Problemi recenti

Limitazioni all’uso di sostanze fumiganti

Nuovo regolamento agrofarmaci

Non completa resistenza di piante innestate

Progetto cofinanziato dal

programma LIFE+

Prof. Prof. Prof. Prof. Prof. Prof. Prof. Prof. Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi -------- UniversitUniversitUniversitUniversitUniversitUniversitUniversitUniversitàààààààà di Torino di Torino di Torino di Torino di Torino di Torino di Torino di Torino

Problematiche emergenti su pomodoro innestato

Le alterazioni causate da

Phytophthora nicotianae e

Rhizoctonia solani sono

state osservate su piante

innestate e trapiantate da

pochi giorni o, comunque

mai oltre le 5-6 settimane

dall’impianto della coltura.

Colletotrichum coccodes è

responsabile di alterazioni

radicali anche di piante

innestate. Gli attacchi sono

visibili a cominciare dalla 9

settimana dal trapianto.

Phytophthora nicotianae

Rhizoctonia solani

C. coccodes

Resistenza dichiarata

Fusarium oxysporum f.sp.

lycopersici

Verticillium dahliae

F. oxysporum f.sp. radicis-

lycopersici

Pyrenochaeta lycopersici

Nematodi

Effetto dell'impiego di diversi portainnesti in terreni naturalmente

infetti da Colletotrichum coccodes e da nematodi galligeni

(Meloidogyne spp.).

Cuo

re di b

uePro

sper

oBrig

eor

Big F

orce

King Kon

gHe Man

Max

ifort

Bea

ufor

t

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

C. coccodes (% apparato radicale infetto) % piante infestate da nematodi

Effetto dell’inoculazione artificiale effettuata mediante immersione

radicale in una sospensione conidica (titolo 1x107 CFU/ml) su

selezioni di Solanum torvum e melanzana cv Black bell espressa

come percentuale di piante infette.

Specie % piante colpite da V.dahliae

Solanum torvum 26

Melanzana cv Black bell 100 Piante di melanzana non innestate 87 Testimone non inoculato 0

Isolati di Isolati di V. V. dahliaedahliae ottenuti da ottenuti da

portainnesto di marza di piante di portainnesto di marza di piante di

melanzana innestate su melanzana innestate su S. S. torvumtorvum

0

20

40

60

80

100

120

Dinero Camel

Force

Macis Siltosa Strog Tosa RS 841

portainnesto

Phytophthora capsici

Rhizoctonia solani

Reazione di differenti portainnesti a Phytophthora capsici

e Rhizoctonia solani in condizioni controllate.

Portainnesto Genotipo

Dinero Hybrid F1

Camel Force C.moschata x C.maxima

Macis Hybrid from Lagenaria

Siltosa C.moschata x C.maxima

Strog Tosa C.moschata x C.maxima

RS 841 C.moschata x C.maxima

0

20

40

60

80

100

120

Dinero Camel

Force

Macis Siltosa Strog

Tosa

RS 841

Rootstock

Dis

ease index

Phytophthora capsici

Rhizoctonia solani

Reazione di differenti portainnesti di cucurbitacee a

Phytophthora capsici e Rhizoctonia solani in condizioni

controllate

Portainnesto Genotipo

Dinero Ibrido F1

Camel Force C.moschata x C.maxima

Macis Hybrid from Lagenaria

Siltosa C.moschata x C.maxima

Strog Tosa C.moschata x C.maxima

RS 841 C.moschata x C.maxima

Portainnesti

Ind

ice

di

ma

latt

ia

Reazione di differenti portainnesti di pomodoro a F.

oxysporum f.sp. lycopersici Razza1 in condizioni controllate

Cultivar

Suscettibilità di diversi portainnesti a diversi isolati di F.oxysporum

f.sp.lycopersici

Fol Panero 6 Fol DMDS Fol Pallara Fol SIS Sardegna

IM0-

100 R°

IM0-

100 R

IM0-

100 R

IM0-

100 R

He-man 8,33 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R

Maxfort 4,17 R 0,0 R 0,0 R 8,3 R

Beaufort 4,17 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R

Unifort 0,00 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R

Natalya 25,00 PR 0,0 R 0,0 R 16,7 PR

Spirit 0,00 R 4,2 R 0,0 R 4,2 R

Arnold 0,00 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R

500292 0,00 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R

Cuor di Bue* 79,17 HS 62,5 HS 83,3 HS 75,0 HS

°°ReazioneReazione = R = R =resistente=resistente; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto su; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto suscettibilescettibile

