos animales en el estudio de las distintas patologías

Entender la importancia de la investigación básica en el desarrollo de nuevos métodos diagnósticos y en el estudio de las patologías

Saber utilizar el nematodo Caenorhabditis elegans como modelo de análisis y diagnóstico de patologías

Saber utilizar a la levadura como modelo de análisis y diagnóstico de patologías

Saber utilizar al ratón como modelo de análisis y diagnóstico de patologías

Saber trabajar en equipo

Curso 2016/2017


Conocer los métodos disponibles para analizar el origen de las enfermedades


Expresarse de forma escrita y oral adecuadamente utilizando términos científicos relacionados con la asignatura

Conocer los principales animales modelos usados en el estudio de las patologías

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA


Clases Teóricas*:

Clases Prácticas*: 37.5


Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): A) Colectivas*: B) Individuales:


Otro Trabajo Personal Autónomo: 85.5 A) Horas de estudio: 30.5 B) Preparación de Trabajo Personal: 55 C) ......:

Realización de Exámenes: A) Examen escrito: 2 B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal):









4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Se utilizará el inglés en la docencia (material utilizado y bibliografía)

Curso 2016/2017



Bloque I 1. Introducción a la bioquímica, fisiología y biología celular de la levadura como modelo de estudio de enfermedades 2. Aplicaciones generales de la levadura 2.1. Complementación funcional de deficiencias propias 2.2. Complementación funcional de deficiencias inducidas 2.3. Herramienta para estudiar funcionalidades de genes/proteínas humanas Bloque II 3. Métodos y modelos aplicados a patología específicas 3.1. Envejecimiento 3.2. Cáncer 3.3. Diabetes 3.4. Enfermedades mitocondriales 3.5. Enfermedades neurodegenerativas 3.6. Enfermedades del sistema inmune

Curso 2016/2017



Jorde, L.B., (2005) Genética médica. Madrid: Elsevier.

Trent, R.J. (2005) Molecular medicin. Amsterdam: Elsevier

Buckingham and Maribeth (2007) Molecular diagnostics : fundamentals, methods and clinical applications. Philadelphia: Davis, F.A.

Rao, J.R., Fleming, C.C. and Moore, J. (2006) Molecular diagnostics: Current technology and applications, Norfolk: Horizon Bioscience.

Dickinson, J. R. y Schweizer, M. (2004) The metabolism and molecular physiology of Saccharomyces cerevisiae, Boca Raton, Florida: CRC Press.

Graeme, M. (2000) Yeast physiology and biotechnology Chichester: John Wiley and Sons

Pringle, J. R., Broach, J. R. y Jones, E. W. (1997) The molecular and cellular biology of the yeast Saccharomyces, Cold Spring Harbor: Cold Spring Harbor Laboratory Press.

Feldmann, H. (2005) Yeast Molecular Biology, Online, Adolf‐Butenandt‐Institute, Universidad de Munich

Shafrir, E. (2007) Animals models of diabetes, Boca Ratón, Florida: CRC Press.

McNeill JH. (2000) Experimental models of diabetes, New york, New York: Informa Healthcare

Andres V. Maricq and Steven McIntire, eds. Disease models and drug discovery http://www.wormbook.org/toc_diseasemoddrugdiscov.html


Artal‐Sanz M, de Jong L, Tavernarakis N. (2006) Caenorhabditis elegans: a versatile platform for drug discovery. Biotechnol J. 12:1405‐18.

Kenyon CJ. (2010) • The genetics of ageing.. Nature 464:504‐12.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. Las prácticas se evaluarán mediante una memoria (75%) y un examen escrito sobre los contenidos de las prácticas (25%). Los profesores de los distintos modelos podrán desarrollar de forma diferente los contenidos de la memoria de prácticas, así como la forma de evaluación.

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MATERIA/ASIGNATURA

Genómica aplicada


Curso 2016/2017



Denominación: Genómica aplicada Código: 2103008 Módulo: 2 ‐ Tecnología de diagnóstico e investigación en Biomedicina Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Andrés Garzón Villar



5


Seminarios 2

Tutorías 5

Horas de estudio 76



TOTAL 125

Descriptores: Genómica funcional y organismos modelo. Anatomía Genómica. Secuenciación de genomas y colecciones de cDNA. Genómica comparada. Técnicas generales de análisis genómico. Inactivación sistemática de genes: inserción, deleción y RNAi. Análisis de expresión. Chips de DNA. SAGE. Sistemas de expresión ectópica. Inserción al azar de genes chivatos y estudios de expresión. Estudios de localización de los productos génicos. Identificación de microRNAs. Estudios de interacción, doble híbrido. Epigenética. Aproximación genómica a la investigación. Aproximación genómica a diagnóstico. Análisis de función proteica por bioinformática. Consulta de bases de datos de ortólogos y familias proteicas..




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Andrés Garzón Villar Profesor titular Universidad Pablo Olavide /

Genética

Aula Virtual 3

Rafael Rodríguez Daga Profesor Titular Universidad Pablo Olavide /

Genética

Aula Virtual 1

Antonio J. Pérez Pulido Profesor Contratado

Doctor

Universidad Pablo Olavide /

Genética

Aula Virtual 1

/ créditos




La Genómica Funcional ha abierto un nuevo campo para el estudio de los sistemas vivos. Se constituye en una herramienta muy poderosa para el descubrimiento de nuevos genes implicados en procesos biológicos de interés y por tanto de posibles dianas terapéuticas o susceptibles de mejora genética. También abre una puerta al conocimiento de los efectos genómicos globales a nivel de expresión de nuevos tratamientos farmacológicos.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Aunque los contenidos de la asignatura son bastante autocomprensivos, es conveniente tener conocimientos previos de Genética Molecular, sobre todo en lo relativo a estructura del DNA, expresión génica y regulación. Además es recomendable tener la competencia básica de consulta de bases de datos genéricas por internet..

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Diseñar, ejecutar e interpretar experimentos encaminados a esclarecer aspectos básicos y aplicados de fenómenos biológicos

Trabajar adecuadamente en un laboratorio científico

Elija un elemento. Otras competencias genéricas:


Poseer los conocimientos, habilidades y actitudes que posibilitan la comprensión de nuevas teorías, interpretaciones, métodos y técnicas dentro de los diferentes campos disciplinares, conducentes a satisfacer de manera óptima las exigencias profesionales

Elija un elemento.



Diseñar abordajes a un problema biológico con metodología genómica

Discernir la mejor técnica genómica para un problema concreto

Analizar e interpretar resultados de un experimento de genómica funcional

Manejar las principales fuentes de información


Conocer las distintas técnicas de genómica estructural y funcional

Comprender y discutir resultados experimentales sobre genómica

Consultar bases datos genómicas y extraer información de interés

Realización de una memoria usando criterios de redacción y revisión de resultados científicos

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4.‐ METODOLOGÍA





Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 5 A) Colectivas*: B) Individuales:


Otro Trabajo Personal Autónomo: 72 A) Horas de estudio: 25 B) Preparación de Trabajo Personal: 45 C) Clases virtuales: 8








Otros (especificar): Prácticas por ordenador

DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias En función de la disponibilidad económica se podrá impartir un seminario de 2 horas de duración para complementar la asignatura. En la parte de análisis bioinformático se llevará a cabo una sesión de prácticas por ordenador de 4 horas.

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Gran parte de la bibliografía y bases de datos públicas que se usarán en la asignatura, estarán en inglés.

Curso 2016/2017


6.‐ HORARIO DE CLASE. TEORÍA, PRÁCTICA Y TUTORIAS Se recomienda usar el calendario del Aula Virtual de la asignatura, o el calendario general del máster. Incluir aquí las horas de las clases teóricas, prácticas, tutorias y/o seminarios en general. Sólo indicar las horas, y no las fechas, a no ser que estas últimas cambien de semana en semana. En una sesión de 4 horas (ó 2 sesiones de 2 horas) se realizará una práctica de bioinformática. Durante 2 semanas, todas las tardes, se realizará una práctica de laboratorio. Finalmente podrá impartirse un seminario de 2 horas por un investigador invitado. Calendario del máster: http://bit.ly/ITYfKs

1.- Introducción: Genómica funcional y organismos modelo. Anatomía Genómica. Secuenciación de genomas y colecciones de cDNA. Técnicas generales de análisis genómico. 2.- Inactivación sistemática de genes: inserción, deleción y RNAi. 3.- Análisis de expresión. Chips de DNA. SAGE. Sistemas de expresión ectópica. Inserción al azar de genes chivatos y estudios de expresión. Estudios de localización de los productos génicos. Estudios de interacción, doble híbrido. 4.- La postgenómica. Proyectos de secuenciación masiva 5.- Genómica Aplicada 6.- Análisis bioinformático de función: Consulta de bases de datos de función proteíca y ortólogos de secuencia. Uso de herramientas de predicción de función. Consulta de bases de datos de familias de secuencia.

Curso 2016/2017



Genomes 2. T.A. Brown.. Bios Scientific Publishers. 2002. E‐book disponible en la web del NCBI. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK21128/

¿Hablamos de gen‐‐ o‐‐ más?. Gemma Rodríguez Tarduchy. Ed. Hélice. 2007. E‐book disponible en la biblioteca virtual de la UPO.

El proyecto ENCODE desvela la complejidad del genoma humano. Beyond Darwin. Revista BIOSAIA n2 abril 2013 .

Genome‐wide mutant collections: toolboxes for functional genomics. Coelho, P. S., A. Kumar, et al. (2000). Curr Opin Microbiol 3(3): 309‐15.

Timothy R Hughes, Mark D Robinson, Nicholas Mitsakakis and Mark Johnston. The promise of functional genomics: completing the encyclopedia of a cell. Current Opinion in Microbiology 2004, 7:546–554

Cancer Genomics. Special secion. Science. vol 339. 1539‐1572

Genomas 3. T.A. Brown. Editorial Médica Panamericana. 2008.


Functional genomics: learning to think about gene expression data. Brent, R. (1999).. Current Biology 9(9): R338‐41.

Exploring the new world of the genome with DNA microarrays Brown, P. O. and D. Botstein (1999).. Nat Genet 21(1 Suppl): 33‐7Mata J, Lyne R, Burns G, Bahler J.

The impact of two‐hybrid and related methods on biotechnology. Colas, P. and R. Brent (1998). Trends in Biotechnology 16(8): 355‐63

The transcriptional program of meiosis and sporulation in fission yeast. Nat Genet. 2002 Sep;32(1):143‐7

Barth D Grant and Hilary A Wilkinson. Functional genomic maps in Caenorhabditis elegans. Current Opinion in Cell Biology 2003, 15:206–212

Chandra L. Tucker. High‐throughput cell‐based assays in yeast. Drug Discovery Today. Vol. 7, No. 18 (Suppl.), 2002

European Functional Analysis Network (EUROFAN) and the functional analysis of the Saccharomyces cerevisiae genome. Dujon, B. (1998).." Electrophoresis 19(4): 617‐24.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. Además del preceptivo examen final (a realizar por el aula virtual), se calificará la asistencia y la participación en las clases, principalmente en las sesiones prácticas. También se calificará el informe final de las prácticas. El peso de estas calificaciones será: Asistencia y Participación (incluyendo participación en los foros de discusión y

el desarrollo del proyecto práctico): 10%; Exámenes parciales y final: 40%; Informe final: 50%. La memoria se evaluará sobre 10 puntos de la siguiente manera: Presentación y estilo de escritura 2 puntos. Estructura. Introducción, material y métodos, enfoque de resultados y discusión general 2 puntos. Resultados y discusión 4 puntos repartidos entre las distintas secuencias a analizar. Bibliografía 2 puntos valorando la citación a lo largo de la memoria y los documentos utilizados.

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MATERIA/ASIGNATURA

Técnicas de fluorescencia en biotecnología


Curso 2016/2017



Denominación: Técnicas de fluorescencia para aplicación de biomoléculas Código: 2103009 Módulo: 2 ‐ Tecnología de diagnóstico e investigación en Biomedicina Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Manuel Angel Ballesteros Simarro



5


Seminarios

Tutorías 10

Horas de estudio 72



TOTAL 125

Descriptores: Bases físicas de la fluorescencia, Sondas fluorescentes, inmunofluorescencia, microscopía fluorescente, microscopía confocal, marcaje fluorescente in vitro e in vivo, técnicas de fluorescencia en clínica.




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Manuel Angel

Ballesteros Simarro

Prof. Contratado

Doctor

UPO / Biología Celular [email protected] 2

Guillermo López Lluch

/ Daniel José Moreno

Fernández‐Ayala

Profesor Titular /

Prof. Contratado

Doctor

UPO / Biología Celular [email protected] /

[email protected]

1

Víctor Alvarez Tallada Prof. Contratado

Doctor

UPO / Genética [email protected] 1

Feliciano Carlos de

Soto Borrero

Profesor Titular UPO / Física Aplicada [email protected] 1

/ créditos




Las Técnicas de Fluorescencia se vienen aplicando desde hace muchos años, y constituyen la base científica e instrumental de innumerables aplicaciones en todas las áreas de la Biotecnología. Para darse una idea de la importancia, basta teclear el término “Fluorescence” en cualquier base de datos para obtener miles de entradas en las revistas de mayor índice de impacto. Estas técnicas además vienen experimentado un desarrollo extraordinario en los últimos años y tanto las utilidades como las aplicaciones en el ámbito de la Biotecnología Sanitaria son muy numerosas. En esta asignatura no podemos presentar la totalidad de estas aplicaciones, así que nuestro principal objetivo será que el alumno se familiarice con estas técnicas, que conozca los instrumentos y sus aplicaciones y, sobre todo, las posibilidades que pueden ofrecer en su futuro campo profesional.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Es conveniente tener conocimientos previos de Biología Celular y Molecular, así como técnicas básicas bioquímicas. Se requiere conocimiento del idioma inglés que permita lectura de artículos científicos y capacidades básicas de consulta de bases de datos por internet.

Curso 2016/2017









Saber aplicar los conocimientos adquiridos y su capacidad de resolución de problemas en entornos nuevos o poco conocidos dentro de contextos más amplios (o multidisciplinares) relacionados con su área de estudios

Ser capaz de cuestionar hipótesis y principios en base a los fundamentos en los que se asientan las ideas, acciones y juicios, tanto propios como ajenos



Comprender las bases de la tecnología del uso de fluorocromos para la detección de biomoléculas

Describir las bases físicas y las características de los compuesto fluorescentes utilizados en Biomedicina

Diseñar abordajes a un problema biológico con metodología genómica

Resolver con una propuesta científicamente coherente casos prácticos de proteómica

Acceder por búsquedas electrónicas en bases de datos a la literatura científico‐técnica

Discernir el mejor protocolo y tecnología para el análisis de metabolitos de muestras animales

Manejar las principales fuentes de información

Curso 2016/2017


Conocer las bases físicas y características de los compuestos fluorescentes utilizados en biomedicina

Conocer la aplicación de la fluorescencia para el estudio del genoma, proteoma, detección de metabolitos, microscopía y en el diagnóstico de enfermedades

Conocer las principales técnicas en el análisis bioquímico y metabolómico

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA




Actividades en Aula Virtual: 10


Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 10 A) Colectivas*: 5 B) Individuales: 5


Otro Trabajo Personal Autónomo: 71 A) Horas de estudio: 61 B) Preparación de Trabajo Personal: 10 C) ......:










4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Inglés. Toda la bibliografía está en lengua inglesa.

Curso 2016/2017


6.‐ HORARIO DE CLASE. TEORÍA, PRÁCTICA Y TUTORIAS Se recomienda usar el calendario del Aula Virtual de la asignatura, o el calendario general del máster. Incluir aquí las horas de las clases teóricas, prácticas, tutorias y/o seminarios en general. Sólo indicar las horas, y no las fechas, a no ser que estas últimas cambien de semana en semana. Durante el mes de octubre se realizarán una serie de actividades de docencia virtual con tareas asignadas. Las actividades de Enseñanzas prácticas y desarrollo incluirán las siguientes actividades: 1. Sesión de técnicas analíticas de Fluorescencia, en aula de Informática 2. Sesiones de demostración de técnicas de Microscopía de Fluorescencia y Citometría de Flujo 3. Taller "Presente y Futuro de las técnicas de Fluorescencia" * Actividades de docencia Virtual: Durante los meses de Octubre‐Diciembre se realizarán una serie de actividades de docencia virtual con tareas asignadas. Total: 10 horas * Clases teóricas (Enseñanzas Básicas, EB). Total: 16 horas. Bases Físicas de la Fluorescencia: 3.5 horas Sondas y marcadores fluorescentes: 2 horas Aplicaciones de Fluorescencia en Biotecnología: 4 horas Microscopía de Fluorescencia: 4 horas Tinción in vivo para microscopía: 2 horas. * Actividades de Prácticas y Desarrollo (EPD): 14 horas. Las actividades de Enseñanzas prácticas y desarrollo (EPD) incluirán las siguientes actividades: Práctica 1: Microscopía de Fluorescencia (laboratorio) Práctica 2: Citometría de Flujo (Laboratorio + análisis de datos) Práctica 3: Tinción de Células mediante sondas fluorescentes (laboratorio) Práctica 4: Análisis Cualitativo y Cuantitativo de Fluorescencia (Aula Informática) Las EPD se realizarán en grupos, estad pendientes del aula virtual para más información. Calendario del máster: http://bit.ly/ITYfKs

La asignatura se estructura en 4 unidades temáticas: * Unidad 1: Bases Físicas de la Fluorescencia. Características de los compuestos Fluorescentes y equipamiento. Técnicas Analíticas de Fluorescencia * Unidad 2: Sondas y Marcadores Fluorescentes para aplicaciones Biomédicas. * Unidad 3: Aplicaciones y Técnicas de Fluorescencia en Biotecnología Sanitaria. * Unidad 4: Microscopía de fluorescencia y confocal. Técnicas "F"

Curso 2016/2017



Allan, Victoria J (2000). Protein Localization by Fluorescence Microscopy : A Practical Approach. Oxford: Oxford University Press

Demchenko, A.P (2008) Introduction to Fluorescence Sensing. New York: Springer.

Goldys, Ewa M (2009) Fluorescence Applications in Biotechnology and Life Sciences. Somerset, NJ: Wiley Blackwell


Allan, Victoria J. (2000) Protein localization by fluorescence microscopy : a practical approach.Oxford ; New York : Oxford University Press, cop.

Kirstin Edward, K; Logan, J and Saunders, N. (2004) Real‐time PCR : an essential guide. Wymondham (Reino Unido) : Horizon Bioscience, cop. 2004

Herman, Brian (1998) Fluorescence Microscopy. Oxford: BIOS Scientific Publishers, cop. 2nd ed

Lakowicz, Joseph R. (2006) Principles of Fluorescence Spectroscopy. New York: Springer.

Macey, Marion G. (2007) Flow cytometry : principles and applications. Totowa (New Jersey) : Humana Press, cop.

Pawley, James (2006) Handbook of Biological Confocal Microscopy. New York: Springer; 3rd edition

Pörtner, Ralf (2007). Animal cell biotechnology : Methods and Protocols. Totowa (New Jersey): Humana Press

(En el aula virtual se facilitarán recursos "on line" y artículos especiliazados)

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. En el método de evaluación propuesto para esta asignatura se tendrán en cuenta los siguientes criterios de evaluación: ― Par cipación, Implicación y Rendimiento en las sesiones presenciales: Se requiere un mínimo de asistencia del 80% en las clases teóricas y prácticas. ― Par cipación y rendimiento en las sesiones virtuales: Participación en los foros de discusión y realización de cuestionario de autoevaluación ― Adquisición de conocimientos, marcados como "Resultados del Aprendizaje" : Realización de un examen escrito de teoría y prácticas. La nota final obtenida en este curso se calculará de la siguiente manera: 1. 20% Participación y aprovechamiento de las actividades virtuales ― Evaluación: Actividades de autoevaluación y cuestionarios en el aula virtual 2. 40%: Eneñanzas Básicas ―Evaluación: Examen escrito sobre los aspectos más relevantes desarrollados durante las clases de teoría. 3. 40% Enseñanzas Prácticas y de Desarrollo ‐ Evaluación: Examen sobre los aspectos más relevantes desarrollados para la Práctica 4 y entrega de un dossier de las sesiones para las prácticas 1, 2 y 3 que contendrá un resumen de las actividades realizadas y los resultados obtenidos en el laboratorio.

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Modelos Animales en Biotecnología

GUÍA DIDÁCTICA DEL ALUMNO

Curso 2016/2017



Denominación: Modelos Animales en Biotecnología Código: 2103014 Módulo: 3-Apli. organismos modelo en biotecnol. sanitaria Curso / Semestre / Carácter: 1º / 1er / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Manuel J. Muñoz Ruiz


Clases teórico‐prácticas 37,5

5


Seminarios 10

Tutorías 10

Horas de estudio 35

Actividades dirigidas 22,5


TOTAL 125

Descriptores: Análisis genéticos, manipulación genética de eucariotas unicelulares, Drosophila, C. elegans, Xenopus, pez Zebra y ratón. Generación de modelos de enfermedad. Utilización de modelos en estudios farmacológicos.




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Manuel Jesús Muñoz

Ruiz

Profesor titular. UPO / Genética Aula virtual 2.3

Rafael Rodríguez Daga Profesor titular UPO / Genética Aula virtual 1.3

Beatriz Estrada Doctor CABD‐CSIC‐UPO / [email protected] 0.2


Jose Luis Gomez‐

Skarmeta

Doctor CABD‐CSIC‐UPO / [email protected] 0.2

Juan Ramón Martínez

Morales


María José Sánchez

San


Peter Askjaer Doctor CABD‐CSIC‐UPO / [email protected] 0.2

r / s créditos



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. Los organismos modelos son base en el estudio de la enfermedad ya que permiten conocer el funcionamiento de los procesos biológicos en situaciones normales y en situaciones de patología que imitan enfermedades humanas. A su vez estos modelos animales pueden ser utilizados para el escritinio de drogas. Para poder llevar a cabo estas aplicaciones es imprescindibles disponer de herramientas que permitan el estudio y la modificación de estos organismos modelo. El objetivo de este curso es familiarizarse con las herramientas que se disponen para el trabajo con los organismos modelos más utilizados en biomedicina.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Es conveniente tener conocimientos previos de Genética, ingeniería genética, biología celular y bioquímica. Manejar con soltura la bibliografía en inglés

Curso 2016/2017




Ser capaz de identificar, analizar, y definir los elementos significativos que constituyen un problema para resolverlo con rigor.

Demostrar una buena capacidad de acceder por búsquedas electrónicas en bases de datos a la literatura científico‐técnica.

Diseñar, ejecutar e interpretar experimentos encaminados a esclarecer aspectos básicos y aplicados de fenómenos biológicos


Ser capaz de utilizar las Técnicas de Información y Comunicación (TICs) como una herramienta para la expresión y la comunicación, para el acceso a fuentes de información, como medio de archivo de datos y documentos, para tareas de presentación, para el aprendizaje, la investigación y el trabajo cooperativo

Ser capaces de integrar conocimientos y enfrentarse a la complejidad de formular juicios a partir de una información que, siendo incompleta o limitada, incluya reflexiones sobre las responsabilidades sociales y éticas vinculadas a la aplicación de sus conocimientos y juicios.

Conocer y poner en práctica la normativa sobre seguridad en el ejercicio profesional



Diseñar estrategias para la modificación genética en distintos organismos de interés en Biotecnología sanitaria, utilizando los vectores y tecnologías adecuadas en cada caso.

Conocer las técnicas de manejo de C. elegans

Conocer las técnias de manejo de Drosophila

Conocer las técnicas de manejo de pez Zebra

Conocer las tecnicas de manejor de Xenopus

Conocer la metodologia de manejo en ratón

Curso 2016/2017


Saber elegir estrategias adecuadas en el uso de los organismos modelo

Conocer las herramientas habituales de cada organismo modelo.

Conocer las posibilidades de cada organismo modelo para abordar los distintos problemas

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA

4.1. NÚMERO DE HORAS DE TRABAJO DEL ALUMNO: Se consignarán las horas (número aproximado) de trabajo del alumnado en cada uno de los grandes apartados. Nº de Horas:


Clases Prácticas*: 21,5



Realización de Actividades Académicas Dirigidas: 22,5 A) Con presencia del profesor*: B) Sin presencia del profesor: 22,5

Otro Trabajo Personal Autónomo: 35 A) Horas de estudio: 35 B) Preparación de Trabajo Personal: C) ......:









DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias Practicas de herramientas en levaduras Practicas de herramientas en C. elegans

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) La bibliografia será principalemente en inglés.

Curso 2016/2017


6.‐ HORARIO DE CLASE. TEORÍA, PRÁCTICA Y TUTORIAS Se recomienda usar el calendario del Aula Virtual de la asignatura, o el calendario general del máster. Incluir aquí las horas de las clases teóricas, prácticas, tutorias y/o seminarios en general. Sólo indicar las horas, y no las fechas, a no ser que estas últimas cambien de semana en semana. Calendario del máster: https://www.google.com/calendar/[email protected]&ctz=Europe/Madrid&pvttk=66b04a928a73a8f83fe41a8bc79ba62c&gsessionid=OK

1.‐ Organismos unicelulares como modelo de estudio en biomedicina 2.‐Herramientas y usos en C. elegans 3.‐ Herramientas y usos en Drosophila 4.‐ Herramientas y usos en pez zebra/Medaca 5.‐ Herramieantas y usos en Xenopus 6.‐ Herramientas y usos en ratón

Curso 2016/2017



Drosophila: A Practical Approach by David B. Roberts (Editor), David Roberts (Editor), D. B. Roberts (Editor)

Drosophila melanogaster; Developmental Biology; Laboratory Manuals/Handbooks. By William Sullivan, University of California, Santa Cruz; Michael Ashburner, University of Cambridge; R. Scott Hawley, University of California, Davis

Medaka: Biology, Management, and Experimental Protocols . John Wiley and Sons Ltd, June 2009

http://www.wormbook.org/


Medaka and zebrafish, an evolutionary twin study. Makoto Furutani‐Seikia and Joachim Wittbrodtm. Mechanism of development. 121 (2004) 629–637.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los alumnos. Participación presencial y virtual obligatoria Practicas (50%) (las prácticas tendrán un cuestionario ) Exámenes (50%) (Al final de la asignatura se realizará un examen on line sobre los aspectos esenciales de la asignatura

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Patogenicidad y diagnóstico de la enfermedad infecciosa


Curso 2016/2017



Denominación: Patogenicidad y diagnóstico de la enfermedad infecciosa Código: 2103007 Módulo: 1‐Bases moleculares de la enfermedad Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Amando Flores Díaz



5


Seminarios 7

Tutorías 5




TOTAL 125

Descriptores: El ciclo de infección. Fases de la infección. Vías de transmisión. Entrada del patógeno. Proliferación. Evasión del sistema inmune. Toxinas y otros factores de virulencia. Bases moleculares de la patogénesis en modelos bacterianos: espiroquetas, Salmonella, Yersinia pestis, Pseudomonas aeruginosa, Legionella, Chlamidia, etc.. Bases moleculares de la patogénesis en modelos fúngicos: Candida, Cryptococcus, Aspergillus etc.




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Amando Flores Díaz Profesor Contratado

Doctor

UPO / Microbiología [email protected] 2

Eva M. Camacho

Fernandez

Profesora Contratado

Doctor

UPO / Microbiología [email protected] 1

Carmen Rosario

Beuzón Lopez

Profesora Titular Universidad de Málaga /

Genética

[email protected] 2

/ créditos



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. Las enfermedades infecciosas son una de las causas que originan una mayor mortandad en el mundo, tanto en animales como en humanos. Actualmente son muchas las estrategias novedosas que se están desarrollando para tratar, prevenir o detectar las infecciones por microorganismos. Estas estrategias se basan, cada vez con mayor frecuencia, en los conocimientos que poseemos sobre los mecanismo que utilizan los microorganismos para causar la enfermedad. Esta asignatura pretende aportar una visión amplia sobre las bases moleculares de la patogénesis en los principales modelos procarióticos y eucarióticos.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Aunque para la comprensión de los contenidos de la materia no se requieren conocimientos previos en patogénesis o diagnosis, es conveniente poseer una cierta formación en Microbiología y Genética Molecular.

Curso 2016/2017






Capacidad para aprender a trabajar de forma autónoma. Capacidad para diseñar, gestionar y ejecutar una tarea de forma personal

Capacidad de comunicar y aptitud social. Que los estudiantes sepan comunicar sus conclusiones – y los conocimientos y razones últimas que las sustentan– a públicos especializados y no especializados de un modo claro y sin ambigüedades

Habilidad en el uso de las TIC. Ser capaz de utilizar las Técnicas de Información y Comunicación (TICs) como una herramienta para la expresión y la comunicación, para el acceso a fuentes de información, como medio de archivo de datos y documentos, para tareas de presentación, para el aprendizaje, la investigación y el trabajo cooperativo



Conocer las distintas etapas del proceso de infección de un microorganismo

Conocer las principales vías de transmisión de una enfermedad infecciosa

Comprender los conceptos de patogenicidad y virulencia y conocer las técnicas de de la virulencia de un determinado patógeno

Conocer los principales factores de virulencia de algunos patógenos

Conocer el mecanismo de acción de algunas toxinas presentadas en el curso

Conocer los fundamentos básicos moleculares y celulares de diferentes enfermedades infecciosas

Curso 2016/2017


Describir las distintas etapas del proceso de infección de un microorganismo

Enumerar las principales vías de transmisión de una enfermedad infecciosa

Explicar los mecanismos principales de proliferación y evasión del sistema inmune de los agentes infecciosos y su importancia para el proceso de infección

Definir los conceptos de patogenicidad y virulencia

Describir los métodos de medida de la virulencia de un determinado patógeno y cómo ésta afecta al desarrollo de la enfermedad

Enumerar los principales factores de virulencia de algunos patógenos y cual es la función que cumplen en el proceso de infección

Describir el mecanismo de acción de las toxinas presentadas en el curso y su importancia en el desarrollo de la enfermedad infecciosa

Explicar las bases moleculares y celulares de diferentes enfermedades infecciosas

Enumerar y explicar las técnicas actuales usadas para el diagnóstico de enfermedades infecciosas

Utilizar las principales fuentes de información científico‐técnicas relacionadas con la materia

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA





Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 5 A) Colectivas*: 5 B) Individuales:


Otro Trabajo Personal Autónomo: 77,5 A) Horas de estudio: 25 B) Preparación de Trabajo Personal: 52,5 C) ......:









DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias A lo largo del curso los/as alumnos/as deberán preparar, individualmente o en grupo, un trabajo que presentarán en un seminario al resto de compañeros/as. El trabajo estará basado en una de las revisiones de las que dispondrán en la plataforma virtual y que cubran algunos aspectos de conocimientos teóricos de los que serán evaluados. El uso de seminarios está relacionado con las competencias generales 5 y 6 y con el resultado del aprendizaje 10.

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Inglés (Bibliografía)

Curso 2016/2017



1.- Microbiota normal del cuerpo 2.- Vías de transmisión de las enfermedades infecciosas 3.- Interacción hospedador-patógeno. Etapas del proceso de infección 4.- Técnicas para el diagnóstico de la enfermedad infecciosa 5.- Bases moleculares y celulares de la patogénesis 6.- El proceso de infección en Salmonella como organismo modelo

Curso 2016/2017



La mayor parte de la bibliografía utilizada en la asignatura está basada en artículos científicos originales y revisiones que se colgarán en la página del curso. Además se recomiendan los siguientes libros:

Madigan M. T., Martinko J. M. , Parker J. (2003). Brock Biología de los microorganismos. Prentice‐Hall

Prescott L. M., Harley J. P., Kleinn D. A. (2004). Microbiología. Mc Graw Hill.

Snyder L., Champness W. (2007). Molecular genetics of bacteria. ASM Press.


Croisman E. A. (2001). Principles of bacterial patogénesis. Academia Press.

O’Connor L. (2006). Diagnostic bacteriology protocols. Humana Press.

Salyers A. A., Whitt D. D. (2002). Bacterial pathogenesis. A molecular approach. ASM Press.

Sansonetti P. (2010). Bacterial virulence. Basic principles, models and global approaches. Wiley‐Blackwell.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. La evaluación de los conocimientos teóricos se llevará a cabo por medio de un examen calificado de 0 a 10. (30%) La evaluación de las enseñanzas prácticas se realizará mediante el control de asistencia y la entrega de una memoria de prácticas. (20%) La evaluación del seminario se llevara a cabo en función del contenido, material bibliográfico usado, calidad de la presentación y calidad de la discusión. (30%) Además se calificará la asistencia y participación en las clases y sesiones de discusión. (20%)

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Nanotecnología


Curso 2016/2017



Denominación: Nanotecnología Código: 2103010 Módulo: 2‐Tecnología diagnóst. e investig. en Biomedicina Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Ana Paula Zaderenko Partida



5


Seminarios

Tutorías 5

Horas de estudio 60



TOTAL 125

Descriptores: Biología celular y nanotecnología. Introducción a los conceptos básicos. Nanomateriales: Propiedades y aplicaciones. Preparación y caracterización de materiales nanoestructurados. Sistemas de reparto de fármacos y genes. Nanobiosensores. Empleo de nanopartículas para la monitoriazación de tejidos trasplantados. Nanomateriales biocompatibles. Encapsulación celular. Inmunoaislamiento celular. El futuro de la nanomedicina.