Reazione di differenti portainnesti di pomodoro a F.

oxysporum f.sp. radicis-lycopersici (FORL)e Verticillium

dahliae in condizioni controllate

°°ReazioneReazione = R = R =resistente=resistente; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto su; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto suscettibilescettibile

Cultivar I.M. 0-100 Reazione

He Man 0,0 R

Maxfort 0,0 R

Beaufort 0,0 R

500292 0,0 R

Nathalia 0,0 R

Arnold 0,0 R

Spirit 0,0 R

Cuor di bue 66,7 HS

Cultivar I.M. 0-100 Reazione

He Man 0,0 R

Maxfort 0,0 R

Beaufort 0,0 R

500292 0,0 R

Nathalia 0,0 R

Arnold 0,0 R

Spirit 0,0 R

Cuor di bue 45,0 S

Suscettibililità a FORL Suscettibililità a V.dahliae

Biofumigazione

Come si applica

Efficacia

Limiti

Integrazione con altri metodi

Effetto dell’adozione del sovescio con Brassica juncea ISCI20 sulle infezioni di Verticillium dahliae su melanzana.

Testimone Testimone +

pacciamatura

B. junceaB. juncea +

pacciamatura

trapianto 04/07

trapianto 26/07

0,0

10,0

20,0

30,0

40,0

50,0

60,0

70,0

% piante infette

b

ab

a

b

F. oxysporum f. sp.

conglutinans

F. oxysporum f. sp.

raphani

F. oxysporum

f.sp. matthioli

Specie ATCC

16600

Fus Vale

5/04

Fus

Ruc

6

ATCC

64105

Fus Ruc

13/03

Fus

Ruc 9A

ATCC

16602

Brassica juncea (ISCI 61) S R R° PR R R R

Brassica juncea (ISCI 99) HS R R R R R R

Brassica juncea (ISCI 20) HS R R R R R PR

Eruca sativa (Nemat) HS S S S S S PR

Brassica nigra (ISCI 27) HS R PR HS HS R R

Crambe abissinica HS S PR HS HS S R

Rapistrum rugosum HS PR PR S S PR R

Brassica carinata (ISCI 7) S R R R R R R

Lepidium campestre (ISCI 15) S R R S R R R

Lepidium sativum (ISCI 101) S S PR S S PR PR

Brassica rapa (Silla) HS PR PR S PR PR S

Diplotaxis tenuifolia HS PR PR S S PR R

Sinapis alba HS R R PR R R PR

Barbarea verna (ISCI 100) R R R PR HS R R

Rapistrum rugosum (ISCI 03) HS PR R S S PR R

Brassica juncea (Poggiolo) HS R R R PR R PR

Sinapis arvensis (Iberina) HS PR R S PR R R

°°R= resistente; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; R= resistente; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto suscettibileHS = molto suscettibile

Suscettibilita’ di brassicacee utilizzate nella biofumigazione

a Fusarium oxysporum f.sp. raphani, conglutinans e

matthioli.

Resistenza genetica

Cultivar resistenti ed esempi pratici

Elenco delle cultivar di lattuga resistenti a

Fusarium oxysporum f.sp. lactucae Razza 1

Cv di lattuga resistenti a F.oxysporum f.sp. lactucae razza1 Ditta sementiera

Edmonton, Antigua, Campari, Gentilina Rs 2735, Luberon, Red salad bowl,

Casabella Rs 8886535, Bionda di Parigi

Royal Sluis

Lentissima a montare, Salad bowl rossa Agrisem

Lattuga Lesolina, Rubin Asgrow

Rubin, Duna, Romabella Olter

ISI 45036, ISI 45268, ISI 45270, ISI 45903, ISI 44272, ISI 45124, ISI 44038,

Gentilina, ISI 49999, ISI 45125

ISI sementi

Bentley, Irazu, Teide, Solace, Bavert, Rebato Nunhems

Romana lentissima a montare, Romana Grettona Four

Lattuga Bionda Parigi Franchi

Signorella, Lentissima a montare 3 La SemiOrto

1) Tutte le cultivar di lattuga tipologia cappuccina sono molto

suscettibili;

2) Il 30% delle cv di lattuga della tipologia batavia sono resistenti;

3) Il 70% delle cv di lattuga “lollo”hanno un buon livello di resistenza;

4) variabile è il comportamento delle varietà della tipologia romana.

Reazione °°di diverse cv agli isolati di

F. oxysporum

f. sp.

conglutinans

f. sp. raphani Codice Specie cv

ATCC

16600

FUS RUC

6

ATCC

64105

FUS

RUC

13/03

FUS

RUC

9/03

2\03 Diplotaxis

tenuifolia

Rucola

selvatica MS R MS PR PR

15\03 Diplotaxis

tenuifolia

Selvatica

extra S MS MS MS PR

20\03 Diplotaxis

tenuifolia

Foglia frastagliata

SAZH789

MS PR MS PR PR

6\04 Diplotaxis

tenuifolia

Foglia

frastagliata S - MS PR PR

8\04 Eruca sativa

Rucola coltivata

S - S MS MS

19\03 Eruca

sativa

Foglia

largaSAAL20

5

S MS S MS MS

22\03 Eruca sativa

Foglia lobata SAAL110

S - S MS MS

MS99 Diplotaxis

tenuifolia - PR PR PR R R

MS 02 Diplotaxis

tenuifolia - S PR MS PR PR

Reazione di diverse cultivar di rucola a diversi isolati di Fusarium

oxysporum ff. spp conglutinans e raphani

(°°)Reazione R = Resistente (indice di malattia compreso tra 1-10); PR = parzialmente resistenti (indice di malattia compreso tra 11-30);

MS = mediamente suscettibile (indice di malattia compreso tra 31-60); S = Suscettibile (indice di malattia compreso tra 61-100).

LOTTA BIOLOGICA

0,05,0

10,015,020,025,030,035,040,045,050,0

FC-6

B 1

X10

7

FC-9

B 1

X10

7

FC-2

4B 1

X107

AC-M

SA35 1

X107

Serra

tia 1

X107

FC-7

B 1

X10

7

FC-8

B 1

X10

7

FC-6

B 1

X10

8

FC-9

B 1

X10

8

FC-2

4B 1

X108

AC-M

SA35 1

X108

Serra

tia 1

X108

FC-7

B 1

X10

8

FC-8

B 1

X10

8R

S (3g/

l)

Ced

omon

7.5

x106

Testim

one

inoc

ulat

o

Testim

one

sano

Prova 1 con ATCC 64105

0,0

10,0

20,0

30,0

40,0

50,0

60,0

70,0

FC-6

B 1

X10

7

FC-9

B 1

X10

7

FC-2

4B 1

X107

AC

-MS

A35

1X

107

Ser

ratia

1X

107

FC-7

B 1

X10

7

FC-8

B 1

X10

7

FC-6

B 1

X10

8

FC-9

B 1

X10

8

FC-2

4B 1

X108

AC

-MS

A35

1X

108

Ser

ratia

1X

108

FC-7

B 1

X10

8

FC-8

B 1

X10

8R

S (3

g/l)

Cedo

mon

7.5

x106

Testim

one

inoc

ulato

Testim

one

sano

Prova 2 con ATCC 16600

I diversi batteri - ottenuti

da un substrato di lana di

roccia riciclato da un

sistema fuorisuolo -sono

stati applicati per

miscelazione al terreno 7

giorni prima del trapianto

della rucola.

Indice di malattia 0-100

Indice di malattia 0-100

Efficacia di diversi isolati batterici nei confronti della

tracheofusariosi della rucola causate da Fusarium oxysporum f. sp.

conglutinans (ATCC16600) e f. sp. raphani (ATCC64105)

Sintomi: alterazione dell’apparato radicale e del colletto, rapido

avvizzimento e morte della pianta.

Il patogeno può colpire anche la parte epigea della

pianta, arrestandone lo sviluppo.

Marciume dei frutti in campo e in conservazione.

Attacchi emergenti di Phytophthora capsici su zucchino.

Difesa dello zucchino da Phytophthora capsici

(anno 2008-2009)

Tesi TrattamentoDose Applicazione in vivaio

(miscelazione al terriccio)*

Applicazione

al trapianto**ml o g/l

Testimone inoculato - - - -

Serenade Bacillus subtilis 0,058 Si Si

Rootshield Trichoderma harzianum 0,046 Si Si

Remedier T.harzianum +T.viride 0,04+0,04 Si Si

Cedomon Pseudomonas chlororaphis 0,087 Si Si

Micostop Streptomyces griseoviridis 0,033 Si Si

Radimix

Streptomyces+Trichoderma +N

organico 3% 1 Si Si

Previcur propamocarb 5,32 ml/m2** - Si

Cilus Plus Bacillus velenzensis 0,016 Si Si

Bion Acibenzolar S methil 0, 025 Si Si

Alliette Fosetyl Al 1,6 Si Si

*Trattamento al terriccio alla semina, 14 e 7 giorni prima del trapianto della coltura, volume d’acqua di