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Ana paula Zaderenko

Partida

Dra. en Ciencias

Químicas (Química

Orgánica)


/ Química‐Física

Aula Virtual 2.5

Matilde Revuelta

González

Dra. en Farmacia Universidad Pablo de Olavide

/ Química‐Física

Aula Virtual 1.5

Mª Jesús Sayagués de

Vega

Dra. en Ciencias

Químicas

Instituto de Ciencia de

Materiales de Sevilla /

Aula Virtual 1

/ créditos



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. La Nanotecnología es una disciplina emergente que está adquiriendo una enorme relevancia en prácticamente todos los ambitos de la industria. En particular, la confluencia de la Nanotecnología y las ciencias biomédicas está proporcionando avances revolucionarios en los campos de la diagnosis y el desarrollo de nuevos fármacos. En este sentido, la asignatura de "Nanotecnología" tiene el propósito de dotar al alumno de conocimientos y competencias básicas en Nanomedicina, que le permitan abordar con éxito el nuevo reto que representa el enorme potencial de los sistemas nanoestructurados en la industria farmacéutica.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios).

Curso 2016/2017






Compromiso ético Otras competencias genéricas:



Aplicar principios fundamentales de nanotecnología a las ciencias biomédicas

Diseñar diferentes tipos de sistemas nanoestructurados de reparto de medicamentos y encapsulación celular

Aplicar los conocimientos adquiridos al diseño de Nanobiosensores

Desarrollar habilidades experimentales básicas en nanotecnología, incluyendo la síntesis, caracterización y funcionalización de diversos tipos de nanopartículas de aplicación biomédica

Acceder por búsquedas electrónicas en bases de datos a la literatura científico‐técnica en nanotecnología aplicada a ciencias biomédicas

Curso 2016/2017


Conoce bien la nomenclatura y terminología empleadas en nanotecnología, tanto general como aplicada a biomedicina

Entiende bien el concepto de material nanoestructurado, las propiedades que lo caracterizan y sus implicaciones tecnológicas

Conoce y comprende los ámbitos biomédicos de aplicación de la nanotecnología

Conoce los diversos tipos de nanomateriales de especial relevancia en biomedicina

Conoce los principales métodos de funcionalización de nanopartículas para aplicaciones biológicas

Es capaz de aplicar principios básicos de nanotecnología al diseño de sistemas nanoestructurados de reparto de medicamentos y biosensores

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA






Realización de Actividades Académicas Dirigidas: 15 A) Con presencia del profesor*: 5 B) Sin presencia del profesor: 10

Otro Trabajo Personal Autónomo: 70 A) Horas de estudio: 60 B) Preparación de Trabajo Personal: C) Clases teóricas por aula virtual: 10










4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Inglés: Bibliografía

Curso 2016/2017



Calendario del máster: http://bit.ly/ITYfKs

Bloque I. Nanotecnología: Introducción a los conceptos básicos. Nanomateriales: Clasificación, propiedades y aplicaciones. Bloque II. Preparación y caracterización de materiales nanoestructurados. Nanosistemas biocompatibles. Bloque III. Vectorización tisular y celular. Nanosistemas de reparto de fármacos y genes. Bloque IV. Nanobiosensores. Empleo de Nanopartículas para la monitorización. Bloque V. Ejemplos de aplicación. Perspectivas futuras de la nanomedicina.

Curso 2016/2017



Bionanotechnology, E.S. Papazoglou, A. Parthasarathy. Morgan and claypool, ISBN 9781598291384, 2007

Nanoparticulate Drug Delivery Systems, Thassu D., Deelers M., Pathak, Y. (Eds)., Series: Drugs and the Pharmaceutical Sciences, Vol. 166, Informa Healthcare, New York, ISBN 9780849390739, 2007.


Regenerative medicine, artificial cells and nanomedicine, Vol. 1, T.M.S. Chang, ISBN 978‐981‐270‐778‐9, World Scientific Publishing Company

Nanobiotechnology, Ed. C. Niemeyer, C. Mirkin, ISBN 3‐527‐306587 Wiley‐VCH, 2004

Silver Nanoparticles. ISBN 978‐953‐307‐028‐5, Intech, 2010

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. Evaluación continua del trabajo, realización de actividades, informes de prácticas y prueba final escrita.

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Mecanismos de diferenciación tisular y morfogénesis


Curso 2016/2017



Denominación: Mecanismos de diferenciación tisular y morfogénesis Código: 2103015 Módulo: 3‐Apli. organismos modelo en biotecnol. sanitaria Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Antonio Arroyo



5


Seminarios

Tutorías 5

Horas de estudio 65



TOTAL 125

Descriptores: Especificación celular, factores de transcripción, genes selectores. Polaridad celular y adhesión intercelular y a la matriz extracelular. Señalización intercelular. Migración celular. Reordenamientos celulares.




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Antonio Arroyo Doctor UPO / Biologia Celular correo‐e 0.1

James Castelli‐Gair

Hombría


Fernando Casares Doctor CABD‐CSIC‐UPO / [email protected] 0.1

Jose Luis Gomez‐

Skarmeta


Maria Dolores Martín

Bermudo


Juan Ramón Martínez

Morales


Joaquim Culi Doctor CABD‐CSIC‐UPO / [email protected] 0.25

Peter Askjaer Doctor CABD‐CSIC‐UPO / [email protected] 0.5

Acaimo González

Reyes


María José Sánchez

Sanz


Sol Sotillos Doctor CABD‐CSIC‐UPO / [email protected] 0.1


Curso 2016/2017



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. La biología del desarrollo estudia cómo la información codificada en el DNA permite que a partir de un huevo fecundado se forme un individuo adulto con capacidad a su vez de generar otro similar. El desarrollo analiza por qué las células se multiplican durante el crecimiento y cómo saben que el órgano adquiere su tamaño completo para detener su división. Estudiamos cómo grupos de células que en principio son idénticas pueden generar distintos tipos de órganos y tejidos tan diversos como un hueso y un músculo. Analizamos cómo estos tejidos y órganos son capaces de conectar entre si correctamente para hacer un organismo funcional permitiendo que un músculo mueva los huesos de la pierna o un ojo reciba la luz y la transmita al cerebro. Para esto estudiamos la multitud de genes distintos que existen y son necesarios para las funciones de cada célula y para coordinar el desarrollo de todos los tejidos de modo preciso. El estudio de la biología del desarrollo analiza cómo los genes se expresan en regiones precisas del organismo, cómo estos genes afectan las propiedades de las células en que se expresan (adhesión, forma, motilidad) y cómo eso hace que las células se reorganicen en tejidos. El estudio del desarrollo ha descubierto nuevos factores de transcripción y rutas de señalización que no solo contribuyen a formar el organismo, sino que también mantienen su función normal. Así hoy sabemos que la mutación de genes importantes en el desarrollo es la causa de gran parte de las enfermedades conocidas. Entender cómo estos genes funcionan en su estado normal permite solucionar los problemas derivados de su regulación anómala. Por otro lado conocer cómo los distintos órganos se forman es el primer paso que permitirá en el futuro la generación controlada de esos órganos para su sustitución o recuperación en individuos con diversas condiciones patológicas. Al margen de las posibles aplicaciones biotecnológicas, el conocimiento de los procesos de desarrollo es uno de los problemas intelectuales mas completos y apasionantes que se pueden abordar hoy en biología.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Los estudiantes deben tener conocimientos de Genética molecular y Biología Celular

Curso 2016/2017


Entender como los genes controlan procesos de desarrollo

Entender como las interacciones celulares llevan a la generación de tejidos.

Entender como los tejidos forman órganos

Entender cómo los genes responsables del desarrollo mantienen la homeostásis del organismo

Entender como las células troncales mantienen la homeostásis del organismo en condiciones normales.

Conocer cómo se trabaja con distintos modelos de biología del desarrollo Otras competencias genéricas:







Describir los mecanismos moleculares de especificación celular

Describir los sistemas más comunes de señalización intercelular

Describir los mecanismos moleculares y celulares de la morfogénesis


Conocer las estrategias para estudiar la falta o reducción de la función de un gen de los distintos organismo de interés en biotecnología

Conocer los mecanismos moleculares de especificación celular

Conocer los sistemas más comunes de señalización intercelular

Conocer los mecanismos moleculares y celulares de la morfogénesis

Discernir qué es ciencia puntera en biología del desarrollo

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA





Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 5 A) Colectivas*: B) Individuales:


Otro Trabajo Personal Autónomo: 10 A) Horas de estudio: 65 B) Preparación de Trabajo Personal: C) ......:

Realización de Exámenes: 5 A) Examen escrito: B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal): 65







Otros (especificar): Las visitas serán a laboratorios concretos del CABD (CSIC/UPO) donde se harán parte de los trabajos prácticos.

DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias Los estudiantes seleccionarán un tema de interés en el área de Biología del Desarrollo para la escritura de una revisión bibliográfica sobre el mismo. Para ello deberán seleccionar varios artículos de investigación punteros sobre el tema y escribir una revisión bibliográfica de un máximo de cinco páginas. En la revisión se deberá enfatizar cuáles son las aportaciones de esos estudios al campo de la biología del desarrollo así como las cuestiones que quedan pendientes por resolver. Se deberán citar los artículos/fuentes de referencia que se han utilizado para el trabajo bibliográfico.

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) La bibliografía será mayoritariamente en Inglés

Curso 2016/2017



1-Introducción: a- De la Embriología a la Biología del desarrollo b- Universalidad de los procesos de desarrollo. c- Conceptos básicos en biología del desarrollo: Morfogénesis, organogénesis.... d- Factores de transcripción y control del desarrollo. e- Rutas de señalización desarrollo: JAK/STAT, EGF, FGF, Notch, Wint, Hedgehog..... 2- De la célula al tejido: Epitelios y meseenquimas. a- Integración de la forma celular, la polaridad celular y la adhesión celular. b- Transiciones Epitelio Mesenquima. c- Mesodermo: Determinación y diferenciación de la musculatura. 3- Patterning (Dando forma a un tejido sin crecimiento celular) a- Subdivisión del huevo unidades equivalentes idénticos. La segmentación. c- Diversificación de los segmentos. Genes Hox d- Inhibición lateral: la ruta de Notch. 4- Proliferación celular y adquisición de forma Discos imaginales y formación del ojo de Drosophila 5- Estrategias de determinación celular. a- Herencia de determinantes celulares. Desarrollo del embrión temprano de C. elegans b- Determinación por interacciones celulares. Formación de la vulva. 5- Células en movimiento: a- Migración y adhesión celular en Drosophila b- Migración en vertebrados (pez cebra): Procesos generales de los movimientos morfogenéticos. Migración de la cresta neural. Formación del ojo de vertebrados. Migración axonal en el ojo. 6- Desde el gen hasta el órgano: Cómo la regulación de la expresión génica de una molécula señalizadora controla la órganogenesis. Regulación de la expresión génica en el desarrollo normal y en la enfermedad. 7- Células madre y desarrollo: a-Las células germinales de Drosophila. Oogénesis. b-La hematopoyésis: Celulas madre de sangre. Regulación génica en la maduración de tipos celulares de sangre en ratón. Sangre y vasculatura, definición de progenitores comunes. Uso de los progenitores hematovasculares para la reconstrucción de un tejido. 8-Regulación del crecimiento en Drosophila. a-El metábolismo lipídico.

Curso 2016/2017



BIOLOGÍA MOLECULAR DE LA CÉLULA

* Bruce Alberts

* Editorial Omega

* 1592 páginas

* ISBN: 8428213518 ISBN‐13: 9788428213516

* (2004)

Biología del Desarrollo. (Incluye Cd‐Rom)

* Gilbert, Scott

* Editorial Médica Panamericana S.A.

* 882 páginas

* Idioma: Español

* ISBN: 9500608693 ISBN‐13: 9789500608695

* 7a edición (2005)


MOLECULAR PRINCIPLES OF ANIMAL DEVELOPMENT

* Alfonso Martinez Arias and Alison Stewart

* Oxford University Press

* 410 páginas

* ISBN: 0‐19‐879284‐0

* (2002)

PRINCIPLES OF DEVELOPMENT

* Lewis Wolpert et al.

* Oxford University Press

* 576 páginas

* ISBN: 978‐0‐19‐927536‐6

* (1998)

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. Asistencia y Participación en el aula 30%, Trabajo y exámenes 50%, Prácticas y trabajos de prácticas 20%.

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Regeneración Tisular


Curso 2016/2017



Denominación: Regeneración tisular Código: 2103016 Módulo: 3‐Apli. organismos modelo en biotecnol. sanitaria Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Francisco Martín Bermudo



5


Seminarios 3,5

Tutorías 5

Horas de estudio 75



TOTAL 125

Descriptores: Bases moleculares de la regeneración tisular; Aspectos regulatorios de la regeneración tisular; Interacciones de tejidos en la regeneración tisular; Regeneración de células adultas, tejidos y órganos.




Nombre y apellidos


Francisco Martín

Bermudo

Catedrático de

Universidad

Universidad Paablo

Olavide / Nutrición y

Bromatología

[email protected] 2

Benoit Gauthier Investigador Senior CABIMER / Células

Troncales


Anabel Rojas

González

Investigador

Postdoctoral

CABIMER / Células

Troncales


/ créditos



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. La regeneración tisular es otros de los aspectos fundamentales de la biotecnología sanitaria. Su estudio permitirá conocer los mecanismos internos que tienen los distintos tejidos para regenerarse y reparar las lesiones. Se abordará como potenciar esa regeneración tisular. Esta asignatura sienta las bases para la posterior asignatura de Bioingeniería de tejidos.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). En general los contenidos de la asignaturas no tienen una especial complicación. En cualquier caso es conveniente tener conocimientos básicos de biología celular y biología molecular y biología del desarrollo. Asimismo, se ha de poseer conocimientos de inglés suficientes para manejar con soltura bibliografía científica en este idioma. Por último, el estudiante debe saber buscar información en bases de datos bibliográficas y ser capaz de redactar en correcto español un texto científico.

Curso 2016/2017


Ser capaz de entender, analizar y evaluar de una forma crítica la literatura científica relacionada con la Biotecnología sanitaria

Ser capaz de desarrollar un proyecto en el Área de la Biotecnología sanitaria

Conocer como se trabaja en un laboratorio del campo de la Biotecnología sanitaria

Ser capaz de describir, analizar y evaluar resultados científicos.

Ser capaz de proponer una hipótesis, diseñar experimentos para responder a la misma y evaluar la solidez de la metodología científica


Poseer y comporender los conocimientos propios del Master





Describir las bases moleculares de la regeneración tisular

Describir como ocurre la regeneración tisular en las distintas especies animales

Conocer el potencial de regeneración natural de los distintos tejidos y órganos.

Entender como se puede incrementar el potencial de regeneración de los tejidos

Describir la importancia de los biomateriales en la regeneración tisular

Describir la importancia de la regeneración tisular en la medicina translacional

Conocer las posibles aplicaciones de la regeneración tisular en la medicina actual


Conocer los mecanismos moleculares de especificación celular

Conocer los sistemas más comunes de señalización intercelular

Conocer los mecanismos moleculares y celulares de la morfogénesis

Saber los protocolos más comunes empleados en la regeneración de tejidos

Entender que tejidos son más susceptibles de regenerarse

Comprender la importancia que tendrá esta disciplina en la medicina moderna

Curso 2016/2017

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA




Exposiciones y Seminarios*: 3,5

Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 5 A) Colectivas*: B) Individuales: 5

Realización de Actividades Académicas Dirigidas: A) Con presencia del profesor*: 10 B) Sin presencia del profesor: 25










DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias Los estudiantes realizarán y defenderan un proyecto de investigación relacionado con la temática de la asignatura.

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) La segunda lengua es el ingles. Toda la bibliografía científica relevante y de actualidad está en inglés. Uno de los profesores es canadiense e impartirá su docencia en inglés. Además, algunos contenidos de la asignatura presentada por los otros profesores (diapositivas, vídeos y enlaces de internet) pueden estar en inglés.

Curso 2016/2017



1.‐ Concepto e importancia de la regeneración tisular. Organismos modelos de regeneración tisular. Reparación versus regeneración. 2.‐ El concepto de nicho: interacciones de tejidos en la regeneración tisular. 3.‐ Tejidos adultos susceptibles de regenerarse. Plasticidad celular. Fuentes de regeneración tisular. 4.‐ Bases moleculares de la regeneración tisular.