1 l /alveolo/cv. ** Trattamento degli alveoli al trapianto della coltura (volume d’acqua di 5 l/m2)

•Inoculazione artificiale di P.capsici (100g/m2) alla stesura dei teli;

•Disegno sperimentale: 3 replicazioni a blocchi randomizzati, 10 piante / replicazione,

occupando 5 m2 / parcella;

• I dati sono stati sottoposti all’analisi della varianza (ANOVA) e al test di Duncan (P<0,05).

Effetto di diversi microrganismi nei confronti di

Phytophthora capsici su zucchino (prova in campo 2008)

Trattamento Microrganismo Dose p.a. g/l

Percentuale

piante morte

cv Xsara (cv a

frutto Scuro)

Percentuale

piante morte

cv Altea (cv a

frutto chiaro)

Testimone

inoculato- - 58,3 cd* 35,42 b*

Serenade Bacillus subtilis 0,058 42,7 abcd 30,21 b

RootshieldTrichoderma

harzianum 220,046 55,2 bcd 51,04 b

RemedierT.harzianum

+T.viride0,04+0,04 64,6 d 39,58 b

CedomonPseudomonas

chlororaphis0,087 36,5 abcd 42,71 b

MicostopStreptomyces

griseoviridis0,033 27,1 abc 41,67 b

Radimix

Streptomyces+Tricho

derma +N

organico 3%

1 16,7 ab 29,17 b

Previcur Propamocarb 5,32 ml/m2 7,3 a 8,33 a

Effetto di diversi microrganismi nei confronti di

Phytophthora capsici su zucchino

Tesi Trattamento

Dose

p.a.

g/l

Indice di malattia al 3/09/09

Cv Lipari (cv a frutto

chiaro)

Cv Syros (cv a

frutto scuro)

Testimone inoculato - - 54,2 c 41,7 ab

Serenade Bacillus subtilis 0,58 54,2 c 45,8 ab

Cilus Plus Bacillus

velenzensis

0,016 45,8 bc 58,3 b

Remedier T.harzianum

+T.viride

0,01

+0,01

25,0 ab 33,3 ab

Bion Acibenzolar S

methil

0, 025 29,2 ab 20,8 a

Micostop Streptomyces

griseoviridis

0,033 29,2 ab 50,0 ab

Alliette Fosetyl Al 1,6 54,2 c 33,3 ab

Radimix Streptomyces+Tri

choderma +N

organico 3%

1 37,5 abc 25,0 ab

Previcur propamocarb 5,32

ml/m2

12,5 a 15,0 a

CONCIA DEI SEMI

Metodi alternativi di concia per il contenimento di

Ascochyta pisi su seme di pisello

In prove condotte in ambiente protetto in vaso e su bancale attraverso concia

umida o secca di seme naturalmente infetto (tasso di infezione: 20%) sono stati

saggiati i seguenti trattamenti, valutando % di emergenza, incidenza e indice di

malattia:

• impiego di acqua calda, vapore aerato, elettroni;

• uso di formulati commerciali a base di 4 microorganismi (Bacillus subtilis,

Pseudomonas chlororaphis, Fusarium oxysporum e Streptomyces griseoviridis);

• applicazione di isolati di microrganismi selezionati per la loro capacità

antagonistica;

• concia con estratto di timo e farina di crucifere;

• impiego di induttori di resistenza.

Metodi alternativi di concia per il contenimento di

Ascochyta pisi su seme di pisello

Trattamento fisico Parametri Efficacia

Acqua calda 48 °C

10 min

+

Vapore aerato 74 °C

90 % U.R. 2 min

+

Elettroni 140 kV

12 kGy

+

Efficacia:

+++ paragonabile al trattamento chimico di riferimento (Thiram)

++ effetto apprezzabile, ma inferiore al trattamento chimico

+ effetto non apprezzabile

Metodi alternativi di concia per il contenimento di Ascochyta pisi su seme di

pisello

Efficacia:

+++ paragonabile al trattamento chimico di riferimento (Thiram)