5.‐ Señalización en la regeneración tisular. 6.‐ Papel de los biomateriales en la regeneración tisular. Protocolos de regeneración tisular 7.‐ Regeneración tisular "in vitro" versus "in vivo". 8.‐ Aplicaciones de la regeneración de tejidos.

Curso 2016/2017



Atala A., Lanza R., Thomson J., Nerem R. (2008). Principles of Regenerative Medicine. Burlington. Elsevier.

Stacey G., Davis J. (2007). Medicines from animal cell culture. Chichester. John Wiley & Sons Inc.

Yannas IV. (2001). Tissue and organ regeneration in adults. New York. Springer‐Verlag

Yannas IV. (2005). Regenerative medicine I. New York. Springer‐Verlag.

Jonhson PC., Mikos AG. (2010). Advances in tissue engineering. volume 2: Stem cells. New York. Mary Ann Liebert Inc.

Davies J. (2012). Tissue regeneration: from basic biology to clinical application.


Just U., Cross M. (2008). Stem cells tissue regeneration and repair. Cell tissue organ. Vol 188, 1‐2. Dresden. Karger

Arenas E. Towards stem cell replacement therapies for Parkinson Diseases. Biochem Biophys Res Commun. 2010, 396(1): 152‐156.

Soria B., Bedoya FJ., Tejedo JR., Hmadcha A., Ruiz‐Salmerón R., Lim S., Martin F. Cell therapy for diabetes mellitus: an opportunity for stem cells?. Cells Tissues Organs. 2008,188(1‐2): 70‐77

Benigni A., Morigi M., Remuzzi G. Kidney regeneration. Lancet. 2010, 375: 1310‐1317

Seta N., Kuwana M. Derivation of multipotent progenitors from human circulating CD14+ monocytes. Exp Hematol. 2010, 38: 557‐563.

Ten Broek RW., Grefte S., Von den Hoff JW. Regulatory factors and cell populations involved in skeletal muscle regeneration. J Cell Physiol. 2010, 224: 7‐16.

Kawaguchi Y. (2013). Sox9 and programming of liver and pancreatic progenitors. J Clin Invest. 1;123(5):1881‐6.

Koudstaal S, Jansen Of Lorkeers SJ, Gaetani R, Gho JM, van Slochteren FJ, Sluijter JP, Doevendans. (2013). Concise review: heart regeneration and the role of cardiac stem cells. Stem Cells Transl Med. 2(6):434‐43

Duncan AW, Soto‐Gutierrez A. (2013). Liver repopulation and regeneration: new approaches to old questions. Curr Opin Organ Transplant. 18(2):197‐202.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. La calificación final será el conjunto de las notas obtenidas participación en clases (10%), exposición del trabajo (60%) y examen final (30%).

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Bioingeniería de tejidos


Curso 2016/2017



Denominación: Bioingeniería de tejidos Código: 2103017 Módulo: 4‐Estrategia de generación de nuevos fármacos Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Francisco Martín Bermudo



5


Seminarios 3,5

Tutorías 5

Horas de estudio 75



TOTAL 125

Descriptores: Fundamentos de la bioingeniería de tejidos; Aplicaciones de la bioingeniería de tejidos a órganos y sistemas; Estrategias prácticas de la bioingeniería de tejidos.




Nombre y apellidos


Francisco Martín

Bermudo

Catedrático de

Universidad

Universidad Pablo Olavide

/ Nutrición y Bromatología

[email protected] 2

Francisco Bedoya

Bergua

Catedrático de

Universidad


/ Bioquímica

[email protected] 2

/ créditos

Abdelkrim Hmadcha Doctor Contratado

Investigador

Consejería de

Salud/CABIMER / Células

Troncales

[email protected] 1



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. La bioingeniería de tejidos es un campo multidisciplinar que aplica los principios de la ingeniería y de las ciencias de la vida para desarrollar substitutos biológicos que restauren, mantengan o mejoren una función tisular. Un aspecto importante de la Biotecnología sanitaria es el desarrollo de las tecnologías biológicas que nos permiten diseñar y creas tejidos para su posterior trasplante en enfermos. La bioingeniería de tejidos es un campo de la biotecnología que se encuentra actualmente en constante expansión, desarrollo y cambio continuo. Además se alimenta de una combinación de tecnologías emergentes cada vez mas poderosas, como son las células troncales, la reprogramación genética, la genómica, la proteómica, la nanotecnología y la ingeniería de tejidos. El objetivo fundamental de la asignatura es que los estudiantes conozcan las bases de la bioingeniería tisular. Además, se pretende que entiendan la importancia de esta displicina en el entorno científico y tecnológico actual, de manera que valoren sus aplicaciones en el contexto de la investigación básica y traslacional. Finalmente, es importante saber cuales son las diversas aplicaciones de la Bioingeniería Celular y Tisular en los campos de la Biomedicina y la Medicina Regenerativa.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). En general los contenidos de la asignaturas no tienen una especial complicación. En cualquier caso es conveniente tener conocimientos básicos de biología celular y biología molecular. Asimismo, se ha de poseer conocimientos de inglés suficientes para manejar con soltura bibliografía científica en este idioma. Por último, el estudiante debe saber buscar información en bases de datos bibliográficas y ser capaz de redactar en correcto español un texto científico.

Curso 2016/2017


Ser capaz de entender, analizar y evaluar de una forma crítica la literatura científica relacionada con la Biotecnología sanitaria











Entender el carácter multidisciplinar de la bioingeniería tisular.

Diseñar soluciones a problemas biotecnológicos utilizando como herramienta la bioingeniería de tejidos.

Identificar los tipos celulares y materiales se emplean en la bioingeniería de tejidos.

Describir las aplicaciones y las limitaciones de la bioingeniería de tejidos.

Diseñar soluciones biotecnológicas utilizando adecuadamente las principales técnicas que emplea la bioingeniería de tejidos

Identificar las principales características de una sala blanca y sus aplicaciones

Conocer los aspectos éticos relacionados con las aplicaciones prácticas de la bioingeniería de tejidos.

Curso 2016/2017


Conocer los sistemas de biomateriales

Conocer las fuentes celulares y factores de crecimiento que se usan habitualmente en la bioingeniería de tejidos.

Entender los protocolos empleados en la bioingeniería de tejidos

Saber las aplicaciones reales y actuales de la bioingeniería de tejidos

Saber desenvolverse en una sala blanca

Conocer las limitaciones éticas de la bioingeniería de tejido

4.‐ METODOLOGÍA



Clases Prácticas*:

Exposiciones y Seminarios*: 7,5


Realización de Actividades Académicas Dirigidas: A) Con presencia del profesor*: 10 B) Sin presencia del profesor: 25









Curso 2016/2017


DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias Los estudiantes realizarán y defenderan un proyecto de investigación relacionado con la temática de la asignatura.

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) La segunda lengua es el ingles. Toda la bibliografía científica relevante y de actualidad está en inglés. Las clases serán en castellano, aunque algunos contenidos de la asignatura (diapositivas, vídeos y enlaces de internet) pueden estar en inglés.

Curso 2016/2017



1.‐ Introducción a la bioingeniería de tejidos: estado actual y perspectivas futuras. 2.‐ Bases moleculares y biológicas de la bioingeniería de tejidos. 3.‐ Fuentes de tejidos para ser usados en la bioingeniería de tejidos. 4.‐ El uso de los biomateriales en la bioingeniería tisular. 5.‐ Métodología y protocolos de la bioingeniería de tejidos. 6.‐ Las aplicaciones terapeúticas de la bioingeniería de tejidos. 7.‐ Las salas blancas: usos, normas, metodología de trabajo, regulación, aplicaciones. 8.‐ Ensayos clínicos. 9.‐ Aspectos de regulación y éticos de la bioingeniería de tejidos.

Curso 2016/2017



Atala A., Lanza R., Thomson J., Nerem R. (2008). Principles of Regenerative Medicine. Burlington. Elsevier.

Lanza R., Langer R., Vacanti J. (2007). Principles of Tissue Engineering. Burlington. Academic Press.

Meyer U., Meyer T., Hanschel J., Wiessmann HP. (2009). Fundamentals of Tissue Engineering and Regenerative medicine. New York. Springer‐Verlag.

Palsson BO., Bathia SN. (2003). Tissue engineering. New york. Pearson Prentice Hall Bioengineering.


Paquet C, Larouche D, Bisson F, Proulx S, Simard‐Bisson C, Gaudreault M, Robitaille H, Carrier P, Martel I, Duranceau L, Auger FA, Fradette J, Guérin SL, Germain L. Tissue engineering of skin and cornea: development of new models for in vitro studies. Ann N Y Acad Sci. 2010, 1197: 166‐177.

Teo AK, Vallier L. Emerging uses of stem cells in regenerative medicine. Biochem J. 2010, 428(1): 11‐23.

Stoddart MJ, Grad S, Eglin D, Alini M. Cells and biomaterials in cartilage tissue engineering. Regen Med. 2009, 4: 81‐98.

Zhu J. Bioactive modification of poly(ethylene glycol) hydrogels for tissue engineering. Biomaterials. 2010, 31: 4639‐4656.

Sharma R, Greenhough S, Medine CN, Hay DC. Three‐dimensional culture of human embryonic stem cell derived hepatic endoderm and its role in bioartificial liver construction. J Biomed Biotechnol. 2010, Article ID 236147

Tissue Engineering. Eberli D. (2010). In‐teh. Vurkevor, Croatia.

Platt JL., Cascalho M. (2013) New and old technologies for organ replacement. Curr Opin Organ Transplant. 18(2):179‐85.

Castells‐Sala C, Semino CE. (2012). Biomaterials for stem cell culture and seeding for the generation and delivery of cardiac myocytes. Curr Opin Organ Transplant. 17(6):681‐7.

Stoltz JF, Huselstein C, Schiavi J, Li YY, Bensoussan D, Decot V, De Isla N. (2012). Human stem cells and articular cartilage tissue engineering. Curr Pharm Biotechnol. 13(15):2682‐91

Underhill GH, Galie P, Chen CS, Bhatia SN. Bioengineering methods for analysis of cells in vitro. Annu Rev Cell Dev Biol. 28:385‐410.

Wu L, Cai X, Zhang S, Karperien M, Lin Y. Regeneration of articular cartilage by adipose tissue derived mesenchymal stem cells: perspectives from stem cell biology and molecular medicine. J Cell Physiol. 2013 May;228(5):938‐44.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. La calificación final será el conjunto de las notas obtenidas participación en clases (10%), exposición del trabajo (60%) y examen final (30%).

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MATERIA/ASIGNATURA

Terapia Celular


Curso 2016/2017



Denominación: Terapia Celular Código: 2103018 Módulo: 4-Estrategia de generación de nuevos fármacos Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Juan R. Tejedo



5


Seminarios 8

Tutorías 5

Horas de estudio 75



TOTAL 125

Descriptores: Concepto de células troncales; Tipos y propiedades de las células troncales; El potencial de las células troncales; Aplicaciones y estado actual de la terapia celular. Concepto de salas blancas; Aplicaciones de las salas blancas; Como se trabaja en una sala blanca; Normativa de salas blancas




Nombre y apellidos


Juan R. Tejedo

Huamán

Profesor Titular de

Universidad

Universidad Paablo

Olavide / Bioquímica y

Biología Molecular

[email protected] 3

Gladys M. Cahuana

Macedo

Profesor

Contratado Doctor


/ Bioquímica y Biología

Molecular

[email protected] 1

Abdelkrim Hmadcha Investigador

Fundación Progreso

y Salud

CABIMER‐Fundación

Progreso y Salud / Células

Troncales

[email protected] 1

Carmen Salguero

Aranda

Colaborador

Honorario‐Becaria

FIS

CABIMER‐Fundación

Progreso y Salud /

Terapia Celular y

Medicina Regenerativa

[email protected] 1



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. Un aspecto importante de la Biotecnología sanitaria es el desarrollo de las tecnologías biológicas que nos permiten diseñar y crear tipos celulares para su posterior trasplante en enfermos. La terapia célular es un campo de la biotecnología que se encuentra actualmente en constante expansión, desarrollo y cambio continuo. Además se alimenta y alimenta de una combinación de tecnologías emergentes cada vez mas poderosas, como son las células troncales, la reprogramación genética, la genómica, la proteómica, la nanotecnología y la bio‐ingeniería de tejidos.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). En general los contenidos de la asignaturas no tienen una especial complicación. En cualquier caso es conveniente tener conocimientos básicos de biología celular y biología molecular.

Curso 2016/2017


Ser capaz de entender, analizar y evaluar de una forma critica la literatura científica relacionada con la Biotecnología Sanitaria.











Identificar los distintos tipos de células troncales.

Identificar los posibles usos de las células troncales

Diseñar soluciones a problemas biotecnológicos utilizando como herramienta la terapia celular.

Identificar las principales características de una sala blanca y sus aplicaciones

Entender las normativas de las salas blancas y la importancia de su aplicación.



Saber cultivar células troncales.

Conocer los principales protocolos de diferenciación de las células troncales.

Saber las posibilidades de la terapia celular y sus problemas y limitaciones.

Saber desenvolverse en una sala blanca

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4.‐ METODOLOGÍA


Clases Teóricas*: 25 (h)

Clases Prácticas*: 7 (h)













DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias Se impartirán seminarios cada dos alumnos, de una hora de duración cada uno, donde se comentarán diversos aspectos que tiene que ver con: complemento de la información teorica, las aplicaciones de la terapia celular en diferentes enfermedades y con aspectos éticos y de regulación de la misma.

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) La segunda lengua es el ingles. Toda la bibliografía científica relevante y de actualidad está en inglés

Curso 2016/2017



1.‐ Introducción a la terapia celular.Pluripotencia, autorenovación y diferencación 2.‐ Celulas troncales embrionarias. 3.‐ Células troncales adultas 4.‐ Celulas troncales pluripotentes inducidas 5.‐ Métodología y protocolos de diferenciación. 6.‐ Aplicaciones seleccionadas de la terapia celular 7.‐ Producción de células para terapia celular 8.‐ Salas blancas y terapia celular 9,. Ensayos clínicos y terapia celular

Curso 2016/2017



Adrian Gee, MIBiol, PhD. (2009). Cell Therapy: cGMP Facilities and Manufacturing. Springer. ISBN: 978‐0‐387‐89583‐3

Audet J; William L. Stanford (2009). Stem Cells in Regenerative Medicine: Methods and Protocols. Humana Press. ISBN 978‐1‐58829‐797‐6.

Lanza R., Langer R., Vacanti J. (2007). Principles of Tissue Engineering. Burlington. Academic Press.


Quattrocelli M, Cassano M, Crippa S, Perini I, Sampaolesi M. Cell therapy strategies and improvements for muscular dystrophy. Cell Death Differ. 2010 Aug;17(8):1222‐9.

Yasuhiro Kazuki, et al. Complete Genetic Correction of iPS Cells From Duchenne Muscular Dystrophy. Molecular Therapy vol. 18 no. 2 feb. 2010. 386‐393.

Bernat Soria, Abdelkrim Hmadcha, Francisco J. Bedoya, Juan R. Tejedo. Generation of islets from stem cells. Principles of Tissue Engineering (Third Edition), 2007, Pages 605‐618

McKnight KD, Wang P, Kim SK. Deconstructing pancreas development to reconstruct human islets from pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 2010 Apr 2;6(4):300‐8.

Yin D, Wang Z, Gao Q, Sundaresan R, Parrish C, Yang Q, Krebsbach PH, Lichtler AC, Rowe DW, Hock J, Liu P. Determination of the fate and contribution of ex vivo expanded human bone marrow stem and progenitor cells for bone formation by 2.3ColGFP. Mol Ther. 2009 Nov;17(11):1967‐78.

Prockop DJ. Repair of tissues by adult stem/progenitor cells (MSCs): controversies, myths, and changing paradigms. Mol Ther. 2009 Jun;17(6):939‐46.

Drowley L, Okada M, Beckman S, Vella J, Keller B, Tobita K, Huard J. Cellular Antioxidant Levels Influence Muscle Stem Cell Therapy. Mol Ther. 2010 Jul 27.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. La calificación final será el conjunto de las notas obtenidas en la elaboración, exposición y defensa del seminario (30%), informe de prácticas (25%) y examen final (45%).

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Estrategias para la generación de nuevos fármacos


Curso 2016/2017



Denominación: Estrategia para la generación de nuevos fármacos Código: 2103019 Módulo: 4‐Estrategia de generación de nuevos fármacos Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Matilde Revuelta González



5


Seminarios 10

Tutorías 5

Horas de estudio 60



TOTAL 125

Descriptores: Fármacos de origen natural. síntesis de compuestos con posible actividad biológica. Identificación de posibles dianas. Péptidos como fármacos. Anticuerpos, RNAi. Problemas de los ensayos biológicos (alta

procesividad, similitud del modelo, penetrabilidad del fármaco, otros). Del laboratorio a la farmacia, ensayos clínicos




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Francisco Araujo

Rodríguez

Doctor en Farmacia Consejería de Salud y

Bienestar Social / Hospital

de la Línea de la Concepción

[email protected] 1

Ana Paula Zaderenko

Partida

Doctor en Química Universidad Pablo de Olavide

/ Area Química Física

[email protected] 1

Rafael Rodríguez Daga Doctor en Biología Universidad Pablo de Olavide

/ Centro Andaluz de Biología

del Desarrollo

[email protected] 1

Matilde Revuelta

González

Doctor en Farmacia Universidad Pablo de Olavide

/ Area Química Física

[email protected] 2



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. Las reglas que gobiernan la síntesis o el diseño de nuevos fármacos han evolucionado enormemente a lo largo de los últimos años. Se han introducido procedimientos basados en modificaciones en la estructura química de las moléculas, que representan una mejor interacción dentro del organismo . Al mismo tiempo los avances en genética y bioquímica han provocado la aparición de nuevos fármacos más específicos y eficaces. Desde que se empieza a estudiar una molécula con posible actividad terapéutica hasta que esta se pone en el mercado, convertida en un medicamento, hay numerosos estudios y ensayos a realizar incluyendo estudios farmacocinéticos, farmacodinámicos y clínicos.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). Es conveniente que el alumnado tenga conocimientos básicos de bioquímica y química orgánica

Curso 2016/2017


Poseer y comprender los conocimientos impartidos en el programa.


Comprender expresar con claridad y oportunidad las ideas, conocimientos, problemas y soluciones a un público más amplio, especializado o no especializado (y sentimientos a través de la palabra, adaptándose a las características de la situación y la audiencia para lograr su comprensión y adhesión).




Realizar propuestas para el diseño de nuevas pruebas diagnósticas o de generación de fármacos novedosos



Saber aplicar principios fundamentales de biotecnología al diseño de nuevos fármacos

Saber interpretar los resultados obtenidos en ensayos de actividad.

Desarrollar habilidades experimentales básicas, incluyendo técnicas de síntesis, caracterización y ensayo de fármacos


Demostrar una buena capacidad de comprender y analizar la literatura científica especializada en diseño de fármacos y de las conexiones con otras áreas.

Curso 2016/2017


Conocer diferentes técnicas de identificación, aislamiento y caracterización de posibles dianas y sus implicaciones en el diseño racional de fármacos

Demostrar una buena capacidad de comprender y analizar la literatura científica especializada en diseño de fármacos y de las conexiones con otras áreas.

Conocer bien las diferentes etapas del desarrollo de un fármaco y sus implicaciones en la generación de nuevos medicamentos

Conocer las diferentes técnicas de ensayo in vitro y biológicos de fármacos, así como sus ventajas e inconvenientes.

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA






Realización de Actividades Académicas Dirigidas: 5 A) Con presencia del profesor*: B) Sin presencia del profesor: 5

Otro Trabajo Personal Autónomo: A) Horas de estudio: 50 B) Preparación de Trabajo Personal: 10 C) clases virtuales: 14








Otros (especificar): aula virtual

DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias Se van a realizar seminarios y sesiones de discusión de articulos científicos relacionados con el temario de la asignatura Se llevarán a cabo tres sesiones de prácticas de laboratorio

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Ingles en la bibliografía de la asignatura

Curso 2016/2017



Estudio de la interacción fármaco y proteínas receptoras y sus consecuencias farmacológicas. Farmacocinetica y farmacodinamia. Farmacomodulación Fármacos de origen natural. Utilización de productos minerales, de origen botánico o animal. Transformación de las moléculas naturales en fármacos Las levaduras como organismo modelo para la busqueda de nuevos fármacos. Síntesis de compuestos con posible actividad biológica. Péptidos como fármacos. Anticuerpos, RNAi. Modificaciones estructurales que afectan a la actividad farmacologica. Cribado Modelización Molecular. QSAR Ensayos biológicos Del laboratorio a la farmacia, ensayos clínicos Agencia Española de Medicamentos

Curso 2016/2017



Avendaño C. (2º edición). Introducción a la química farmacéutica

Delgado Cirilo, A. (2º edición). Introducción a la química terapéutica.


A. Delgado, C. Minguillón y J. Joglar. (2002). “Introducción a la síntesis de fármacos”. Síntesis. Madrid.

Shargel L, Yu ABC. (2005). Applied Biopharmaceutics and Pharmacokinetics. 5ª ed. New York: McGraw‐Hill

Silverman R.B (1982).The organic chemistry of drug design and drug action. Academis press, London.

Donald J. Birkett. (2005). FARMACOCINETICA FACIL. McGRAW‐HILL/INTERAMERICANA DE ESPAÑA, S.A.

Terrett N.K. (2001). Química combinatoria

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. Se calificará al estudiante mediante la realización de un examen final por el aula virtual. Se valorará al mismo tiempo el informe final de prácticas, el trabajo final de la asigantura, la asistencia y la participación en la asignatura. Es obligatorio la asistencia a las prácticas así como superar el examen final para aprobar la asignatura..

Curso 2016/2017

MÁSTER DE BIOTECNOLOGÍA AMBIENTAL, INDUSTRIAL Y ALIMENTARIA


MATERIA/ASIGNATURA

Iniciativa empresarial y transferencia de tecnología


Curso 2016/2017

FICHA POR ASIGNATURA CURSO ACADÉMICO 2015‐2016

1.‐ DEFINICIÓN DE LA ASIGNATURA Denominación: Iniciativa empresarial y transferencia de tecnología Código: 2103020 Módulo: 5‐Formación profesional y empresarial en Biotecno. Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Carmen Cabello Medina



5


Seminarios

Tutorías 10




TOTAL 125

Las horas consignadas en “Horas de estudio”, “Actividades dirigidas” y “Actividades de evaluación” representan el tiempo dedicado por los estudiantes a la elaboración de la “Idea de Negocio”. La preparación de este trabajo implica estudiar el material de la asignatura y poner en práctica los conceptos aprendidos. El trabajo presentado servirá de base para la evaluación de este módulo.

Descriptores: Generación de empresas de base biotecnológica y desarrollo de proyectos empresariales en Europa,

España y Comunidades Autónomas. Fuentes de financiación. Estrategias de marketing en biotecnología. Experiencia de empresas biotecnológicas.

1 Valorar entre 25-30 horas/crédito

Curso 2016/2017



Nombre y apellidos


Rafael Camacho

Fumanal

Doctor The Wandering Innovator [email protected] 0,15

José Luis Barbero

Navarro

Doctor UPO / Departamento de

Organización de Empresas

y Marketing

[email protected] 0,9

Jose Luis Millet Roig Doctor Universidad Politécnica de

Valencia / Instituto IDEAS


Carmen Cabello

Medina

Doctor UPO [email protected] 0,3

Juan Martínez

Armesto

Doctor CSIC / [email protected] 0,4

Javier Echabe Oria Doctor CSIC [email protected] 0,3

Bárbara Larrañeta

Gómez‐Camineto

Doctora UPO / Departamento de

Organización de Empresas

y Marketing


Magdalena Requena

Miranda

Itinera Consultoría y

Desarrollo SL /




1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. La formación en Iniciativa Empresarial y Transferencia de Tecnología proporciona a los estudiantes del máster conocimientos, habilidades y herramientas sobre creación de empresas. De este modo, los estudiantes adquirirán una nueva perspectiva desde la que puedan valorar el potencial de la investigación en biotecnología como posible fuente de oportunidades para la creación de empresas.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). No existen requisitos de acceso, salvo los establecidos para cursar el Máster

Curso 2016/2017


Realizar propuesta de planes de financiación y estrategias de marketing de la empresa de biotecnología


Integrarse y colaborar de forma activa en la consecución de objetivos comunes con otras personas, áreas y organizaciones, en contextos tanto nacionales como internacionales




Conocer los conceptos básicos de elaboración de un plan de negocio

Conocer los mecanismos de acceso a financiación pública y privada

Conocer los mecanismos legales de protección de la propiedad intelectual

Conocer los mecanismos de explotación comercial de resultados

Conocer las actividades y divisiones típicas de las empresas de base biotecnológica

Integrarse de forma productiva en el funcionamiento normal de una empresa de base biotecnológica

Curso 2016/2017


El/la estudiante es capaz de elaborar un proyecto de creación de una empresa de base tecnológica

El/la estudiante es capaz de desarrollar un trabajo profesional científico‐técnico en el marco de una empresa de base biotecnológica, de acuerdo con las necesidades estratégicas y comerciales de ésta.

Curso 2016/2017

4.‐ METODOLOGÍA

4.1. NÚMERO DE HORAS DE TRABAJO DEL ALUMNO: Se consignarán las horas (número aproximado) de trabajo del alumnado en cada uno de los grandes apartados. Nº de Horas:





Realización de Actividades Académicas Dirigidas: 25 A) Con presencia del profesor*: B) Sin presencia del profesor: 25

Otro Trabajo Personal Autónomo: 52,5 A) Horas de estudio: 27,5 B) Preparación de Trabajo Personal (preparación del trabajo que será objeto de la evaluación): 25 C) ......:

Realización de Exámenes: A) Examen escrito: B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal):








DESARROLLO Y JUSTIFICACIÓN: Se deben detallar las actividades dirigidas, seminarios o cualquier otra que se pretenda realizar y justificar su necesidad en relación con los objetivos y las competencias En las sesiones se combinarán: • Visitas de expertos (de instituciones y empresas del sector de la biotecnología) para dar a conocer la estructura del sector, las principales fuentes de financiación y mecanismos de propiedad industrial asociados al sector de la biotecnología. • Clases (teórico/prácticas) en las que se enseñarán los aspectos básicos para que los estudiantes puedan articular una idea de negocio, y conocer las cuestiones esenciales de la gestión de empresas. Las actividades de tutorías la Exposición y debate estarán dedicadas al seguimiento y discusión de las ideas de negocio a elaborar por los estudiantes

4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…)

Curso 2016/2017


6.‐ HORARIO DE CLASE. TEORÍA, PRÁCTICA Y TUTORIAS Se recomienda usar el calendario del Aula Virtual de la asignatura, o el calendario general del máster. Incluir aquí las horas de las clases teóricas, prácticas, tutorias y/o seminarios en general. Sólo indicar las horas, y no las fechas, a no ser que estas últimas cambien de semana en semana. Las tutorias se programarán de acuerdo con el profesor o profesora Calendario del máster: Biotecnología Sanitaria https://www.google.com/calendar/[email protected]&ctz=Europe/Madrid&s=web&rlz=0&as=0&ac=0%2C190>

El sector de la Biotecnología Aproximación a la creación de empresas Plan de Negocio y modelo Canvas. Visión General Protección del conocimiento: propiedad industrial e intelectual Colaboraciones Público‐Privadas Valoración e identificación de oportunidades de negocio Modelos de negocio en el sector de la biotecnología Financiación de iniciativas emprendedoras Análisis de la cadena de valor Gestionar una empresa (la función de dirección) y gestión de nuevas empresas de base tecnológica Habilidades directivas y de negociación

Curso 2016/2017



No va a seguirse un manual que pueda considerarse Bibliografía Obligatoria, aunque como texto más relevante debe destacarse:

Hine, D. and Kapeleris, J. (2007). Innovation and entrepreneurship in biotechnology, an international perspective : concepts, theories and cases. Edward Elgar.


Otros textos de interés:

Barringer, B. R., Ireland, R. D. (2012). Entrepreneurship: Successfully Launching New Ventures, 4/e. Prentice Hall.

Burns, L.R. (2008). The Business of Healthcare Innovation. Cambridge University Press.

Guía de Creación de Bioempresas (2002). Madri+d.

Hisrich , R., Peters, M., Shepherd, D. (2010). Entrepreneurship. McGraw Hill.

Manzanera, A. (2011). Finanzas para emprendedores. Deusto.

Ruiz‐Ávila, L. El Cerdo que canta: Leyes, parábolas y proverbios para sobrevivir a la innovación (libro electrónico en Bubok).

Timmons, J. (2008). New Venture Creation: Entrepreneurship for the 21st Century. McGraw Hill Higher Education.

Curso 2016/2017

8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los alumnos. La asistencia se considera obligatoria. La asignatura No podrá superarse en caso de que se acumulen más de tres faltas no justificadas. Evaluación: La evaluación estará basada en la Idea de Negocio que elaborarán los estudiantes en grupo, a lo largo de la asignatura.

Curso 2016/2017


MATERIA/ASIGNATURA

Ómicas aplicadas a la biomedicina


Curso 2016/2017



Denominación: Ómicas aplicadas a la Biomedicina Código: 2103024 Módulo: 2‐Tecnología diagnóst. e investig. en Biomedicina Curso / Semestre / Carácter: 1º / 2º / Optativa Coordinador de la asignatura: Antonio Arroyo Luque



5


Seminarios

Tutorías 10

Horas de estudio 50

Actividades dirigidas 7,5


TOTAL 125

Descriptores: Diseño de fármacos personalizados, detección de la singularidad de la enfermedad, cambios en el transcriptoma debido al tratamiento de fármacos, medicina personalizada.

Introducción a las técnicas básicas en proteómica. Sistemas de detección de proteínas High‐throughput. Detección de modificaciones postraduccionales. Proteómica aplicada al análisis de fluidos humanos: métodos, aplicaciones y perspectivas. Aplicaciones de las técnicas proteómicas al descubrimiento de fármacos. Estudios proteómicos sobre el efecto de los fármacos sobre rutas de señalización: estudio diferencial del fosfoproteoma. Identificación de dianas farmacológicas. Técnicas proteómicas para la interacción entre fármacos‐proteínas: sitio de interacción, receptores. Uso de chips de proteínas. Uso de la proteómica para la detección de biomarcadores y diagnóstico diferencial.

Bases tecnológicas para la detección de metabolitos en muestras animales. Obtención, manipulación y preparación de muestras de tejidos para análisis bioquímico y metabolómica. Metabolómica celular. NMR. Usos de la electroforesis, cromatografía (HPLC y capilar) y espectrometría de masas en el estudio de metabolitos. Técnicas quimiométricas en el estudio de metabolitos. Metabolómica aplicada al diagnóstico de patologías..




Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Créditos Antonio Arroyo Luque Dr. en Biología UPO / Biología Celular Aula virtual 1.9

Jose Antonio

Horcajadas Almansa

Dr. en Biología UPO / Genética Aula virtual 2

Jesús Ruiz‐Cabello Dr. en Física Centro Nacional de

Investigaciones

Cardiovasculares / CNIC

Aula virtual 0.83

Bruno Martínez Haya Dr. en Química UPO / Química Física Aula Virtual 0.27

Curso 2016/2017



1. PRESENTACIÓN. Se trata de justificar la relevancia de la asignatura y su relación con el programa. Se puede reflejar las aportaciones de la misma en el proceso formativo del alumnado haciendo mención a las competencias profesionales e investigación que otorga. ¿Por qué NO surte el mismo efecto un mismo tratamiento farmacológico en personas afectadas de una misma patología? La búsqueda de respuestas a esta pregunta es lo que ha dado origen en los últimos tiempos al desarrollo de lo que se viene denominando como Medicina Personalizada. Las respuestas hay que buscarlas en el propio genoma humano. Si bien es cierto que todas las personas poseemos los mismos genes también no es menos cierto que existe una gran diversidad de polimorfismos génicos con diferentes grados de variación alélica. Estos polimorfismos no sólo pueden estar presentes en genes diana de un fármaco sino también en genes que codifican para proteínas metabolizadoras del mismo. Las distintas combinaciones alélicas de toda esta serie de polimorfismos génicos determinan en gran medida el amplio espectro de respuestas/efectos que un mismo fármaco puede ejercer en personas distintas. La Farmacogenómica trata de analizar todas estas variantes con objeto de predecir, en una primera instancia, y de monitorizar la eficiencia de un determinado tratamiento farmacológico. El seguimiento de dicho tratamiento implica la extracción de una muestra de la persona tratada para su análisis. En ocasiones esta muestra (e.g. fluidos corporales) no presenta células sobre las que realizar un análisis genómico o, si las presenta, no representan una muestra adecuada para dicho análisis. Este sería el caso, por ejemplo, de un tratamiento dirigido a un tejido específico para lo cual las variaciones deberían analizarse en las células de dicho tejido (biopsias). Esto, sin embargo, no resulta siempre posible (pensemos por ejemplo en patologías de tipo neurodegenerativo) y se hace necesaria una vía alternativa de análisis. Mediante estudios de Proteómica podemos, además de diagnosticar, realizar dicho seguimiento ya que el perfil de proteínas presentes en la muestra extraída presenta alteraciones con respecto a una muestra de una persona no tratada o que no presenta la patología. La presencia/ausencia, así como las variaciones en la expresión de estas proteínas, se utiliza como biomarcadores de la patología y del progreso de la misma tras la administración de un tratamiento farmacológico. Además, puesto que la mayoría de los fármacos actúan sobre las proteínas, los nuevos avances en las tecnologías proteómicas están permitiendo mejorar el proceso de búsqueda y descubrimiento de fármacos. En última instancia se puede estudiar la fisiología de un sistema biológico, i.e. saber cómo está funcionando, mediante el análisis de los metabolitos presentes en dicho sistema. En el pasado, la única manera de entender los procesos que tienen lugar en la célula era utilizar el ARN mensajero (mRNA). Por lo general, esta aproximación limita el estudio a trozos y piezas del proceso total. El propósito de la metabolómica es detectar y cuantificar los diferentes metabolitos y así ser capaces de “capturar instantáneas” del estado fisiológico celular a partir de los perfiles metabólicos obtenidos. Farmacogenómica, Proteómica y Metabolómica constituyen tres potentes herramientas que podemos utilizar para el diagnóstico, pronóstico y terapia de diversas patologías.