++ effetto apprezzabile, ma inferiore al trattamento chimico

+ effetto non apprezzabile

Microrganismo (formulato) Dose/10 g seme Efficacia

Bacillus subtilis (FZB 24) 100 mg +

Streptomyces griseoviridis(Mycostop)

50 mg +

Fusarium oxysporum 251/2 100 mg +

Bacillus subtilis (MBI 600) 100 mg +

Bacillus subtilis (Serenade) 100 mg +

Pseudomonas chlororaphis(BA 2552)

300 µl +

Metodi alternativi di concia per il contenimento di

Ascochyta pisi su seme di pisello

Efficacia:+++ paragonabile al trattamento chimico di riferimento (Thiram); ++ effetto apprezzabile, ma

inferiore al trattamento chimico; + effetto non apprezzabile

Microrganismo/estratto Dose/

concentrazione

Efficacia

Pseudomonas spp. (6 ceppi) 1x108 UFC/ml +

Bacillus spp. (2 ceppi) 1x108 UFC/ml +

Serratia plymuthica 1x108 UFC/ml +

Curtobacterium sp. 1x108 UFC/ml +

Pichia guilliermondii 1x108 UFC/ml +

Burckholderia sp. 1x108 UFC/ml +

Trichoderma viride 1x106 UFC/ml +

Fusarium oxysporum antagonista 1x106 UFC/ml +

Clonostachys rosea IK726 1x109 UFC/g ++

Tillecur (farina brassicacee) 20 % +

Olio di timo 0,1 % +++

Efficacia dell’impiego di microrganismi e diversi fungicidi in trattamenti di concia del seme di lattuga nei confronti della tracheofusariosi.

Trattamento° Dose /g seme Efficacia°°

Bacillus subtilis (Serenade WP) 0,01 mg +

Bacillus subtilis (FZB24) 0,01 mg ±

Bacillus subtilis (MB1 600) 0,01 mg ±

Streptomyces griseoviridis (Micostop) 0,002 mg ±

Fusarium oxysporum 251/2 1x107 CFU* +

Pseudomonas chlororaphis (Cedomon) 0,3 mg ±

Fusarium oxysporum MSA 35 1x107 CFU ++

Mancozeb (Mazeb 80) 4,8 mg ++++

Tiram (Pomarsol 50) 1,5 mg +

Testimone inoculato non trattato - ±

°(±) efficacia rispetto al testimone 0-20%; (+) efficacia rispetto al testimone 21-40%; (++) efficacia rispetto al testimone 41-60%; (+++) efficacia rispetto al testimone 61-80%; (++++) efficacia rispetto al testimone 81-100%;

Integrazioni

Mezzi chimici + solarizzazione

Mezzi chimici + piante resistenti o innestate

Solarizzazione + biofumigazione

Fuori suolo + mezzi biologici….

Rhizoctonia

solaniFORL

FOL

P.

lycopersiciTotale

Testimone

Mycostop

SS

SS + Mycostop

0

10

20

30

40

Effetto dell’applicazione di S. griseoviridis (Mycostop) in combinazione a solarizzazione (SS) sulla % di piante di pomodoro (cv Cuore di bue) colpite da parassiti vascolari, basali e radicali dopo 150 giorni dal trapianto.

% di piante infette

a

ab

b

a

TestimoneTestimone

PyronochaetaPyronochaeta lycopersicilycopersici

FusariumFusarium oxysporumoxysporum f.sp.f.sp.

lycopersicilycopersiciF. F. oxysporumoxysporum f.sp.f.sp. radicisradicis

lycopersicilycopersici

RhizoctoniaRhizoctonia solanisolani

Sfarinato incorporato

nel terreno (g/l)

Periodo di solarizzazione

(settimane)

% piante morte

0 2

4 0 1 2 3 lattuga basilico

X X 100,0 d 11,7 f

X X 77,8 bcd 9,9 ef

X X 97,6 bcd 6,3 bcdef

X X 17,9 ab 0,0 a

X X 100,0 d 4,3 abcde

X X 46,7 abc 2,0 abcd

X X 4,2 a 0,7 abc

X X 19,4 ab 1,8 abcd

X X 97,0 bcd 2,4 abcd

X X 0,0 a 6,3 bcdef

X X 0,0 a 2,0 abcd

X X 0,0 a 0,4 ab

Effetto dell’impiego di farine disoleate di Brassica carinata

applicate da sole o in combinazione con periodi differenti di solarizzazione (45°C ± 2°C) sulla diffusione degli attacchi di

Fusarium oxysporum f. sp. lactucae e f. sp. basilici rispettivamente su lattuga (cv Mehari) e su basilico (cv

Genovese gigante).

La farina La farina èè stata incorporata a due diverse dosi (2 e 4g/l). stata incorporata a due diverse dosi (2 e 4g/l).

Diffusione (% piante infette) ed incidenza (% di apparato

radicale alterato) di attacchi di C. coccodes su pomodoro

allevato su diversi portinnesti in terreni trattati con

metham sodio e cloropicrina.

Principio attivo Dose

(g.p.a./m2)

Portainnesto % apparato

radicale

infetto

% piante

infette/totale

- - “He Man” 59,0 bc* 100,0 d*

- - “Beaufort” 43,3 b 100,0 d

- - “Maxifort” 62,3 bc 100,0 d

metham sodio 96 “He Man” 4,3 a 53,3 b

metham sodio 96 “Beaufort” 2,8 a 86,7 cd

metham sodio 96 “Maxifort” 3,3 a 93,3 d

metham sodio 192 “He Man” 10,2 a 70,0 bc

metham sodio 192 “Beaufort” 7,4 a 100,0 d

metham sodio 192 “Maxifort” 1,2 a 21,7 a

cloropicrina 40 “He Man” 70,0 c 100,0 d

cloropicrina 40 “Beaufort” 46,1 b 100,0 d

cloropicrina 40 “Maxifort” 70,0 c 100,0 d

cloropicrina 20 “He Man” 54,7 bc 100,0 d

cloropicrina 20 “Beaufort” 42,0 b 100,0 d

cloropicrina 20 “Maxifort” 69,3 c 100,0 d

Principio attivo dose

(g p.a/m2)

Portainnesto n°frutti

/pianta

Kg

produzione

/pianta

- - “Maxifort” 113 ab* 6,1 bc*

- - “Beaufort” 99 b 5,6 bc

metham sodio 96 “Maxifort” 160 a 7,8 a

metham sodio 96 “Beaufort” 132 ab 4,9 c

metham sodio 192 “Maxifort” 136 ab 6,9 ab

metham sodio 192 “Beaufort” 138 ab 6,9 ab

cloropicrina 40 “Maxifort” 112 ab 5,8 bc

cloropicrina 40 “Beaufort” 111 ab 5,8 bc

cloropicrina 20 “Maxifort” 110 b 6,1 abc

cloropicrina 20 “Beaufort” 109 b 5,3 bc

Effetto dei diversi trattamenti/strategie sulla produzione

di pomodoro (cv Cuore di bue) allevato su terreno

trattato da diversi principi attivi.

Portainnesto Trattamento con B. juncea

Trattamento q/ha

% apparato

radicale infetto da

C. coccodes

% piante infette da

C.

coccodes

Non innestato - - 97,9 d 100,0 a

“Beaufort” - - 41,7 ab 100,0 a*

“King Kong” - - 60,0 abc 100,0 a

“Brigeor” - - 56,3 abc 100,0 a

“Big Force” - - 76,5 cd 100,0 a

“Maxifort” - - 39,3 ab 100,0 a

“Beaufort” sfarinato 30 43,8 abc 100,0 a

“King Kong” sfarinato 30 60,0 abc 91,7 a

“Brigeor” sfarinato 30 33,3 a 100,0 a

“Big Force” sfarinato 30 55,4 abc 100,0 a

“Maxifort” sfarinato 30 49,9 abc 100,0 a

Non innestato sfarinato 30 95,8 d 100,0 a

Non innestato pellet 30 97,1 d 100,0 a

“Beaufort” pellet 30 41,6 ab 100,0 a

“King Kong” pellet 30 59,1 abc 100,0 a

“Brigeor” pellet 30 48,6 abc 100,0 a

“Big Force” pellet 30 67,8 bcd 100,0 a

“Maxifort” pellet 30 51,8 abc 100,0 a

Effetto del portainnesto del trattamento con sfarinato e pellet di B.

juncea sulla diffusione (% piante infette) ed incidenza (% di apparato

radicale alterato) di attacchi di C. coccodes su “Cuore di bue” innestato

e non innestato.

Conclusioni

La disinfestazione del terreno e dei

substrati resta la pratica di difesa più

complessa e problematica per gli

agricoltori, il settore più critico da

affrontare per l’industria agrochimica e

uno dei temi di ricerca più interessanti e

stimolanti per i ricercatori.