2. REQUISITOS DE ACCESO. Competencias básicas necesarias para cursar la materia. Se indicará los conocimientos, procedimientos y actitudes que el alumnado deberá dominar para cursar la asignatura y comprender el programa en su totalidad (requisitos obligatorios). ‐ El alumnado debe tener conocimientos básicos de Genética y Bioquímica. ‐ Es conveniente que el alumnado posea conocimientos básicos en Fisiopatología, Farmacocinética y sobre las propiedades físico‐químicas de proteínas.

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Poseer y comprender conocimientos.

Manejar las principales fuentes de información.

Demostrar habilidades de aprendizaje que les permitan continuar estudiando de un modo que habrá de ser en gran medida autodirigido o autónomo.

Capacidad para resolver problemas.

Aplicación de conocimientos. Otras competencias genéricas:

Demostrar una buena capacidad de acceder por búsquedas electrónicas en las bases de datos a la literatura científico‐técnica.



1. Entender la relevancia de los factores genéticos en la variabilidad de la respuesta a los fármacos.

2. Conocer los polimorfismos genéticos y las modificaciones en la actividad terapéutica de los medicamentos.

3. Conocer los genes que codifican enzimas o transportadores que influyen en la farmacocinética de los fármacos, los que codifican la diana molecular de acción de los fármacos o de la vía en la cual actúa y los genes involucrados en la enfermedad de interés a tratar o en su fenotipo intermedio.

4. Entender las implicaciones metabólicas de las variaciones genéticas en enzimas que metabolizan diversos medicamentos y el aprovechamiento de este conocimiento para mejorar la terapéutica farmacológica.

5. Aprender las tecnologías genómicas y proteómicas aplicadas al descubrimiento y desarrollo de nuevos medicamentos.

6. Analizar las implicaciones bioéticas de los estudios farmacogenéticos.

7. Conocer y entender las estrategias de terapéutica basadas en terapia génica y transferencia de genes.

8. Resolver con una propuesta científicamente coherente casos prácticos de proteómica.

9. Diseñar estrategias para el diagnóstico de enfermedades usando como herramientas la proteómica y la metabolómica.

10. Discernir el mejor protocolo y tecnología para el análisis de metabolitos de muestras animales.

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1. El/la estudiante es capaz de obtener con facilidad literatura adecuada sobre cualquier tema científico‐técnico.

2. El/la estudiante es capaz de encontrar información adecuada, estructurarla y estudiarla de forma autónoma.

3. Conocer las técnicas de análisis en proteómica.

4. Conocer las aplicaciones que la proteómica tiene en el diagnóstico diferencial y el descubrimiento de fármacos.

5. El/la estudiante es capaz de integrar los conceptos biológicos y técnicos relacionados con la biotecnología sanitaria.

6. Conocer las técnicas principales utilizadas en el análisis metabolómico.

7. Conocer las aplicaciones de la metabolómica para el diagnóstico y seguimiento de enfermedades.

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4.‐ METODOLOGÍA





Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): A) Colectivas*: 5 B) Individuales: 5

Realización de Actividades Académicas Dirigidas: A) Con presencia del profesor*: B) Sin presencia del profesor: 7,5

Otro Trabajo Personal Autónomo: A) Horas de estudio: 50 B) Preparación de Trabajo Personal: C) Actividades por Aula virtual: 20

Realización de Exámenes: A) Examen escrito: 2,5 B) Exámenes orales (control del Trabajo Personal): 5









4.3. SEGUNDAS LENGUAS DE USO Se debe especificar las lenguas distintas al español empleadas, así como su uso (docencia, bibliografía…) Inglés: Bibliografía

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1. El genoma humano. Métodos de estudio. Modelos experimentales. Herramientas bioinformáticas en investigación en farmacogenómica. Polimorfismos de los sistemas de metabolización de fármacos. Genética molecular de la las proteínas metabolizadoras de fármacos. Aspectos básicos de las tecnologías ómicas. Introducción a la Farmacogenómica. Farmacogenética vs. Farmacogenómica. Estudios farmacogenéticos, desde el concepto a la práctica. El papel del diagnóstico molecular en farmacogenética. El papel de la farmacogenética en industria farmacéutica (metabolismo de fármacos y efectos farmacológicos). Farmacogenética e implicaciones clínicas. Limitaciones de la farmacogenética y la farmacogenómica. El futuro papel de la farmacogenética en la medicina personalizada. Farmacogenómica y nuevos fármacos. Farmacogenómica en proyectos clínicos. Otras áreas de farmacogenómica, oncogenómica, cardiogenómica y neurogenómica. 2. Introducción a las técnicas básicas en Proteómica. Detección de modificaciones postraduccionales. Uso de chips de proteínas. Uso de la proteómica para la detección de biomarcadores y diagnóstico. Aplicaciones de las técnicas proteómicas al descubrimiento de fármacos. Técnicas proteómicas para el estudio de interacciones fármaco‐proteína: sitios de interacción, receptores. 3. Generalidades de la metabolómica. Técnicas metabolómicas y metabonómicas: Espectrometría de masas. Técnicas cromatográficas y electroforéticas. Espectroscopía de Resonancia Magnética nuclear y espectroscopía de resonancia de ángulo mágico de spin de alta resolución. Análisis de datos metabolómicos: Bases de datos de metabolómica. Métodos quimiométricos de análisis de datos: Análisis de componentes principales, análisis de mínimos cuadrados parciales (PLS), análisis discriminante (DA), PLS‐DA, método SIMCA. Programas comerciales y programas de dominio público. Métodos no lineales: redes neuronales, análisis de conglomerados. Aplicaciones de la Metabolómica: Metabolómica celular Análisis de tejidos y fluidos biológicos. Aplicaciones: Enfermedades cardiovasculares, Cáncer, enfermedades del sistema respiratorio, aplicaciones en agroalimentación. Aplicaciones toxicológicas y en la industria farmacéutica.

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6.‐ HORARIO DE CLASE. TEORÍA, PRÁCTICA Y TUTORIAS Se recomienda usar el calendario del Aula Virtual de la asignatura, o el calendario general del máster. Incluir aquí las horas de las clases teóricas, prácticas, tutorías y/o seminarios en general. Solo indicar las horas, y no las fechas, a no ser que estas últimas cambien de semana en semana. FARMACOGENÓMICA (12 horas): Sesiones de una hora cada una, en horario de mañana (febrero‐abril, 2016). METABOLÓMICA (6 horas): Dos sesiones (tarde y mañana) de tres horas cada una (marzo, 2016). PROTEÓMICA: (12 horas): Sesiones de teoría de una hora cada una, en horario de mañana (marzo, 2016). Sesión práctica (1 hora) en horario de mañana (marzo, 2016). Calendario del máster: http://bit.ly/ITYfKs

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PHARMACOGENETICS. Ian P. Hall and Munir Pirmohamed. Taylor and Francis.

PHARMACOGENETICS. Wendell W. Weber. Oxford University Press.

Proteins and proteomics: a laboratory manual. R.J. Simpson. (2003) Cold Spring Harbor.

Biotecnología aplicada a la identificación y validación de dianas terapéuticas. Informe de vigilancia tecnológica. Marta López et al. (2005) Genoma España‐Salud Humana.

A novel R‐package graphic user interface for the analysis of metabonomic profiles. JL Izquierdo‐García, I Rodriguez, A Kyriazis, P Villa, P Barreiro, M Desco, J Ruiz‐Cabello. BMC Bioinformatics 10, 363‐373 (2009).

Analytical and statistical approaches to metabolomics research. HJ Issaq, QN Van, TJ Waybright, GM Muschik, TD Veenstra. J. Sep. Sci. 32, 2183‐2199 (2009).

Mass spectrometry‐based metabolomics. K Dettmer, PA Aronov, BD Hammock. Mass Spectrom. Rev. 26, 51‐78 (2007).

NMR‐based metabonomic approaches for evaluating physiological influences on biofluid composition. ME Bollard, EG Stanley, JC Lindon, JK Nicholson, E Holmes. NMR Biomedicine 18, 143‐162 (2005).


http://www.nigms.nih.gov/Initiatives/PGRN

http://www.pharmgkb.org/

http://www.actionbioscience.org/genomic/barash.html

Proteomics of human body fluids: Principles, methods and applications. (2007) V. Thongboonkerd. Humana Press.

The handbook of Metabonomics and metabolomics. John C. Lindon, Jeremy K Nicholson, Elaine Holmes (2007). Elsevier (Amsterdan, Holanda).

Metabonomics in toxicity assessment. Donald G Robertson, J Lindon, J K Nicholson, E Holmes (2005). CRC Press (Boca Ratón, EEUU.)

In vivo NMR spectroscopy: principles and techniques (2ª edición). Robin A de Graaf (2007). John Wiley and Sons (New York, EEUU).

Introduction to mass spectrometry: instrumentation, applications and strategies for data interpretation (4ª edición). J. Throck Watson, O. David Sparkman (2007). John Wiley and Sons (New York, EEUU).

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8.‐ SISTEMA DE EVALUACIÓN Se deben detallar, incluyendo los criterios (asistencia, esfuerzo, adquisición de conocimientos, implicación…) e instrumentos de evaluación empleados (prácticas de laboratorio, de campo, examen escrito, oral, exposición en grupo, trabajos…), así como el valor porcentual de cada criterio de evaluación. Debe tener una cierta coherencia con el método de trabajo elegido y las actividades propuestas a los estudiantes. CONSIDERACIONES GENERALES El alumnado deberá ser capaz de comprender los fundamentos de la asignatura. Para ello se realizará una evaluación continuada durante las clases presenciales y los seminarios. Se valorará especialmente el trabajo encargado en las clases presenciales y su desarrollo durante las clases virtuales, así como la participación del alumnado en las actividades programadas.. Esta asignatura consta de tres módulos: Farmacogenómica, Metabolómica y Proteómica. La calificación de cada módulo es proporcional a la carga que representa en el total de la asignatura: FARMACOGENÓMICA: 40% METABOLÓMICA: 20% PROTEÓMICA: 40% INSTRUMENTOS DE EVALUACIÓN Dentro de cada módulo, el profesor responsable del mismo establece los instrumentos y criterios de evaluación. En líneas generales, se utilizarán los siguientes instrumentos de evaluación: Exposición publica en seminarios. Ejercicios/Problemas Examen escrito de desarrollo de conceptos incluidos en la asignatura. Por módulos, los criterios de evaluación serán: METABOLÓMICA: Participación en clase 25% Ejercicios 25% Trabajo 50% PROTEÓMICA: Participación en clase 25% Ejercicios/Problemas 25% Prácticas 25% Trabajo/Examen 25%

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MATERIA/ASIGNATURA

Prácticas en Empresas /

Iniciación a la Investigación

“Prácticas del Máster”


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Denominación: Prácticas en empresas / Iniciación a la Investigación Módulo: 5‐Formación profesional y empresarial en Biotecnología / 6‐Formación investigadora en Biotecnología Curso / Semestre / Carácter: 2º / 1er (prácticas) y 2º (proyecto) / Optativa Coordinador de la asignatura: Juan R. Tejedo Huamán

Créditos Totales:

12

Prácticas de laboratorio o similar: al menos 200 horas (máximo 250 horas) Tutorias, realización del cuaderno de laboratorio, búsqueda bibliográfica, realización del informe final, asistencia y participación en la jornada de biotecnología: 100 horas (mínimo 50 horas)

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2.‐ PROFESORES RESPONSABLES DE LA ASIGNATURA

Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Juan R. Tejedo Huamán Dr. Universidad Pablo de Olavide /

Bioquímica y Biología Molecular

[email protected] / 954‐977‐614/

Despacho B06 edificio 22

3.‐ DESCRIPCIÓN

Las Prácticas del máster de Biotecnología Sanitaria, a realizar en una empresa o grupo de

investigación, se configuran como un proceso de formación práctico complementario al final del

máster. Con ellas, el estudiante puede contrastar los conocimientos adquiridos durante el

máster con la realidad del mundo empresarial o investigador, integrado en un grupo

investigador. En última instancia, pretende ser un puente entre la Universidad y la Sociedad,

permitiendo acercar dos realidades que deben participar a través del diálogo y la implicación

responsable en un proyecto común, como es la formación de los estudiantes universitarios: los

futuros profesionales en el ámbito de la biotecnología. Al final de las mismas, el estudiante

tendrá que presentar un informe sobre el trabajo realizado.

4.‐ MATRICULACIÓN

La matriculación en cualquiera de las dos asignaturas de prácticas, a realizar durante el 2º curso

del máster, podrá realizarse presencialmente en el CEDEP o escribiendo un correo electrónico a la

dirección del CEDEP.

4.1. SELECCIÓN DE LA ASIGNATURA:

A la hora de matricularse se deberá seleccionar una de las 2 asignaturas de prácticas: Iniciación

a la Investigación, o Prácticas de Empresas. Ambas asignaturas tienen el mismo peso dentro del

máster, y la misma carga docente.

En el caso de que el destino de las prácticas vaya a ser una empresa privada, o bien el objetivo

de las prácticas sea el desarrollo o propuesta de un producto biotecnológico, o bien el proyecto

en el que se enmarcan las prácticas incluya la colaboración con una empresa privada, se deberá

elegir para la matriculación la asignatura de “Prácticas de Empresas”.

En el resto de casos, especialmente cuando las prácticas vayan a realizarse en el seno de un

grupo de investigación, se deberá elegir para la matriculación la asignatura de “Iniciación a la

Investigación”.

En caso de duda sobre la asignatura a elegir, se deberá consultar con el tutor interno de las

prácticas, y decidir según sus recomendaciones y las preferencias del estudiante.

Todos los estudiantes tienen la obligación de registrarse en la base de datos ICARO de la UPO,

pasándose por la Fundación Universidad‐Sociedad. Además, una semana antes de la finalización

de las prácticas el estudiante tiene que enviar una solicitud de activación (a la dirección

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[email protected]), en la base de datos ICARO, del cuestionario de Evaluación del

Alumno y de la Empresa.

4.2. PRERREQUISITOS:

Se recomienda que los estudiantes que quieran cursar esta asignatura hayan superado al menos

los 60 ECTS del primer curso del máster. En el caso de querer matricularse de la asignatura de

“Prácticas en Empresas”, se requerirá haber superado previamente la asignatura de “Iniciativa

empresarial y transferencia tecnológica”.

4.3. CONTEXTO DENTRO DE LA TITULACIÓN:

La asignatura de Prácticas constituye una asignatura a realizar al final de la titulación, previa al

Trabajo Fin de Máster, que tiene como finalidad que el estudiante ponga en práctica los

conocimientos, habilidades y destrezas adquiridos a lo largo de todo el desarrollo del máster en

el contexto de la práctica profesional.

5.‐ ASIGNACIÓN DE DESTINOS

5.1. PRESENTACIÓN DE PROPUESTAS:

Para facilitar la elección de los destinos de prácticas, antes de finalizar el primer curso se

publicará una lista de propuestas junto con la persona que la oferta cada una de ellas. Estas

propuestas podrán venir desde investigadores de la UPO o de fuera de ella, así como desde

empresas bioitecnológicas, existiendo un número limitado de cada tipo. Aunque el número de

propuestas siempre abarcará al número de estudiantes matriculados, como mínimo.

Además de la publicación de propuestas de prácticas en un documento de texto, se organizará

un seminario en el que algunas de las propuestas serán presentadas en persona. Una vez

realizadas las propuestas, el estudiante dispondrá de al menos 1 semana para tomar la decisión,

y para ello podrá ponerse en contacto directo sólo con lo responsables de las propuestas que

así lo permitan o requieran. Tras este periodo, el estudiante deberá rellenar y entregar (por el

campus virtual) un formulario con al menos 8 preferencias, ordenadas de forma priorizada.

En cualquier caso, el estudiante también podrá proponer un laboratorio o empresa donde

realizar sus prácticas, previo convenio con la UPO (en caso de ser necesario), especialmente

cuando ya se encuentre realizando un trabajo de investigación en un determinado centro. En

este último caso, la adjudicación del destino será automática, aunque el estudiante también

deberá entregar el formulario de preferencias, en el que indicará un único destino de prácticas.

Si fuera necesaría la formalización del convenio (o consultar la existencia previa de éste), así

como enviar información del máster a la persona de contacto en el destino encontrado por el

estudiante, habrá que consultar con el profesor responsable de la asignatura de prácticas

(página 3 de esta guía).

5.2. ASIGNACIÓN DE PROPUESTAS:

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Para la asignación de los destinos de prácticas, se revisarán los formularios de preferencias

entregados y se tendrán en cuenta los siguientes criterios, por orden de prioridad:

Preferencia mostrada por el estudiante.

Nota de acceso al máster.

Adecuación del destino con el currículum del estudiante.

Calendario de realización.

Asimismo, en el caso de que la comisión académica o los responsables de la propuesta lo

consideren necesario, podrá requerirse una entrevista con el estudiante.

A los pocos días de cerrarse el plazo de recogida de preferencias, se publicará una lista

provisional de adjudicaciones, tras lo que se dejarán unos días para su revisión. Finalmente, se

publicarán las adjudicaciones definitivas (si hubiera cambios con respecto a la lista anterior), las

cuales ya serán irrevocables, comprometiéndose el estudiante a acudir en fecha y hora al centro

que les haya sido asignado, en el momento del comienzo de las prácticas.

5.3. INCORPORACIÓN:

Las fechas de comienzo (por defecto el 1 de octubre) y de fin (por defecto el 30 de junio) serán

solicitadas al estudiante, antes de que realize la matriculación, teniendo en cuenta que durante

ese rango de fechas es en el que el estudiante estará asegurado en el centro de destino.

Los estudiantes que acrediten documentalmente por motivos laborales o profesionales

(mediante contrato de trabajo, alta en RETA, en caso de trabajador autónomo) la imposibilidad

de seguir el horario general establecido deberán comunicarlo al profesor responsable de las

prácticas al inicio del curso (entregando los documentos acreditativos compulsados por

registro), quedando condicionada su adscripción a las disponibilidades de los centros de

prácticas dentro de su calendario laboral y a las dificultades acreditadas.

En cualquier caso, una vez realizada la asignación de destinos, si el estudiante no justificara

documentalmente la imposibilidad de incorporación en el destino asignado, deberá realizar

obligatoriamente sus prácticas en dicho destino, para poder superar la asignatura.

5.4. PRÁCTICAS EN EL EXTRANJERO:

La asignatura de prácticas podrá realizarse en el extranjero, siempre que se tenga el acuerdo

con un investigador externo y preferentemente dentro del programa Erasmus Prácticas. Para

obtener más información al respecto, el estudiante debe ponerse en contacto con el Área de

Relaciones Internacionales y Cooperación de la UPO.

5.5. CONSULTA DE PRÁCTICAS DE CURSOS ANTERIORES:

Para consultar las prácticas y trabajos fin de máster realizados en cursos anteriores, y así

hacerse una idea sobre el tipo de proyectos a realizar durante el segundo curso del máster,

pueden consultarse los números publicados de la revista Biosaia (revista de los másteres de

Biotecnología Sanitaria y Ambiental, Industrial y Alimentaria;

http://www.upo.es/revistas/index.php/biosaia/), concretamente los trabajos de las secciones

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“Comunicaciones orales” y “Pósteres”, que representan resúmenes de las prácticas de

estudiantes que ya han finalizado el máster o están apunto de hacerlo.

6.‐ ASIGNACIÓN DE TUTORES

Una vez el estudiante tiene asignado el destino de prácticas, se le asignarán uno o varios

tutores, encargados del seguimiento y evaluación de las mismas. Las figuras de tutores serán de

2 tipos:

6.1. TUTOR INTERNO:

El tutor interno (o tutores internos) es el tutor principal del estudiante, con quien deberá estar

en contacto a lo largo de todo el curso. Este tutor deberá ser un docente de la UPO, el cual

estará encargado de las siguientes tareas:

Coordinarse con el tutor externo (si lo hubiera), para determinar las actividades que realizará

el estudiante y resolver las dificultades que puedan surgir. Para dar comienzo a las prácticas, el

tutor interno deberá tener una primera reunión con el estudiante y posteriormente ponerse en

contacto por primera vez con el tutor externo (si lo hubiera).

Realizar el seguimiento del estudiante una vez incorporado al centro de prácticas y verificar el

cumplimiento de los objetivos del programa. Para ello, el tutor interno y el estudiante deberán

rellenar una serie de documentos de seguimiento (punto 7 de este documento) tras una serie

de reuniones obligatorias.

Evaluar las prácticas realizadas por el estudiante. El tutor interno deberá rellenar una hoja de

evaluación y poner una nota final al estudiante, según las prácticas realizadas y la memoria

final de prácticas entregada.

6.2. TUTOR EXTERNO:

El tutor externo (o tutores externos) es el tutor del centro de prácticas. En el caso de que el

tutor del centro de prácticas fuera un docente de la UPO, éste asumiría los papeles de tutor

interno y externo conjuntamente. El tutor externo tendrá las siguientes funciones:

Facilitar la incorporación del estudiante en la dinámica del centro, proponiendo su plan de

trabajo.

Supervisión de las tareas asignadas al estudiante y asesoramiento sobre aquellas cuestiones

que desconozca y que sean interesantes desde el punto de vista profesional.

Control del desarrollo de las prácticas (asistencia y horario), orientando al estudiante, hacia

el correcto desenvolvimiento de las mismas y a la evaluación de la práctica junto con el tutor

interno.

Establecer contacto con el tutor interno cuando las circunstancias lo requieran. Este último

punto es fundamental, y se requiere una primera toma de contacto entre el tutor externo y

el interno (a recordar por el estudiante) antes del comienzo formal de las prácticas.

7.‐ SEGUIMIENTO DE LAS PRÁCTICAS

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El estudiante debe velar por que se produzca un seguimiento continuo de las prácticas, en el

que éste debe informar a su tutor interno a lo largo de todo el transcurso de las mismas. Para

ello, ambos deberán reunirse en varias ocasiones y rellenar una serie de documentos de

seguimiento, que el estudiante deberá entregar firmados y dentro de plazo en el campus

virtual. Las fechas de entrega de estos documentos serán publicadas a principio de curso en el

mismo campus virtual, y la falta en la entrega de alguno de estos documentos podrá suponer la

no superación de la asignatura.

En concreto, estos documentos son 3:

MBTGSAN ‐ A1 ‐ Documento de incorporación de prácticas.

MBTGSAN ‐ A2 ‐ Documento de seguimiento de prácticas.

MBTGSAN ‐ A3 ‐ Memoria final de prácticas.

8.‐ JORNADA DE BIOTECNOLOGÍA

Antes de la finalización de la asignatura de prácticas se organizará la Jornada anual de

Biotecnología de los Másteres de la UPO, en una fecha anunciada previamente en el calendario

del máster. La participación activa en la misma no será obligatoria, pero sí que será tenida en

cuenta en la evaluación final de la asignatura (ver documento E1).

Esta jornada constituye un lugar de encuentro entre los estudiantes de los másteres de

biotecnología de la Univeridad Pablo de Olavide e investigadores y empresas del sector

biotecnológico, y trata de hacer partícipe a los estudiantes en un tipo de evento que formará

parte en su futuro profesional.

Previamente a la celebración de la jornada, se solicitará el envío de un resumen de las prácticas

realizadas por el estudiante, en un formato de 'abstract' de artículo científico. Posteriormente,

los resúmenes recibidos serán evaluados por la comisión académica del máster y se elegirán

algunos de ellos para ser presentados como charla oral, y el resto serán elegidos para su

presentación en la jornada como póster.

Todos los resúmenes recibidos, así como las charlas invitadas y los posibles artículos completos

que también podrán presentarse, serán publicados en el próximo número de la revista Biosaia

(http://www.upo.es/revistas/index.php/biosaia/).

9.‐ EVALUACIÓN

El objetivo de la evaluación radica en determinar si se han alcanzado los objetivos planteados en

el programa de la asignatura. Además, la evaluación permite otorgar al estudiante una

calificación, con el fin de computarle los créditos para la configuración del expediente académico.

Hay que tener en cuenta que para la evaluación de las prácticas, tarea que recae en el tutor

interno, habrá que tener entregados en plazo, en el campus virtual, los documentos A1, A2 y A3.

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El documento A3 es un formulario que permite completar la memoria final de las prácticas, y

tiene los siguientes apartados:

Datos personales y datos sobre la práctica en si:

◦ Datos del estudiante.

◦ Datos del tutor o tutores externos y denominación del destino.

◦ Fecha de realización de la práctica.

◦ Breve descripción de la empresa o grupo de investigación.

Resumen (no más de 4 páginas). Incluyendo opinión personal de las prácticas, su visión

sobre la empresa, sus vivencias, los problemas que se le presentaron en base a la

aplicación o no aplicación de conocimientos.

Resumen de los seminarios o conferencias a los que ha asistido (no más de una página):

jornada de biotecnología.

La redacción del informe final tendrá de ajustarse a los siguientes criterios:

Claridad y sencillez expositivas del contenido.

Utilización adecuada de los conceptos técnicos y científicos.

Presentación exenta de errores formales (ortográficos, sintácticos, semánticos y

estéticos).

Teniendo en cuenta lo entregado en el documento A3 y todo el desarrollo de las prácticas, el tutor

interno deberá rellenar la hoja de evaluación (documento E1) y la nota resultante constituirá la

nota final de la asignatura de “Iniciación a la Investigación” o “Prácticas de Empresas”. En esta hoja

de evaluación hay una parte que podría tener que rellenar el tutor externo, a petición del tutor

interno. Por ejemplo, si el cuaderno de laboratorio no pudiera salir del centro en el que se realizan

las prácticas, la nota del mismo será asignada por el tutor externo, que deberá enviársela al tutor

interno. Asimismo, en la hoja de evaluación también se evaluará la participación en la Jornada de

Biotecnología.

Una vez asignada la nota de prácticas, el tutor interno deberá entregar el acta con dicha nota

(documento E2). Asimismo, al final de la defensa de Trabajos Fin de Máster, la comisión académica

del máster se reunirá y asignará una “Matrícula de Honor” a un estudiante de cada asignatura de

prácticas, para lo cual se modificará el expediente correspondiente. Para la asignación de esta nota

se podrá tener en cuenta la nota obtenida en el Trabajo Fin de Máster, así como otros criterios de

calidad.

10.‐ COMPETENCIAS

10.1. COMPETENCIAS TRANSVERSALES/GENÉRICAS:

Capacidad para organizar y planificar las actividades propias de su campo de trabajo.

Capacidad de resolución de problemas.

Capacidad de gestión de la información.

Capacidad de análisis y síntesis.

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Capacidad comunicativa oral y escrita en español e inglés.

Capacidad de aprendizaje autónomo.

Capacidad de reflexión y decisión.

Capacidad para trabajar en un equipo interdisciplinar.

Habilidades en las relaciones interpersonales y profesionales.

Responsabilidad.

Iniciativa y capacidad de aportación de nuevas ideas o puntos de vista.

Adaptación a nuevas situaciones.

Capacidad de comunicar y aptitud social.

10.2. COMPETENCIAS ESPECÍFICAS:

10.2.1. Prácticas en empresa

Integrarse de forma productiva en el funcionamiento normal de una empresa de base

biotecnológica.

Conocer las actividades y divisiones típicas de las empresas de base biotecnológica.

Entender las implicaciones sociales, legales y éticas del desarrollo y comercialización de

productos biotecnológicos.

Tener habilidad para obtener, recuperar y analizar información desde diferentes

fuentes relacionadas con su actividad profesional.

Conocer los métodos de expresión oral en los diferentes foros.

Tener habilidad para comunicarse en los diversos contextos.

10.2.2. Iniciación a la investigación

Adquirir la disciplina y los hábitos básicos de un laboratorio de investigación.

Conocer y practicar los principios de higiene y seguridad en el laboratorio.

Conocer el método científico y la lógica del trabajo experimental.

Conocer la metodología básica de un laboratorio de investigación, incluyendo el diseño

y ejecución de experimentos de forma correcta, su seguimiento, documentación y

análisis de los datos experimentales.

Desarrollar una línea de investigación, diseñando y ejecutando experimentos

específicos para responder a preguntas concretas, valorando los resultados obtenidos

en cada punto y tomando decisiones sobre el desarrollo experimental en función de los

resultados.

Ser capaz de explicar y discutir resultados y estrategias experimentales con personas

con distinto grado de formación en la materia.

11.‐ OBJETIVOS

11.1. Prácticas en empresa

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Permitir un primer contacto de los estudiantes con la práctica en el campo empresarial o

institucional. De esta forma, potenciar el rendimiento personal de los estudiantes a través

del reforzamiento de los conocimientos adquiridos a lo largo de su carrera académica.

Que el estudiante adquiera una experiencia de trabajo profesional en áreas de actividad

específica del biotecnólogo.

Que aprenda, en el lugar de destino, la dinámica concreta de un trabajo en equipo,

métodos y técnicas de trabajo.

Que adquiera una actitud crítica y autocrítica.

Que aporte ideas con una actitud positiva y constructiva.

Valorar y tomar decisiones profesionales en las que primen los aspectos sociales, legales y

éticos sobre los intereses comerciales.

11.2. Iniciación a la investigación

El/la estudiante es capaz de integrarse en un laboratorio de investigación y de planificar y

llevar a cabo su trabajo de acuerdo con las normas y protocolos de trabajo generales y

específicos del laboratorio.

El/la estudiante trabaja siguiendo estrictamente las normas de higiene y seguridad en el

laboratorio.

El/la estudiante entiende la metodología de un trabajo científico y es capaz de seguir una

línea de investigación expuesta en un artículo o charla científica.

El/la estudiante conoce diversos métodos de uso común, y es capaz de diseñar y ejecutar

correctamente experimentos que utilizan dichos métodos.

El/la estudiante es capaz de dar respuesta a un problema de carácter científico mediante el

desarrollo de una línea de investigación específica.

El/la estudiante participa activamente en sesiones de discusión sobre distintas líneas de

investigación en el seno de un grupo de investigación.

12.‐ OTROS ASPECTOS GENERALES

Se realizarán prácticas profesionales en diferentes áreas implicadas en la docencia del

máster y centros con los que se haya concertado un convenio de colaboración con esta

Universidad, en los que se desarrollen principalmente actividades de cualquiera de los

perfiles o salidas laborales de la biotecnología sanitaria.

Seguro del estudiante. El estudiante estará cubierto por el Seguro Escolar y por un seguro

de responsabilidad civil a cargo de la Universidad. En aquellos supuestos en que el

estudiante realice prácticas a través de un programa específico (Prácticas de Inserción

Profesional de la Fundación Universidad‐Sociedad, Programa Leonardo, Erasmus, u otro

similar), se regirá por los términos de su normativa reguladora.

La relación que establece el estudiante con el centro durante el período de prácticas es de

carácter académico (no laboral), formalizándose mediante un Convenio de Cooperación

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Educativa suscrito por la entidad y la Universidad Pablo de Olavide a través de la Fundación

Universidad‐Sociedad.

Obligaciones de los estudiantes. Los estudiantes deberán realizar con diligencia y

aprovechamiento las actividades encomendadas, de acuerdo con el programa y

condiciones específicas aprobadas, y en caso de que les fuera exigido, guardar con absoluto

rigor el secreto profesional y no utilizar en ningún caso la información obtenida con ocasión

de su estancia en la empresa, institución o entidad, con el objeto de dar publicidad o

comunicación a terceros.

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MATERIA/ASIGNATURA

Trabajo Fin de Máster


Curso 2016/2017



Denominación: Proyecto fin de máster Módulo: 5‐Formación profesional y empresarial en Biotecnología / 6‐Formación investigadora en Biotecnología Curso / Semestre / Carácter: 2º / 1er (prácticas) y 2º (proyecto) / Obligatoria Coordinador de la asignatura: Juan R. Tejedo Huamán

Créditos Totales:

18

Prácticas de laboratorio: al menos 160 horas (máximo 350) Tutorias, búsqueda bibliográfica, realización de la memoria del proyecto, asistencia y participación en la jornada de biotecnología, y preparación y defensa del proyecto: 290 horas (mínimo 100 horas)

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Nombre y apellidos Título académico Institución / Área Modo de contacto Juan R. Tejedo Huamán Dr. Universidad Pablo de Olavide /

Bioquímica y Biología Molecular

[email protected] / 954 977 614 /

Despacho B06 edificio 22

3.‐ DESCRIPCIÓN

El Trabajo Fin de Máster (TFM) de Biotecnología Sanitaria, como continuación de su asignatura

de prácticas, se configura como un proceso de formación práctico complementario al final de la

titulación. Gracias a él, el estudiante puede contrastar los conocimientos adquiridos durante el

máster con la realidad del mundo empresarial o investigador, plasmando los resultados en una

memoria científica o técnica, y defediéndolos ante un tribunal de evaluación. En este trabajo no

sólo deben aparecer los resultados de las prácticas realizadas sino que también es importante

aplicar las competencias adquiridas durante las asignaturas de primer curso.

4.‐ MATRICULACIÓN

La matriculación podrá realizarse, conjuntamente con la asignatura de prácticas, presencialmente

en el CEDEP o escribiendo un correo electrónico a la dirección del CEDEP. Todos los estudiantes

tienen la obligación de registrarse en la base de datos ICARO de la UPO, pasándose por la

Fundación Universidad‐Sociedad. Además, una semana antes de la finalización de las prácticas el

estudiante tiene que enviar una solicitud de activación (a la dirección

[email protected]), en la base de datos ICARO, del cuestionario de Evaluación del

Alumno y de la Empresa.

4.1. PRERREQUISITOS:

Se recomienda que los estudiantes que quieran cursar esta asignatura hayan superado al menos

los 60 ECTS del primer curso del máster. Pero, en cualquier caso, para defender el Trabajo Fin

de Máster en una de sus dos posibles convocatorias, es necesario tener superados 72 ECTS del

máster, incluyendo todas la asignaturas obligatorias y la asignatura de prácticas (Iniciación a la

Investigación o Prácticas de Empresas).

4.2. CONTEXTO DENTRO DE LA TITULACIÓN:

Constituye una asignatura a realizar al final de la titulación que tiene por finalidad que el

estudiante ponga en práctica los conocimientos, habilidades y destrezas adquiridos a lo largo de

todo el desarrollo del máster en el contexto de la práctica profesional, incluyendo las

competencias adquiridas durante el curso de gestión bibliográfica, que forman parte de esta

asignatura.

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5.‐ ASIGNACIÓN DE DESTINOS

Las prácticas de esta asignatura se recomienda que sean una continuación de las de la

asignatura de prácticas, completando al final el mínimo total de horas de laboratorio en el

mismo centro de destino. De este modo se podrá realizar un proyecto de investigación o

desarrollo completo, con posibilidad de tener unos resultados originales y de interés dentro del

contexto científico, el cual servirá como base para la memoria y la defensa del TFM.

No obstante, existe la posibilidad de realizar las prácticas de esta asignatura, y el TFM

correspondiente, en otro centro de destino diferente al asignado en la asignatura de prácticas,

siempre que éste sea propuesto por el estudiante antes de realizar la matriculación en la

asignatura.

6.‐ ASIGNACIÓN DE TUTORES

Tanto el tutor interno (o tutores internos) como el tutor externo (o tutores externos) deberán

de ser los mismos durante las asignaturas de Prácticas y TFM, teniendo en ambos casos las

mismas responsabilidades (revisar la guía de Prácticas).

Sin embargo, en el TFM la evaluación no será llevada a cabo por el tutor interno, sino por un

tribunal de 3 miembros de docentes o colaboradores del máster.

En cualquier caso, el tutor interno deberá ser de nuevo el responsable del seguimiento del

estudiante, así como de la firma del documento de Visto Bueno para la defensa del TFM.

7.‐ SEGUIMIENTO DEL TFM

El estudiante debe velar por que se produzca un seguimiento continuo de sus prácticas de TFM

y de la preparación de la defensa que incluye la redacción de la memoria final y de la

presentación ante el tribunal. Por ello, el estudiante debe informar a su tutor interno de todas

las actividades a desarrollar a lo largo de todo el transcurso del TFM. Para ello, ambos deberán

reunirse en varias ocasiones y, en al menos una de ellas, justo antes de comenzar la redacción

de la memoria, deberán rellenar y firmar el documento “MBTGSAN ‐ A4 ‐ Documento de

seguimiento del PFM”, el cual deberá entregar el estudiante dentro de plazo, en el campus

virtual. La fecha de entrega de este documento será publicada a principio de curso en el mismo

campus virtual, y el retraso de su entrega en plazo podrá suponer la no superación de la

asignatura.

Durante la reunión prevía a la que se refiere el documento A4, el tutor interno y el estudiante

deberán establecer las bases de la estructura de la memoria final de TFM, acorde a las

instrucciones recogidas en esta guia.

8.‐ EVALUACIÓN

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El objetivo de la evaluación radica en determinar si se han alcanzado los objetivos planteados en

el programa de la asignatura. Además, la evaluación permite otorgar al estudiante una

calificación, con el fin de computarle los créditos para la configuración del expediente académico.

Para la evaluación del TFM se tendrá en cuenta la memoria presentada y la defensa pública del

mismo. Para ello, la comisión académica reservará varios días para las defensas, dentro de las 2

fechas oficiales del calendario de la UPO (a anunciar en el calendario del máster). Tanto la

memoria como la defensa serán evaluadas por un tribunal de 3 miembros, el cual organizará la

comisión académica del máster. Dicho tribunal, tras la defensa de los TFM que le correspondan,

rellenará la hoja de evaluación del documento E4, y con la nota obtenida rellenará el acta

correspondiente (documento E5) con la nota final de la asignatura. En el documento E4, el tutor

interno deberá rellenar una breve reseña, que podrá ayudar al tribunal a conocer las

circunstancias particulares en las que se ha realizado el TFM.

Para que un estudiante sea convocado a presentar y defender su PFM serán requisitos

indispensables todos los puntos siguientes, y el solo incumplimiento de uno de ellos lo

inhabilatará para presentar el TFM en la convocatoria en proceso, teniendo que esperar a la

próxima:

Haber superado los 60 ECTS de primer curso.

Haber superado la asignatura de prácticas de segundo curso, para lo que su tutor interno

deberá haber presentado el acta con la nota correspondiente.

Que el tutor interno haya presentado el documento de Visto Bueno o Informe del Tutor

(documento E3), si lo considerase oportuno. El tutor interno no podrá entregar dicho

Visto Bueno si no ha recibido la memoria para su revisión al menos 15 días antes de su

entrega a los miembros del tribunal, o si considerase que la memoria no estuviera apta

para su presentación.

Haber entregado una copia impresa de la memoria final a cada miembro del tribunal, al

menos 10 días antes de la defensa.

Haber entregado una copia en formato electrónico de la memoria final (instrucciones a

facilitar durante el curso).

Al final de la defensa de Trabajos Fin de Máster, la comisión académica del máster se reunirá y

asignará una “Matrícula de Honor” en la asignatura a un estudiante, para lo cual se modificará el

expediente correspondiente. Para la asignación de esta nota se podrá tener en cuenta la nota

obtenida en la asignatura de Prácticas, así como otros criterios de calidad.

9.‐ FORMATOS DE PRESENTACIÓN

9.1. FORMATO DE LA MEMORIA

El TFM deberá tener un formato general de artículo científico (con sus apartado básicos de

Introducción, Material y Métodos, Resultados, Discusión, y Conclusiones) o de solicitud de

Proyecto de Investigación (según una plantilla de convocatoria oficial de solicitud de proyectos

I+D).

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En el primer caso, deberá seleccionarse una revista científica relacionada con el campo de

investigación del proyecto realizado, y seguir las “instrucciones para autores” de la misma,

siguiendo las directrices dadas en cuanto a formato de los apartados, presentación de figuras y

tablas, bibliografía y el resto de características del documento. Tanto el nombre de la revista

elegida, como el enlace web en el que se encuentran las instrucciones para autores, deberán

aparecer en la portada de la memoria, junto con el título, el nombre del estudiante, y los

nombres de todos los tutores del TFM.

Como ayuda en la redacción, además de los consejos recibidos de los tutores internos, también

podrán consultarse los siguientes enlaces, los cuales ofrecen consejos para ayudar a escribir un

artículo de calidad:

Writing a scientific research article:

http://www.columbia.edu/cu/biology/ug/research/paper.html

Writing Research Papers: http://www.ruf.rice.edu/~bioslabs/tools/report/reportform.html

How to Write an A+ Research Paper: http://www.aresearchguide.com/1steps.html

También se recomienda la lectura y trabajo con el siguiente libro:

Writing science: How to write papers that get cited and proposals that get funded, Joshua

Schimel, Oxford University Press, Inc., New York, 2012, ISBN 9780199760244,

En el caso de que se decida escribir la memoria en formato de proyecto de investigación (cuya

conveniencia deberá estar ligada al visto bueno del tutor del proyecto), la plantilla para su

realización podrá ser obtenida desde el aula virtual de la asignatura (o desde cualquier

convocatoria pública de proyectos de investigación del Ministerio correspondiente o de la Junta

de Andalucía).

El documento final no podrá tener, en ningún caso, menos de 20 páginas ni más de 40 páginas

A4 con tamaño de fuente 12, bibliografía incluida, por lo que se pide realizar un ejercicio de

síntesis en el que se destaquen los resultados y discusiones más relevantes que se pueden

extraer del trabajo realizado. Especial hincapié hay que hacer en las figuras y tablas, que deberán

ser escogidas por considerarse que mejoran especialmente la exposición de los resultados.

Aunque el documento podrá ir escrito en español o inglés, el resumen (abstract) del mismo

deberá ir escrito obligatoriamente en inglés.

Aunque las instrucciones a seguir para preparar el documento final serán las dictadas por la

revista elegida, hay dos salvedades respecto a estas instrucciones:

El ya citado de la extensión en cuanto al número de páginas.

E incluir las figuras y tablas en la página en las que son citadas (o en la siguiente) para mejorar la lectura de la memoria.

9.2. DEFENSA DEL TFM

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La defensa pública del TFM se realizará ante el tribunal designado por la comisión académica del

máster, y se convocará en una fecha concreta a publicar en el campus virtual. Todos los

componentes del tribunal serán doctores y, al menos uno de ellos será miembro de la comisión

académica del máster. Cada tribunal evaluará entre 3‐5 TFM, los cuales se presentarán de

manera consecutiva, disponiendo cada defensa de 20 minutos más 10 minutos de preguntas.

En caso de que se suspendiera el TFM, el tribunal podrá requerir que se realice de nuevo la

memoria y/o la defensa en una próxima convocatoria. Hay que tener en cuenta que la

matriculación en la asignatura de TFM da derecho a presentarse a 2 convocatorias de defensa.

Por lo que si un estudiante sólo se presenta a la 2ª y la suspendiera, tendría que volver a

matricularse en el curso siguiente para poder optar a una nueva convocatoria.

Los proyectos que obtengan mayor nota podrán ser publicados en la revista Biosaia. Asimismo,

los números anteriores de esta revista podrán ser consultados para revisar los trabajos de otros

años.

10.‐ COMPETENCIAS

10.1. COMPETENCIAS TRANSVERSALES/GENÉRICAS:

Capacidad para organizar y planificar las actividades propias de su campo de trabajo.

Capacidad de resolución de problemas.

Capacidad de gestión de la información.

Capacidad de análisis y síntesis.

Capacidad comunicativa oral y escrita en español e inglés.

Capacidad de aprendizaje autónomo.

Capacidad de reflexión y decisión.

Capacidad para trabajar en un equipo interdisciplinar.

Habilidades en las relaciones interpersonales y profesionales.

Responsabilidad.

Iniciativa y capacidad de aportación de nuevas ideas o puntos de vista.

Adaptación a nuevas situaciones.

Capacidad de comunicar y aptitud social.

10.2. COMPETENCIAS ESPECÍFICAS:

10.2.1. Prácticas en empresa

Integrarse de forma productiva en el funcionamiento normal de una empresa de base

biotecnológica.

Conocer las actividades y divisiones típicas de las empresas de base biotecnológica.

Entender las implicaciones sociales, legales y éticas del desarrollo y comercialización de

productos biotecnológicos.

Tener habilidad para obtener, recuperar y analizar información desde diferentes

fuentes relacionadas con su actividad profesional.

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Conocer los métodos de expresión oral en los diferentes foros.

Tener habilidad para comunicarse en los diversos contextos.

10.2.2. Iniciación a la investigación

Adquirir la disciplina y los hábitos básicos de un laboratorio de investigación.

Conocer y practicar los principios de higiene y seguridad en el laboratorio.

Conocer el método científico y la lógica del trabajo experimental.

Conocer la metodología básica de un laboratorio de investigación, incluyendo el diseño

y ejecución de experimentos de forma correcta, su seguimiento, documentación y

análisis de los datos experimentales.

Desarrollar una línea de investigación, diseñando y ejecutando experimentos

específicos para responder a preguntas concretas, valorando los resultados obtenidos

en cada punto y tomando decisiones sobre el desarrollo experimental en función de los

resultados.

Ser capaz de explicar y discutir resultados y estrategias experimentales con personas

con distinto grado de formación en la materia.

10.2.3. Competencias específicas del proyecto fin de máster

Ser capaz de integrar la bibliografía relevante sobre un tema en un trabajo de revisión.

Ser capaz de redactar un trabajo de investigación propio en un formato semejante al

de un artículo científico.

Ser capaz de presentar, discutir y defender un trabajo de investigación propio en un

foro público que incluye a expertos en la materia.

11.‐ OBJETIVOS

11.1. Prácticas en empresa

Permitir un primer contacto de los estudiantes con la práctica en el campo empresarial o

institucional. De esta forma, potenciar el rendimiento personal de los estudiantes a través

del reforzamiento de los conocimientos adquiridos a lo largo de su carrera académica.

Que el estudiante adquiera una experiencia de trabajo profesional en áreas de actividad

específica del biotecnólogo.

Que aprenda, en el lugar de destino, la dinámica concreta de un trabajo en equipo,

métodos y técnicas de trabajo.

Que adquiera una actitud crítica y autocrítica.

Que aporte ideas con una actitud positiva y constructiva.

Valorar y tomar decisiones profesionales en las que primen los aspectos sociales, legales y

éticos sobre los intereses comerciales.

11.2. Iniciación a la investigación

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El/la estudiante es capaz de integrarse en un laboratorio de investigación y de planificar y

llevar a cabo su trabajo de acuerdo con las normas y protocolos de trabajo generales y

específicos del laboratorio.

El/la estudiante trabaja siguiendo estrictamente las normas de higiene y seguridad en el

laboratorio.

El/la estudiante entiende la metodología de un trabajo científico y es capaz de seguir una

línea de investigación expuesta en un artículo o charla científica.

El/la estudiante conoce diversos métodos de uso común, y es capaz de diseñar y ejecutar

correctamente experimentos que utilizan dichos métodos.

El/la estudiante es capaz de dar respuesta a un problema de carácter científico mediante el

desarrollo de una línea de investigación específica.

El/la estudiante participa activamente en sesiones de discusión sobre distintas líneas de

investigación en el seno de un grupo de investigación.

11.3. Objetivos específicos del proyecto fin de máster

El/la estudiante es capaz de escribir una revisión sobre un tema de investigación en

Biotecnología.

El/la estudiante es capaz de redactar su propia investigación en una memoria estructurada

como un artículo científico.

El/la estudiante es capaz de exponer y defender frente a un tribunal de expertos y en

audiencia pública su propio trabajo de investigación

El/la estudiante es capaz de transmitir conocimientos basados en su experiencia propia o

en publicaciones científico‐técnicas a públicos con diverso grado de formación en la

materia.

El/la estudiante demuestra un conocimiento de los lenguajes español e inglés que le

permite intercambiar opiniones o conocimientos y relacionarse con otros profesionales del

área para presentar con soltura y confianza los resultados de una investigación o aplicación

para su evaluación crítica por colegas o revisores, en un ambiente formal e informal, tanto

en forma oral como escrita.

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